Summary

El análisis de la superficie celular Adhesión Remodeling en respuesta a la tensión mecánica usando perlas magnéticas

Published: March 08, 2017
doi:

Summary

adherencias de la superficie celular son fundamentales en mechanotransduction, ya que transmiten la tensión mecánica e inician las vías de señalización implicadas en la homeostasis del tejido y el desarrollo. A continuación, presentamos un protocolo para la disección de las vías bioquímicas que se activan en respuesta a la tensión, utilizando microperlas magnéticas recubiertas con ligando y aplicación de la fuerza a los receptores de adhesión.

Abstract

mechanosensitive complejos de adhesión que permiten a las células detectar las propiedades mecánicas de su entorno. Estudios recientes han identificado ambas moléculas de detección de la fuerza en los sitios de adhesión, y factores de transcripción dependiente de la fuerza que regulan la expresión de genes específicos de linaje y conducen salidas fenotípicas. Sin embargo, las redes de señalización de conversión de la tensión mecánica en las vías bioquímicas han sido difícil de alcanzar. Para explorar las vías de señalización dedicadas a la tensión mecánica aplicada a receptor de superficie celular, microperlas superparamagnéticas se pueden utilizar. Aquí se presenta un protocolo para el uso de perlas magnéticas para aplicar fuerzas a las proteínas de adhesión de la superficie celular. Utilizando este enfoque, es posible investigar no sólo las vías de señalización citoplásmica dependiente de la fuerza por diversos enfoques bioquímicos, sino también el remodelado adhesión por aislamiento magnético de los complejos de adhesión unidos a las perlas de ligando-revestido. Este protocolo incluye la preparación de ligando-coperlas superparamagnéticas ATED, y la aplicación de fuerzas de tracción definen seguido de análisis bioquímicos. Además, ofrecemos una muestra representativa de los datos que demuestran que la tensión aplicada a la adhesión a base de integrina desencadena remodelación adherencia y altera la fosforilación de la proteína tirosina.

Introduction

En metazoos, la tensión mecánica dirige el desarrollo de tejido y la homeostasis a través de la regulación de una gran variedad de procesos celulares tales como la proliferación, la diferenciación y la supervivencia 1, 2. tensión mecánica puede surgir de la matriz extracelular o puede ser generada por las células adherentes, que muestra su ambiente extracelular a través de la maquinaria contráctil actomiosina que tira en la matriz extracelular y las sondas de su rigidez a través de moléculas de tensión y minúsculas. En respuesta a la tensión, las proteínas de adhesión mechanosensitive experimentan cambios conformacionales que desencadenan cascadas de señalización complejos. A su vez, estas vías de señalización orquestan un mechanoresponse abarca la proliferación, diferenciación y supervivencia que ajusta el comportamiento celular al entorno extracelular. Tales procesos pueden ser resueltas en un período de tiempo corto plazo (segundos o minutos) para alimentar rápidamente de nuevo en el bucle de la mecha notransduction mediante la modificación de las estructuras mechanosensitive. Por ejemplo, las adherencias a base de integrina refuerzan en respuesta a la tensión a través mediada por Rho GTPasa remodelación del citoesqueleto 3, 4, 5. Paralelamente, otras vías de señalización se activan durante horas y días para controlar los programas genéticos que finalmente afectan el destino celular 6. Considerando que, muchos estudios han puesto de manifiesto el efecto de la rigidez de la matriz en el determinismo celular y desarrollo de la enfermedad 1, 2, los mecanismos moleculares precisos de mechanotransduction adhesión mediada siguen siendo difícil de alcanzar.

