Summary

Одновременная оценка церебральной гемодинамики и свойств рассеяния света<em> В Vivo</em> Мозга крысы с помощью мультиспектральных диффузной отражательной визуализации

Published: May 07, 2017
doi:

Summary

Одновременная оценка церебральной гемодинамики и легких рассеивающих свойств в естественных условиях ткани головного мозга крыс продемонстрировано с использованием обычной многоспектральных диффузного отражения системы формирования изображения.

Abstract

The simultaneous evaluation of cerebral hemodynamics and the light scattering properties of in vivo rat brain tissue is demonstrated using a conventional multispectral diffuse reflectance imaging system. This system is constructed from a broadband white light source, a motorized filter wheel with a set of narrowband interference filters, a light guide, a collecting lens, a video zoom lens, and a monochromatic charged-coupled device (CCD) camera. An ellipsoidal cranial window is made in the skull bone of a rat under isoflurane anesthesia to capture in vivo multispectral diffuse reflectance images of the cortical surface. Regulation of the fraction of inspired oxygen using a gas mixture device enables the induction of different respiratory states such as normoxia, hyperoxia, and anoxia. A Monte Carlo simulation-based multiple regression analysis for the measured multispectral diffuse reflectance images at nine wavelengths (500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730, and 760 nm) is then performed to visualize the two-dimensional maps of hemodynamics and the light scattering properties of the in vivo rat brain.

Introduction

Многоспектральное диффузное отражение изображение является наиболее распространенным методом получения пространственной карты собственных оптических сигналов (IOSs) в кортикальной ткани. IOSs наблюдается в головном мозге в естественных условиях в основном относится к трем явлениям: вариации в поглощении света и рассеивающие свойства из – за корковую гемодинамику, вариации в поглощении в зависимости от уменьшения или окисления цитохромов в митохондриях, и вариация в легких рассеивающих свойствах , индуцированных морфологическими изменения 1.

Свет в видимой области спектра (VIS), чтобы в ближней инфракрасной области (NIR) области спектра эффективно поглощается и рассеивается биологической ткани. Диффузное отражение спектр в естественных условиях мозга характеризуются спектрами поглощения и рассеяния. Уменьшенные коэффициенты рассеяния ц S 'мозговой ткани в результате диапазона длин волн VIS-к-НКА в однообразном рассеянии экспоната спектраМеньших величин при более длинных волнах. Спектр приведенных спектров рассеяния μ s '(λ) можно аппроксимировать в виде функции степенного закона 2 , 3 при μ s ' (λ) = a × λ -b . Сила рассеяния b связана с размером биологических рассеивателей в живой ткани 2 , 3 . Морфологические изменения ткани и снижение жизнеспособности живой ткани коры могут влиять на размер биологических рассеивателей 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 .

Оптическая система для мультиспектральной диффузно-отражательной визуализации может быть легко построена на лампе накаливания liGht, простые оптические компоненты и монохроматическое устройство с зарядовой связью (CCD). Поэтому для оценки корковой гемодинамики и / или тканевой морфологии 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 использовались различные алгоритмы и оптические системы для мультиспектрального диффузного отражения.

Метод, описанный в этой статье, используется для визуализации как гемодинамики, так и светорассеяния тканей головного мозга крысы in vivo с использованием традиционной мультиспектральной диффузно-отражательной системы формирования изображения. Преимущества этого метода над альтернативными методиками – это способность оценивать пространственно-временные изменения как в мозговой гемодинамике, так и в кортикальной тканиморфологии, а также его применимость к различным моделям дисфункции мозга животных. Таким образом, этот метод будет целесообразен для исследований травматического повреждения головного мозга, эпилептического припадка, инсульта и ишемии.

Protocol

Уход за животными, подготовка и экспериментальные протоколы были одобрены Исследовательским комитетом животных Токийского университета сельского хозяйства и технологий путем. По этой методике, крыса находится в контролируемой среде (24 ° С, 12 ч свет / темнота цикла), с пищей и водой , до?…

Representative Results

Характерные спектральные изображения диффузного отражения , полученной из в естественных мозга крыс показаны на фигуре 3. Изображения на 500, 520, 540, 560, 570, и 580 нм четко визуализировать плотную сеть кровеносных сосудов в коре головного мозга. Ухудшение контр…

Discussion

Наиболее важным шагом в этом протоколе является удаление из разреженной области черепа, чтобы сделать черепной окно; это должно быть выполнено тщательно, чтобы избежать неожиданного кровотечения. Этот шаг важен для получения высококачественного Multispectral диффузного отражения изображе…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Part of this work was supported by a Grant-in-Aid for Scientific Research (C) from the Japanese Society for the Promotion of Science (25350520, 22500401, 15K06105) and the US-ARMY ITC-PAC Research and Development Project (FA5209-15-P-0175).

