Summary

Un<em> In Vitro</em> Órgano Cultura Modelo Murino del disco intervertebral

Published: April 11, 2017
doi:

Summary

cultivo de órgano entero del disco intervertebral (DIV) conserva la matriz extracelular nativa, fenotipos de células, y las interacciones celulares-matriz. A continuación se describe un sistema de cultivo IVD utilizando lumbar del ratón y IVD caudales en sus unidades funcionales de la columna vertebral y varias aplicaciones que utilizan este sistema.

Abstract

disco (IVD) degeneración intervertebral es un contribuyente significativo al dolor de espalda baja. El IVD es una articulación fibrocartilaginous que sirve para transmitir y amortiguar las cargas en la columna vertebral. El IVD consiste en una pulposo rica en proteoglicanos núcleo (NP) y un anillo de fibrosis rico en colágeno (AF) insertado por placas extremas cartilaginosas. Junto con las vértebras adyacentes, la estructura de vértebras-IVD forma una unidad columna vertebral funcional (FSU). Estas microestructuras contienen tipos de células únicas, así como matrices extracelulares únicos. cultivo de órgano entero de la FSU conserva la matriz extracelular nativa, fenotipos de diferenciación celular, y las interacciones celulares-matriz. Por lo tanto, las técnicas de cultivo de órganos son particularmente útiles para la investigación de los complejos mecanismos biológicos de la IVD. A continuación, describimos un enfoque de alto rendimiento para el cultivo de toda UFA ratón lumbar que proporciona una plataforma ideal para el estudio de los mecanismos y las terapias de enfermedades para el IVD. Además, describimos saplicaciones everal que utilizan este método de cultivo de órganos para llevar a cabo estudios adicionales incluyendo imágenes microCT contraste mejorado y tridimensionales de alta resolución de elementos finitos modelado de la IVD.

Introduction

El dolor lumbar (LBP) es el factor principal para la discapacidad global y la pérdida de productividad en el lugar de trabajo, y sólo los estadounidenses gastan más de 50 mil millones de dólares en el tratamiento LBP 1. Aunque prevalece, la etiología del dolor lumbar sigue siendo compleja y multifactorial. Sin embargo, el disco intervertebral (DIV) degeneración es uno de los factores de riesgo más importantes para la LBP 2.

El IVD está hecho de tres microestructuras: la fibrosis exterior del anillo (AF), el núcleo interior pulposo (NP), y dos placas terminales cartilaginosas ese sándwich toda la estructura proximal y distal 3. Con el envejecimiento y la degeneración, los componentes IVD cambian estructuralmente, de composición, y mecánicamente 4. Estos cambios incluyen la pérdida de proteoglicanos y la hidratación de la NP, disminución de la altura del disco, y se deterioró competencia mecánica 5. Estas alteraciones sona menudo acompañada de citoquinas que promueven una respuesta inflamatoria, así como los neutrófilos y de la raíz dorsal intrusión ganglio en el espacio articular culminando en una cascada de acontecimientos que conducen a síntomas de dolor lumbar 6.

El estudio de los mecanismos de degeneración IVD es un reto en los seres humanos, ya que a menudo no es posible aislar la causa de la degeneración antes de la aparición de dolor de espalda baja. Por lo tanto, un enfoque reduccionista de simplificar el sistema experimental hasta el órgano IVD permite mecanicista puesta a punto de las variables causales y examinar sus efectos aguas abajo 5. El sistema se reduce a solamente la población celular nativa y que rodea a la matriz extracelular, lo que permite la interpretación directa de los efectos de los estímulos externos sobre la degeneración IVD. Además, el coste más bajo y la escalabilidad de modelos murinos, así como el gran número de animales modificados genéticamente 7, permiten tque la detección rápida de los mecanismos dirigidos degenerativas IVD y terapias potenciales. A continuación, describimos un sistema de cultivo de órganos murino en el que IVD estabilidad celular y tisular se mantiene más de 21 días, con el foco específico dado a patrones homeostáticos, mecánicos, estructurales e inflamatorias las IVD. Usando este método, controlamos cambios funcionales los IVDs' en un modelo de lesión inducida por puñalada 8 para entender los mecanismos detrás de la degeneración del disco. Además, describimos varias aplicaciones de este método de cultivo de órganos para llevar a cabo estudios adicionales incluyendo imágenes microCT contraste mejorado y de alta resolución de modelado tridimensional de la IVD.