Diversos enfoques se han desarrollado para estudiar los efectos de las fuerzas generadas por células o fuerzas externas sobre el comportamiento celular, incluyendo los sistemas de flujo, transferencia de energía por resonancia de fluorescencia (FRET) sensores -tension 7,lass = "xref"> 8, 9, sustratos compatibles con pinzas magnéticas, las pinzas ópticas 10 y microscopía de fuerza atómica (AFM) 11. Aquí se presenta un protocolo utilizando perlas superparamagnéticas para caracterizar las vías mechanotransduction en respuesta a las fuerzas de tensión aplicadas a los receptores de adhesión específicas. perlas superparamagnéticas son partículas que magnetizar reversiblemente cuando se coloca en un campo magnético. Una vez recubierto con un ligando para un receptor específico, estas perlas proporcionan una poderosa herramienta para estudiar los efectos de aplicación de la fuerza extracelular. Este método ha sido validado por varios estudios 3, 5, 12 17 y presentan la ventaja de facilitar en gran medida el análisis bioquímico de las células adherentes. El uso de perlas magnéticas recubiertas de colágeno similares, seguido de análisis bioquímico, los primeros trabajos reportó un incremento enla fosforilación de tirosina de proteínas y la activación de RhoA en respuesta a la tensión 5, 18, 19. El método descrito a continuación también se ha utilizado con fibronectina (FN) perlas recubiertas para caracterizar las vías de señalización corriente abajo de tensión aplicada a las integrinas 3. En este estudio, Guilluy et al. mostró que la tensión activa RhoA a través de la contratación de los dos factores de intercambio de nucleótidos de guanina (GEFs), LARG y GEF-H1, a los complejos de adhesión integrina. Desde que, otros estudios han demostrado que el GEF-H1 es reclutado para los complejos de adhesión en respuesta a la tensión generada por células utilizando diferentes métodos 20, 21, lo que demuestra la robustez de la metodología descrita aquí. Como resultado, RhoA activado se muestra para promover la adhesión de refuerzo, a través de la remodelación del citoesqueleto. Este sistema también se utilizó para explorar tensión aplicada to receptores de adhesión celular / móvil. La aplicación de fuerzas sobre perlas magnéticas recubiertas con el dominio extracelular de cadherina E inducida por un aumento en el reclutamiento vinculina de manera similar a los complejos de adhesión integrina asociada 12. Collins y sus colegas observaron que la aplicación de tensión a PECAM-1 promueve la integrina y la activación de RhoA 13. Otro enfoque experimental usando perlas magnéticas es el estudio de tensión aplicada a los núcleos aislados. El uso de perlas recubiertas con anticuerpos contra la proteína de envoltura nuclear nesprin-1, los complejos de la envoltura nuclear se purificaron para mostrar que están regulados de forma dinámica en respuesta a la tensión mecánica 22. Estos resultados apoyan la omnipotencia de este método en el estudio de las vías mechanotransduction. Por otra parte, mientras que los sistemas de flujo de fuerza de tracción o estimulan los procesos celulares generales, perlas magnéticas se dirigen específicamente a un receptor de la adhesión celular mediante el uso de cualquiera de los ligandos del receptor <sup class = "xref"> 3 o anticuerpos monoclonales contra el receptor de la superficie celular 13, 15.

Otra ventaja de este método es el aislamiento de los complejos de adhesión a través de un procedimiento de purificación de afinidad de ligando sencillo. Es bien conocido que la adición de perlas de ligando recubierto a las células se une receptores de adhesión e induce el reclutamiento de varias proteínas de adhesión 23. Además aplicación de fuerzas a perlas magnéticas recubiertas con ligando convierte a estos complejos de adhesión en las plataformas macromoleculares que media en varias vías de señalización de tensión dependiente de 4, 24. La lisis celular seguido de la concentración de perlas usando un imán permite el aislamiento de las plataformas de adhesión. Otros métodos utilizados para purificar los complejos de adhesión ya se han utilizado en células adherentes. Combinan reticulación química para conservar las interacciones proteína-proteínay una etapa de lisis celular por el detergente y el flujo de tensiones o sonicación 20, 21, 25, 26, 27, 28. El paso final es la recogida de las membranas plasmáticas ventrales resultantes que contienen los complejos de adhesión. A diferencia de estos métodos, perlas magnéticas permiten un mayor nivel de purificación de los complejos de adhesión celular mediante la orientación selectiva de una familia específica de los receptores de adhesión. Las perlas magnéticas se han utilizado ya para purificar los complejos de adhesión en las células no adherentes acoplados a microperlas ligando recubierto 29, 30. El método descrito a continuación imita situaciones biológicas, donde se aplica la fuerza durante un período sostenido corto (de segundos a minutos). Por lo tanto, proporciona una herramienta poderosa para la investigación de tanto la composición molecular de los complejos de adhesión purificadas ylas vías de señalización corriente abajo mechanosensitive.

