Summary

Måling og Ændre Parring Drive i Male<em> Drosophila melanogaster</em

Published: February 15, 2017
doi:

Summary

Denne artikel beskriver en adfærdsmæssig analyse der bruger mandlige parring drev i Drosophila melanogaste r at studere motivation. Ved hjælp af denne metode, kan forskerne udnytte avancerede flyve neurogenetic teknikker til at afdække de genetiske, molekylære og cellulære mekanismer der ligger til grund denne motivation.

Abstract

Trods årtiers efterforskning, de neuronale og molekylære grundlag for motiverende stater forbliver mystisk. Vi har for nylig udviklet en ny, reduktionistisk og skalerbare system til dybtgående undersøgelse af motivation ved hjælp af parring drevet af mandlige Drosophila melanogaster (Drosophila), de metoder, som vi detaljer her. Den adfærdsmæssige paradigme centre på den konstatering, at mandlige parring drev falder sammen fertiliteten i løbet af gentagne parringer og genopretter løbet ~ 3 d. I dette system, de kraftfulde neurogenetic værktøjer til rådighed i fluen konvergerer med den genetiske tilgængelighed og formodede ledningsdiagram til rådighed for seksuel adfærd. Denne konvergens muliggør hurtig isolation og forhør af små neuronale populationer med specifikke motiverende funktioner. Here We detalje projektering og udførelse af mæthed assay, der bruges til at måle og ændre frieri motivation i den mandlige flue. Brug af denneassay viser vi også, at lave mandlige parring drev kan overvindes ved at stimulere dopaminerge neuroner. Den mæthedsfornemmelse analysen er enkel og billig, og robust til påvirkninger af genetisk baggrund. Vi forventer, at mæthed assay til at generere mange nye indsigter i neurobiologi af motiverende stater.

Introduction

Arbejde i Drosophila har givet dybe og banebrydende indsigt i mange biologiske fænomener, herunder arten af genet 1, principperne for fosterudvikling 2, døgnrytmen 3, samt udvikling og ledningsføring af nervesystemet 4, 5, 6. Motivation er stadig langt mindre godt forstået end disse fænomener, måske på grund af de begrænsninger på de systemer, der er blevet undersøgt hidtil. Motivation i gylp primært undersøgt i forbindelse med sult, som rummer mange udfordringer på grund af deres forsvindende lille fødeindtagelse pr fodring Bout og exoskelet der udelukker åbenlyse tegn på fedtaflejring. Der er derfor et behov for at udvide de anvendte systemer til at studere motivation i gylp.

Vi beskriver en adfærdsmæssig ramme for studiet af parring drev iDrosophila. Dette system drager fordel af de neurogenetic værktøjer i gylp samt tilgængeligheden 7, 8, 9, 10, 11, 12 og den formodede connectome af sin seksuelt dimorfe kredsløb 8, 13. Desuden er meget af den medfødte 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21 og lærte 22, 23, 24 sensorisk-motorisk kredsløb kontrollerende frieri er udarbejdet i detaljer, hvilket giver en sjælden mulighedat finde den nøjagtige kredsløb node hvorpå motivation rammer. Vi har for nylig rapporteret, at i fluen, som hos mennesker, dopamin niveauer er centrale for parring drev 25, 26, 27. Vi har fået genetisk adgang til den relevante dopamin-producerende og modtage neuroner i fluen, lette detaljerede molekylære mekanisme og kredsløb niveau analyser af denne bevaret fænomen ved hjælp af de analyser vi beskriver her 25.

Vi tilføjer til de adfærdsmæssige analyser i Zhang et al. 25 en ny flad adfærdsmæssige arena, der giver mulighed for video scoring, som vi kalder en 2-dimensional (2-D) mæthed assay, en vigtig forbedring i forhold til tidligere metoder. Følgelig den nye assay er mere skalerbar og målelig, og derfor mere egnet til genetiske skærme af gener og neuroner involveret i motivation. Vi bruger denne nye analyse, sammen med frieri assays og neurogetiske manipulationer, at vise, hvordan man kan måle og ændre parring drev i fluen.