Materials

150-W halogen-lamp light source Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan LA-150SAE
Light guide Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan LGC1-5L1000
Collecting lens Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan SH-F16
Interference filters l@500nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65088
Interference filters l@520nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65093
Interference filters l@540nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65096
Interference filters l@560nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #67766
Interference filters l@570nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #67767
Interference filters l@580nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65646
Interference filters l@600nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65102
Interference filters l@730nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65115
Interference filters l@760nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #67777
Motorized filter wheel  Andover Corporation, NH, USA FW-MOT-12.5
16-bit cooled CCD camera Bitran, Japan BS-40
Video zoom lens Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan VZMTM300i
Spectralon white standard with 99% diffuse reflectance Labsphere Incorporated, North Sutton, NH, USA SRS-99-020

References

  1. Bonhoeffer, T., Grinvald, A., Toga, A. W., Mazziotta, J. C. Optical Imaging based on intrinsic signals: the methodology. Brain mapping; the methods. , 55-97 (1996).
  2. Mourant, J. R., et al. Mechanisms of light scattering from biological cells relevant to noninvasive optical-tissue diagnostics. Appl. Opt. 37 (16), 3586-3593 (1998).
  3. Abookasis, D., et al. Imaging cortical absorption, scattering, and hemodynamic response during ischemic stroke using spatially modulated near-infrared illumination. J. Biomed. Opt. 14 (2), 024033 (2009).
  4. Lipton, P. Ischemic cell death in brain neuron. Physiol. Rev. 79 (4), 1432-1568 (1999).
  5. Jarvis, C. R., Anderson, T. R., Andrew, R. D. Anoxic depolarization mediates acute damage independent of glutamate in neocortical brain slices. Cereb. Cortex. 11 (3), 249-259 (2001).
  6. Joshi, I., Andrew, R. D. Imaging anoxic depolarization during ischemia-like conditions in the mouse hemi-brain slice. J. Neurophysiol. 85 (1), 414-424 (2001).
  7. Polischuk, T. M., Jarvis, C. R., Andrew, R. D. Intrinsic optical signaling denoting neuronal damage in response to acute excitotoxic insult in the hippocampal slice. Neurobiol. Dis. 4 (6), 423-437 (1998).
  8. Jarvis, C. R., Lilge, L., Vipond, G. J., Andrew, R. D. Interpretation of intrinsic optical signals and calcein fluorescence during acute excitotoxic insult in the hippocampal slice. NeuroImage. 10 (4), 357-372 (1999).
  9. Obeidat, A. S., Jarvis, C. R., Andrew, R. D. Glutamate does not mediate acute neuronal damage after spreading depression induced by O2/glucose deprivation in the hippocampal slice. J. Cereb. Blood Flow Metab. 20 (2), 412-422 (2000).
  10. Dunn, A. K., Devor, A., Dale, A. M., Boas, D. A. Spatial extent of oxygen metabolism and hemodynamic changes during functional activation of the rat somatosensory cortex. Neuroimage. 27 (2), 279-290 (2005).
  11. Jones, M., Berwick, J., Johnston, D., Mayhew, J. Concurrent optical imaging spectroscopy and laser-Doppler flowmetry: the relationship between blood flow, oxygenation, and volume in rodent barrel cortex. Neuroimage. 13 (6), 1002-1015 (2001).
  12. Jones, M., Berwick, J., Mayhew, J. Changes in blood flow, oxygenation, and volume following extended stimulation of rodent barrel cortex. Neuroimage. 15 (3), 474-487 (2002).
  13. Zhou, C., et al. Diffuse optical correlation tomography of cerebral blood flow during cortical spreading depression in rat brain. Opt. Express. 14 (3), 1125-1144 (2006).
  14. Bouchard, M. B., Chen, B. R., Burgess, S. A., Hillman, E. M. C. Ultra-fast multispectral optical imaging of cortical oxygenation, blood flow, and intracellular calcium dynamics. Opt. Express. 17 (18), 15670-15678 (2009).
  15. Jones, P. B., et al. Simultaneous multispectral reflectance imaging and laser speckle flowmetry of cerebral blood flow and oxygen metabolism in focal cerebral ischemia. J. Biomed. Opt. 13 (4), 044007 (2008).
  16. Kawauchi, S., et al. Diffuse light reflectance signals as potential indicators of loss of viability in brain tissue due to hypoxia: charge-coupled-device-based imaging and fiber-based measurement. J. Biomed. Opt. 18 (1), 015003 (2013).
  17. Yoshida, K., et al. Multispectral imaging of absorption and scattering properties of in vivo exposed rat brain using a digital red-green-blue camera. J. Biomed. Opt. 20 (5), 051026 (2015).
  18. Nishidate, I., et al. Evaluation of Cerebral Hemodynamics and Tissue Morphology of In Vivo Rat Brain Using Spectral Diffuse Reflectance Imaging. Appl. Spectrosc. , (2016).
  19. Wang, L. -. H., Jacques, S. L., Zheng, L. -. Q. MCML-Monte Carlo modeling of photon transport in multi-layered tissues. Comput. Methods Programs Biomed. 47 (2), 131-146 (1995).
  20. Tsytsarev, V., Premachandra, K., Takeshita, D., Bahar, S. Imaging cortical electrical stimulation in vivo: Fast intrinsic optical signal versus voltage-sensitive dyes. Opt. Lett. 33 (9), 1032-1034 (2008).
  21. Arnold, T., Biasio, M. D., Leitner, R. Hyper-spectral video endoscope for intra-surgery tissue classification using auto-fluorescence and reflectance spectroscopy. Proc. SPIE. 8087, 808711 (2011).
  22. Basiri, A., et al. Use of a multi-spectral camera in the characterization of skin wounds. Opt. Express. 18 (4), 3244-3257 (2010).
  23. Nishidate, I., Maeda, T., Niizeki, K., Aizu, Y. Estimation of melanin and hemoglobin using spectral reflectance images reconstructed from a digital RGB image by the Wiener estimation method. Sensors. 13 (6), 7902-7915 (2013).
check_url/kr/55399?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nishidate, I., Mustari, A., Kawauchi, S., Sato, S., Sato, M. Simultaneous Evaluation of Cerebral Hemodynamics and Light Scattering Properties of the In Vivo Rat Brain Using Multispectral Diffuse Reflectance Imaging. J. Vis. Exp. (123), e55399, doi:10.3791/55399 (2017).

View Video