Aquí se presenta un protocolo experimental detallado para el uso de perlas magnéticas para aplicar fuerzas de tracción a las proteínas de la superficie de adherencia. Un imán de neodimio permanente se coloca en la parte superior de la superficie de placa de cultivo. La cara del polo del imán se coloca a una altura de 6 mm, de modo que la fuerza en una sola perla magnética 2,8 micras es constante (alrededor de 30 a 40 pN) 31. La duración de la estimulación de tensión se determina por el operador en función de la molécula de interés y su escala de tiempo de activación. Las células se lisaron por último, los complejos de adhesión se purifican mediante separación de perlas usando un imán y análisis bioquímicos se procesan. Este protocolo incluye la preparación de perlas superparamagnéticas ligando recubierto, y la aplicación de tensión a través de imán seguido de análisis bioquímicos. Además, ofrecemos una muestra representativa de los datos que demuestran que la tensión aplicada a la ADH a base de integrinaesions induce remodelación adhesión y altera la fosforilación de tirosina de proteínas.

Protocol

1. Ligando Conjugación con perlas magnéticas Nota: la conjugación del ligando se lleva a cabo usando perlas activadas con tosilo superparamagnéticas con un 2,8 m de diámetro (concentración de la solución de stock 10 8 cuentas / ml, 30 mg de perlas / ml). El siguiente protocolo se basa en muestras de aproximadamente 2 x 10 5 células, que corresponden a las células MRC-5 cultivadas a 80% de confluencia en una placa de cultivo de tejidos de 60 mm. Ajuste el volumen …

Representative Results

El esquema de la técnica se ilustra en la Figura 1a. Después de la conjugación ligando, perlas magnéticas se incubaron con las células durante 20 min, y a continuación, un imán permanente se utiliza para aplicar fuerzas de tracción de alrededor de 30 a 40 pN para diversas cantidades de tiempo. La Figura 1b muestra 2.8 micras perlas magnéticas recubiertas con FN con destino a los receptores de adhesión celular MRC5. Los pasos de lavado de perlas sup…

Discussion

El método descrito aquí constituye un enfoque directo para aplicar tensión a los receptores de adhesión de la superficie celular y permitir su posterior purificación. Sin embargo, algunas medidas son fundamentales para llevar a cabo la purificación de adhesión eficiente y la optimización potencial se puede hacer en función de los receptores de adhesión específicas. Presentamos los posibles problemas que el usuario pueda encontrar a continuación.

Se utilizó perlas magnéticas de …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

CG es apoyado por becas de la Agencia Nacional de Investigación (ANR-13-JSV1-0008), procedentes del Séptimo Programa Marco de la Unión Europea (Marie Curie Integración Carrera n˚8304162) y de Consejo Europeo de Investigación (CEI) a través del horizonte de la Unión Europea 2020 programa de innovación (CEI para n˚639300 subvención) la investigación y.

Materials

Neodymium magnets (on the upper face of 60 mm dish) K&J Magnetics, Inc DX88-N52 grade N52 dimension: 1 1/2" dia. x 1/2" thick
Neodymium magnets (on the lower face of 60 mm dish) K&J Magnetics, Inc D84PC-BLK grade N42 dimension: 1/2" dia. x 1/4" thick Black Plastic Coated 
Dynabeads M280 Tosylactivated Thermofisher 14203 superparamagnetic beads 
DynaMag-2 Magnet Thermofisher 12321D
Fibronectin  Sigma-Aldrich F1141-5MG Fibronectin from bovine plasma
Poly-D-Lysine Sigma-Aldrich P7280-5MG
Apo-Transferrin Sigma-Aldrich T1428-50MG Bovine Apo-Transferrin
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7906-500G
DMEM high glucose, GlutaMAX supplement, pyruvate  Life Technologies 31966-021 DMEM+GlutaMAX-I 500 ml 
60*15 mm culture dish Falcon 353004