Protocol

BEMÆRK: Denne protokol beskriver fremstillingen (§§ 1 – 3), udførelse (afsnit 4), og analyse (afsnit 4) 2-D mæthed analyser. Derefter bruger dopaminerg stimulation som et eksempel, afsnit 5 viser, hvordan man kan kombinere thermogenetic stimulation med 2-D mæthed assays til at fremkalde hyperseksualitet. Afsnit 6 beskriver 3 måder at kontrollere resultaterne af 2-D mæthed analyser. Endelig, afsnit 7 viser hvordan man kan måle inddrivelse af parring drev i mandlige fluer. 1. Bearbejdni…

Representative Results

For at karakterisere Drosophila parring drev, 3 dage gammel, WT Canton-S hanner blev testet i en 2-D mæthed assay. I løbet af assayet (4,5 timer), hanner parrer et gennemsnit på 4,8 ± 0,3 (middelværdi ± standardfejl på middelværdi, SEM) gange. Parringer indlede meste i de første 2 timer (78%) (figur 6a, 6b) og blive mindre hyppige som assayet skrider (figur 6A, 6B). Dette fald skyldes ikke mangel på parring partnere (74% kvinder forbli…

Discussion

Motiverende stater kan mæt, vedligeholdes, og genvundet 34. Vi præsenterer en 2-D mæthed assay, der hurtigt og håndfast måler alle disse aspekter af parring drev i fluen. Dette assay åbner mulighed for at anvende avancerede flyve genetiske manipulationer for at studere de molekylære og kredsløbskomponenter i en motiveret adfærd.

Den mæthed analysen er afhængig af mandens evne til at retten og parre sig, og for at afslutte parringer på et passende tidspunkt…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Mike Crickmore, Dragana Rogulja, and Michelle Frank for comments on the manuscript. Pavel Gorelik provided technical support for manufacturing the behavioral arenas. This work was conducted in Mike Crickmore’s lab and is also supported by the Whitehall Foundation (Principal Investigator: Dragana Rogulja). S.X.Z. is a Stuart H.Q. and Victoria Quan Fellow at Harvard Medical School.

Materials

1/16 inch clear acrylic McMaster-Carr 8589K12 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
1/8 inch clear acrylic McMaster-Carr 8589K42 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
3/16 inch clear acrylic McMaster-Carr 8560K219 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
1/32 inch black delrin McMaster-Carr 8575K132 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
Hex screws, 1 inch long (50x) McMaster-Carr 92314A115  Used to make arenas. Can be replaced by 3/4 inch screws (92314A113, McMaster-Carr) for 32-chamber arenas.
Thumb nuts (25x) McMaster-Carr 92741A100 Used to make arenas. Can be replaced by regular hex nuts (90480A005, McMaster-Carr).
Camcorder Canon Vixia HF R700 Can be replaced by any consumer comcorder.