Protocol

Todos los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con la Universidad de Washington en el Comité de Estudios en animales St. Louis. 1. Los animales Obtener dos cepas de ratones: 10-semanas de edad BALB / c (n = 6, BALB-M, BALB / cAnNTac) y 10 semanas de factor nuclear animales reportero kappa-B-luciferasa de edad (NF-κβ-luc) criados en una BALB / c de fondo (n = 6, BALB / c-Tg (Rela-luc) 31Xen). Antes de la disección, la eutanasia a los animales con CO <sub…

Representative Results

Las figuras 2-3 muestran los resultados representativos de la distribución de proteoglicanos, la expresión de NF-KB, la rigidez, la viscosidad, la altura del disco, y el peso húmedo para IVDs de ratón en cultivo. Si se cultivan adecuadamente, los parámetros IVD del grupo de control no debe ser significativamente diferente del grupo fresco. Si el cultivo está infectado o comprometido de otro modo, el grupo de control será diferente del grupo fresco, especialmente en la expresión de NF-KB y la dis…

Discussion

Este protocolo describe un cultivo de órganos de la murino FSU con énfasis en el seguimiento de los cambios biológicos en el IVD. El mantenimiento con éxito de estos cultivos requiere técnicas estériles cuidadosas. En particular, la disección de los pasos 2.1 a 2.6 y la cultura los pasos 3.1 a 3.6 requieren un cuidado especial para asegurar que se mantengan las condiciones estériles, y estos pasos se debe realizar preferiblemente en una sala de procedimiento aislado con un flujo …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por la Universidad de Washington Centro de Investigación musculoesqueléticos (NIH P30 AR057235), Molecular Imaging Center (NIH P50 CA094056), Mecanobiología Formación Grant (NIH 5T32EB018266), NIH R21AR069804, y los NIH K01AR069116. Los autores desean agradecer a Patrick Wong por sus contribuciones en la recolección de datos.

Materials

96 well plate Midwest Scientific TP92096 Used for biochemical assays
24 well plate Midwest Scientific TP92024 Used for organ culture
25 ml pipettes Midwest Scientific TP94024 Used for organ culture
10 ml pipettes Midwest Scientific TP94010 Used for organ culture
5 ml pipettes Midwest Scientific TP94005 Used for organ culture
500 ml bottle top filters, 22um Midwest Scientific TP99505 Used for filter media
10 ul pipette tips Midwest Scientific NP89140098 Used for biochemical assays
200 ul pipette tips Midwest Scientific NP89140900 Used for biochemical assays
1000 ul pipette tips Midwest Scientific NP89140920 Used for biochemical assays
DMEM /F-12 Invitrogen 11330032 Used for culture media
Optiray 350 Guebert 19133341 Used for contrast enhanced microCT
Fetal Bovine Serum Sigma F2442 Used for culture media
Penicillin Streptomycin  Sigma P4333 Used for culture media
Tetrazolium Blue Chloride Sigma T4375 Used for biochemical assays
D-Luciferin Sigma L6152 Used for bioluminescence imaging
Chondroitin Sulfate Sigma C9819 Used for biochemical assays
10% Phosphomolybdic Acid Solution Sigma HT152 Used for contrast enhanced microCT
Safranin O Sigma S8884 diluted to .1% concentration (in water)
Fast Green FCF Sigma F7258 .001% concentration
Papain from papaya latex Sigma  P3125 Used for biochemical assays
DAPI Sigma-Aldrich D9542 Nucleic acid staining
Cyanoacrylate Glue Loctite 234790 Adhesive 
1.5 ml Microcentrifuge Tubes  Fischer Scientific S348903 Used for biochemical assays
Big Equipment
BioDent ActiveLife For mechanical testing
Cytation 5 Biotek Spectrophotometer
AxioCam503 Carl Zeiss AG Microscope
VivaCT40 Scanco MicroCT
Analytical balance Denver Instrument Company A-200DS Analytical balance
Incubator HERAcell 150i Thermo Scientific Organ Culture
Dissection Scope VistaVision Used during dissection
Laser Micrometer Keyence LK-081 Measuring disc height
Microcentrifuge 5810 R Eppendorf Used for biochemical assays
Microtome Leica  RM2255 Used for histology
Software
Prism 7 GraphPad For statistics
MATLAB R2014a Mathworks For modeling
Osiri-LXIV Pixmeo Open Source
MeshLab v1.3.3 Visual Computing Lab – ISTI – CNR Open Source
PreView/FEBio 2.3 Utah MRL & Columbia MBL Open Source
ImageJ NIH
Microsoft Excel Windows
Dissection Tools
Cohan-Vannas Spring Scissors  Fine Science Tools   15000-02 Or any nice pair of spring scissors
Fine Scissors – Sharp  (small) Fine Science Tools   14060-09
Fine Scissors – Sharp  (larger) Fine Science Tools   14060-11
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools   11252-40 At least 2; can also use #3 
Extra Fine Graefe Forceps, serrated Fine Science Tools   11150-10 At least 2
Micro-Adson Forceps, serrated World Precision Instruments 503719-12
Micro-Adson Forceps, teeth World Precision Instruments 501244
Scalpel Handle – #3 Fine Science Tools   10003-12
Scalpel Handle – #4 Fine Science Tools   10004-13
Scalpel Blades – #23 Fine Science Tools   10023-00
Insect Pins , size 000 Fine Science Tools   26000-25
27G Needle BD PrecisionGlide Needles BD305109

References

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Liu, J. W., Lin, K. H., Weber, C., Bhalla, S., Kelso, S., Wang, K., Tang, S. Y. An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc. J. Vis. Exp. (122), e55437, doi:10.3791/55437 (2017).

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