References

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. L. . Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. DuFort, C. C., Paszek, M. J., Weaver, V. M. Balancing forces: architectural control of mechanotransduction. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (5), 308-319 (2011).
  3. Guilluy, C., et al. The Rho GEFs LARG and GEF-H1 regulate the mechanical response to force on integrins. Nat Cell Biol. 13 (6), 722-727 (2011).
  4. Matthews, B. D., Overby, D. R., Mannix, R., Ingber, D. E. Cellular adaptation to mechanical stress: role of integrins, Rho, cytoskeletal tension and mechanosensitive ion channels. J Cell Sci. 119 (3), 508-518 (2006).
  5. Zhao, X. -. H., et al. Force activates smooth muscle alpha-actin promoter activity through the Rho signaling pathway. J Cell Sci. 120 (Pt 10), 1801-1809 (2007).
  6. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  7. Austen, K., Kluger, C., Freikamp, A., Chrostek-Grashoff, A., Grashoff, C. Generation and analysis of biosensors to measure mechanical forces within cells. Meth Mol Biol. 1066, 169-184 (2013).
  8. Grashoff, C., et al. Measuring mechanical tension across vinculin reveals regulation of focal adhesion dynamics. Nature. 466 (7303), 263-266 (2010).
  9. Pelham, R. J., Wang, Y. l. . Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci USA. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  10. Choquet, D., Felsenfeld, D. P., Sheetz, M. P. Extracellular matrix rigidity causes strengthening of integrin-cytoskeleton linkages. Cell. 88 (1), 39-48 (1997).
  11. Chaudhuri, O., Parekh, S. H., Lam, W. A., Fletcher, D. A. Combined atomic force microscopy and side-view optical imaging for mechanical studies of cells. Nat Meth. 6 (5), 383-387 (2009).
  12. Bays, J. L., et al. Vinculin phosphorylation differentially regulates mechanotransduction at cell-cell and cell-matrix adhesions. J Cell Biol. 205 (2), 251-263 (2014).
  13. Collins, C., et al. Localized tensional forces on PECAM-1 elicit a global mechanotransduction response via the integrin-RhoA pathway. Curr Biol. 22 (22), 2087-2094 (2012).
  14. Gordon, W. R., et al. Mechanical Allostery: Evidence for a Force Requirement in the Proteolytic Activation of Notch. Dev Cell. 33 (6), 729-736 (2015).
  15. Lessey-Morillon, E. C., et al. The RhoA guanine nucleotide exchange factor, LARG, mediates ICAM-1-dependent mechanotransduction in endothelial cells to stimulate transendothelial migration. J Immunol. 192 (7), 3390-3398 (2014).
  16. Osborne, L. D., et al. TGF-β regulates LARG and GEF-H1 during EMT to affect stiffening response to force and cell invasion. Mol Biol Cell. 25 (22), 3528-3540 (2014).
  17. Scott, D. W., Tolbert, C. E., Burridge, K. Tension on JAM-A activates RhoA via GEF-H1 and p115 RhoGEF. Mol Biol Cell. 27 (9), 1420-1430 (2016).
  18. Glogauer, M., Ferrier, J., McCulloch, C. A. Magnetic fields applied to collagen-coated ferric oxide beads induce stretch-activated Ca2+ flux in fibroblasts. Am J Physiol – Cell Physiol. 269 (5), C1093-C1104 (1995).
  19. Glogauer, M., et al. Calcium ions and tyrosine phosphorylation interact coordinately with actin to regulate cytoprotective responses to stretching. J Cell Sci. 110 (Pt 1), 11-21 (1997).
  20. Kuo, J. -. C., Han, X., Hsiao, C. -. T., Yates, J. R., Waterman, C. M. Analysis of the myosin-II-responsive focal adhesion proteome reveals a role for β-Pix in negative regulation of focal adhesion maturation. Nat Cell Biol. 13 (4), 383-393 (2011).