References

  1. Sturtevant, A. H., Bridges, C. B., Morgan, T. H. The spatial relations of genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 5 (5), 168-173 (1919).
  2. Campos-Ortega, J. A., Hartenstein, V. . The Embryonic Development of Drosophila melanogaster. , (1985).
  3. Hall, J. C. Systems Approaches to Biological Rhythms in Drosophila. Methods in Enzymology. 393, 61-185 (2005).
  4. Luo, L. Rho GTPases in neuronal morphogenesis. Nature reviews. Neuroscience. 1 (3), 173-180 (2000).
  5. Schmucker, D., Clemens, J. C., et al. Drosophila Dscam Is an Axon Guidance Receptor Exhibiting Extraordinary Molecular Diversity. Cell. 101 (6), 671-684 (2000).
  6. Jan, Y. N., Jan, L. Y. HLH proteins, fly neurogenesis, and vertebrate myogenesis. Cell. 75 (5), 827-830 (1993).
  7. Stockinger, P., Kvitsiani, D., et al. Neural circuitry that governs Drosophila male courtship behavior. Cell. 121 (5), 795-807 (2005).
  8. Yu, J. Y., Kanai, M. I., Demir, E., Jefferis, G. S. X. E., Dickson, B. J. Cellular Organization of the Neural Circuit that Drives Drosophila Courtship Behavior. Current biology. 20 (18), 1602-1614 (2010).
  9. Zhou, C., Pan, Y., Robinett, C. C., Meissner, G. W., Baker, B. S. Central Brain Neurons Expressing doublesex Regulate Female Receptivity in Drosophila. Neuron. 83 (1), 149-163 (2014).
  10. Rideout, E. J., Dornan, A. J., Neville, M. C., Eadie, S., Goodwin, S. F. Control of sexual differentiation and behavior by the doublesex gene in Drosophila melanogaster. Nature neuroscience. 13 (4), 458-466 (2010).
  11. Manoli, D. S., Foss, M., Villella, A., Taylor, B. J., Hall, J. C., Baker, B. S. Male-specific fruitless specifies the neural substrates of Drosophila courtship behaviour. Nature. 436 (7049), 395-400 (2005).
  12. Kimura, K. I., Ote, M., Tazawa, T., Yamamoto, D. Fruitless specifies sexually dimorphic neural circuitry in the Drosophila brain. Nature. 438 (7065), 229-233 (2005).
  13. Cachero, S., Ostrovsky, A. D., Yu, J. Y., Dickson, B. J., Jefferis, G. S. X. E. Sexual dimorphism in the fly brain. Current biology. 20 (18), 1589-1601 (2010).
  14. Clowney, E. J., Iguchi, S., Bussell, J. J., Scheer, E., Ruta, V. Multimodal Chemosensory Circuits Controlling Male Courtship in Drosophila. Neuron. 87 (5), 1036-1049 (2015).
  15. Kallman, B. R., Kim, H., Scott, K. Excitation and inhibition onto central courtship neurons biases Drosophila mate choice. eLife. 4, e11188 (2015).
  16. von Philipsborn, A. C., Liu, T., Yu, J. Y., Masser, C., Bidaye, S. S., Dickson, B. J. Neuronal control of Drosophila courtship song. Neuron. 69 (3), 509-522 (2011).
  17. Zhou, C., Franconville, R., Vaughan, A. G., Robinett, C. C., Jayaraman, V., Baker, B. S. Central neural circuitry mediating courtship song perception in male Drosophila. eLife. 4, e08477 (2015).
  18. Kohatsu, S., Koganezawa, M., Yamamoto, D. Female contact activates male-specific interneurons that trigger stereotypic courtship behavior in Drosophila. Neuron. 69 (3), 498-508 (2011).
  19. Kohatsu, S., Yamamoto, D. Visually induced initiation of Drosophila innate courtship-like following pursuit is mediated by central excitatory state. Nature Communications. 6, 6457 (2015).
  20. Fan, P., Manoli, D. S., et al. Genetic and neural mechanisms that inhibit Drosophila from mating with other species. Cell. 154 (1), 89-102 (2013).
  21. Kurtovic, A., Widmer, A., Dickson, B. J. A single class of olfactory neurons mediates behavioural responses to a Drosophila sex pheromone. Nature. 446 (7135), 542-546 (2007).
  22. Ejima, A., Smith, B. P. C., et al. Generalization of Courtship Learning in Drosophila Is Mediated by cis-Vaccenyl Acetate. Current Biology. 17, 599-605 (2007).