  21. Schiller, H. B., et al. β1- and αv-class integrins cooperate to regulate myosin II during rigidity sensing of fibronectin-based microenvironments. Nat Cell Biol. 15 (6), 625-636 (2013).
  22. Guilluy, C., et al. Isolated nuclei adapt to force and reveal a mechanotransduction pathway in the nucleus. Nat Cell Biol. 16 (4), 376-381 (2014).
  23. Plopper, G. E., McNamee, H. P., Dike, L. E., Bojanowski, K., Ingber, D. E. Convergence of integrin and growth factor receptor signaling pathways within the focal adhesion complex. Mol Biol Cell. 6 (10), 1349-1365 (1995).
  24. Roca-Cusachs, P., Gauthier, N. C., Del Rio, ., A, M. P., Sheetz, Clustering of alpha(5)beta(1) integrins determines adhesion strength whereas alpha(v)beta(3) and talin enable mechanotransduction. Proc Natl Acad Sci USA. 106 (38), 16245-16250 (2009).
  25. Ajeian, J. N., et al. Proteomic analysis of integrin-associated complexes from mesenchymal stem cells. Proteomics Clin Appl. 10 (1), 51-57 (2016).
  26. Horton, E. R., Astudillo, P., Humphries, M. J., Humphries, J. D. Mechanosensitivity of integrin adhesion complexes: Role of the consensus adhesome. Exp Cell Res. , (2015).
  27. Jones, M. C., et al. Isolation of integrin-based adhesion complexes. Curr Protoc Cell Biol. 66, 9.8.1-9.8.15 (2015).
  28. Ng, D. H. J., Humphries, J. D., Byron, A., Millon-Frémillon, A., Humphries, M. J. Microtubule-dependent modulation of adhesion complex composition. PloS One. 9 (12), e115213 (2014).
  29. Byron, A., Humphries, J. D., Bass, M. D., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of integrin adhesion complexes. Sci Sign. 4 (167), pt2 (2011).
  30. Byron, A., Humphries, J. D., Craig, S. E., Knight, D., Humphries, M. J. Proteomic analysis of α4β1 integrin adhesion complexes reveals α-subunit-dependent protein recruitment. Proteomics. 12 (13), 2107-2114 (2012).
  31. Marjoram, R. J., Guilluy, C., Burridge, K. Using magnets and magnetic beads to dissect signaling pathways activated by mechanical tension applied to cells. Methods. , (2015).
  32. Pasapera, A. M., Schneider, I. C., Rericha, E., Schlaepfer, D. D., Waterman, C. M. Myosin II activity regulates vinculin recruitment to focal adhesions through FAK-mediated paxillin phosphorylation. J Cell Biol. 188 (6), 877-890 (2010).
  33. Sawada, Y., Sheetz, M. P. Force transduction by Triton cytoskeletons. J Cell Biol. 156 (4), 609-615 (2002).
  34. Grinnell, F., Geiger, B. Interaction of fibronectin-coated beads with attached and spread fibroblasts. Binding, phagocytosis, and cytoskeletal reorganization. Exp Cell Res. 162 (2), 449-461 (1986).
  35. Schroeder, F., Kinden, D. A. Measurement of phagocytosis using fluorescent latex beads. J Biochem Biophys Meth. 8 (1), 15-27 (1983).
  36. Hoffman, B. D., Grashoff, C., Schwartz, M. A. Dynamic molecular processes mediate cellular mechanotransduction. Nature. 475 (7356), 316-323 (2011).
  37. Seo, D., et al. A Mechanogenetic Toolkit for Interrogating Cell Signaling in Space and Time. Cell. 165 (6), 1507-1518 (2016).
check_url/kr/55330?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Millon-Frémillon, A., Aureille, J., Guilluy, C. Analyzing Cell Surface Adhesion Remodeling in Response to Mechanical Tension Using Magnetic Beads. J. Vis. Exp. (121), e55330, doi:10.3791/55330 (2017).

View Video