  23. Keleman, K., Vrontou, E., Krüttner, S., Yu, J. Y., Kurtovic-Kozaric, A., Dickson, B. J. Dopamine neurons modulate pheromone responses in Drosophila courtship learning. Nature. 489 (7414), 145-149 (2012).
  24. Pan, Y., Baker, B. S. Genetic Identification and Separation of Innate and Experience-Dependent Courtship Behaviors in Drosophila. Cell. 156 (1-2), 236-248 (2014).
  25. Zhang, S. X., Rogulja, D., Crickmore, M. A. Dopaminergic Circuitry Underlying Mating Drive. Neuron. 91 (1), 168-181 (2016).
  26. Bowers, M. B., Van Woert, M., Davis, L. Sexual behavior during L-dopa treatment for Parkinsonism. The American journal of psychiatry. 127 (12), 1691-1693 (1971).
  27. Sacks, O. W. . Awakenings. , (1999).
  28. Dietzl, G., Chen, D., et al. A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature. 448 (7150), 151-156 (2007).
  29. Crickmore, M. A., Vosshall, L. B. Opposing dopaminergic and GABAergic neurons control the duration and persistence of copulation in Drosophila. Cell. 155 (4), 881-893 (2013).
  30. Peng, J., Chen, S., Busser, S., Liu, H., Honegger, T., Kubli, E. Gradual Release of Sperm Bound Sex-Peptide Controls Female Postmating Behavior in Drosophila. Current biology. 15 (3), 207-213 (2005).
  31. Yapici, N., Kim, Y. J., Ribeiro, C., Dickson, B. J. A receptor that mediates the post-mating switch in Drosophila reproductive behaviour. Nature. 451 (7174), 33-37 (2008).
  32. Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. Journal of Visualized Experiments. 36 (36), 1-5 (2010).
  33. Cook, R., Cook, A. The Attractiveness to males of female Drosophila melanogaster: effects of mating, age and diet. Animal behaviour. 23, 521-526 (1975).
  34. Toates, F. M. . Motivational Systems (Problems in the Behavioural Sciences). , (1986).
  35. Hall, J. C. The mating of a fly. Science. 264 (5166), 1702-1714 (1994).
  36. Simpson, J. H. Mapping and manipulating neural circuits in the fly brain. Advances in genetics. 65 (9), 79-143 (2009).
  37. Venken, K. J. T., Simpson, J. H., Bellen, H. J. Genetic Manipulation of Genes and Cells in the Nervous System of the Fruit. Neuron. 72 (2), 202-230 (2011).
  38. Klapoetke, N. C., Murata, Y., et al. Independent optical excitation of distinct neural populations. Nature methods. 11 (3), 338-346 (2014).
  39. Bellen, H. J., Levis, R. W., et al. The BDGP gene disruption project: single transposon insertions associated with 40% of Drosophila genes. 유전학. 167 (2), 761-781 (2004).
  40. Spradling, A. C., Stern, D., et al. The Berkeley Drosophila Genome Project gene disruption project: Single P-element insertions mutating 25% of vital Drosophila genes. 유전학. 153 (1), 135-177 (1999).
  41. Parks, A. L., Cook, K. R., et al. Systematic generation of high-resolution deletion coverage of the Drosophila melanogaster genome. Nature genetics. 36 (3), 288-292 (2004).
  42. Matthews, K. A., Kaufman, T. C., Gelbart, W. M. Research resources for Drosophila: the expanding universe. Nature reviews. Genetics. 6 (3), 179-193 (2005).
  43. Ni, J. Q., Liu, L. P., et al. A Drosophila resource of transgenic RNAi lines for neurogenetics. 유전학. 182 (4), 1089-1100 (2009).
  44. Ni, J. Q., Zhou, R., et al. A genome-scale shRNA resource for transgenic RNAi in Drosophila. Nature. 8 (5), 405-407 (2011).
check_url/kr/55291?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Boutros, C. L., Miner, L. E., Mazor, O., Zhang, S. X. Measuring and Altering Mating Drive in Male Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (120), e55291, doi:10.3791/55291 (2017).

View Video