Summary

CAPRRESI:通过质粒恢复和限制酶位点插入的嵌合体装配

Published: June 25, 2017
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Summary

在这里,我们通过质粒恢复和限制性酶切位点插入(CAPRRESI)提供嵌合体装配,这是基于将限制酶位点插入同义词DNA序列和功能质粒恢复的方案。该协议是一种快速和低成本的融合蛋白质编码基因的方法。

Abstract

在这里,我们通过质粒恢复和限制性酶切位点插入(CAPRRESI)提供嵌合体装配。 CAPRRESI受益于原始质粒回收方法的许多优点,并引入限制酶消化以缓解DNA连接反应(嵌合体装配所需)。对于该协议,用户将野生型基因克隆到同一质粒(pUC18或pUC19)中。 在嵌套嵌合体的氨基酸序列区域的计算机选择之后,用户获得编码它们的所有同义词DNA序列。 Ad hoc脚本使用户能够确定所有同义词DNA序列。在此步骤之后,另一个Perl脚本在所有同义词DNA序列上搜索限制酶位点。该计算机分析也使用在pUC18 / 19质粒上发现的氨苄青霉素抗性基因( ampR )进行。用户在同义词区域内设计寡核苷酸,通过PCR破坏野生型和ampR基因。在obt之后调整和纯化互补DNA片段,进行限制酶消化。通过连接适当的互补DNA片段来实现嵌合体装配。为CAPRRESI选择了pUC18 / 19载体,因为它们具有技术优势,如小尺寸(2,686碱基对),高拷贝数,有利的测序反应特征和商业可用性。用于嵌合体装配的限制酶的使用消除了产生平端产物的DNA聚合酶的需要。 CAPRRESI是一种快速且低成本的融合蛋白质编码基因的方法。

Introduction

嵌合基因组装已被广泛用于分子生物学以阐明蛋白质功能和/或用于生物技术目的。存在融合基因的不同方法,如重叠PCR产物扩增1 ,质粒回收2 ,同源重组3 ,CRISPR-Cas9系统4 ,定位重组5和吉布森组装6 。这些都提供不同的技术优势;例如,重叠PCR设计的灵活性,质粒恢复期间的体内选择构建 ,或CRISPR-Cas9和Gibson系统的高效率。另一方面,在执行这些方法时可能会出现一些困难;例如,前两种方法依赖于平头DNA片段,并且这些类型的产品的连接在技术上可能与stic结扎结扎。位点定向重组可以在原始样品上留下痕迹的额外的DNA序列(疤痕),如CrelxP系统5 。除了目标部位之外,CRISPR-Cas9有时可以修改其他基因组区域。

在这里,我们通过质粒回收和限制性内切酶位点插入(CAPRRESI)介绍嵌合体装配,这是一种融合蛋白质编码基因的方案,将基因质粒恢复方法(PRM)与限制酶位点插入同义词DNA序列,增强连接效率。为了确保氨基酸序列的完整性,将限制酶位点插入同义词DNA序列片段。 CAPPRESI的优点之一是可以使用普通的实验室试剂/工具( 酶,感受态细胞,溶液和热循环仪)进行,并且可以快速测定结果(使用适当的酶时)。依靠限制从同义词DNA序列出现的酶位点可以限制目标蛋白内部精确融合点的选择。在这种情况下,应使用重叠的寡核苷酸融合靶基因,并将限制酶位点插入到载体的抗性基因上。

CAPRRESI由七个简单步骤组成( 图1 ):1)选择克隆载体pUC18或pUC19 6 ; 2)待融合的野生型序列的计算机分析; 3)嵌合体装配和质粒破坏的断裂区域的选择; 4) 计算机生成含有限制酶位点的同义词DNA序列; 5)将野生型基因独立克隆到所选择的质粒中; 6)通过PCR进行质粒破坏,然后进行限制酶消化;和7)使用DNA连接和细菌转化的质粒回收。应该验证这种技术产生的嵌合基因测序。

pUC18 / 19载体提供克隆和嵌合体装配的技术优势,如小尺寸( 2,686碱基对),高拷贝数,有利的测序反应特征和商业可用性7 。在这里,使用大肠杆菌宿主来组装和处理嵌合体,因为细菌培养物便宜且生长快。鉴于此,将需要随后将融合片段克隆到最终靶质粒中( 例如,在哺乳动物细胞中的细菌或pCMV中的pRK415的表达载体)。

测试CAPRRESI融合两个主要的σ因子基因: 大肠杆菌D根瘤菌(Rhizobium etlisigA) 。原始sigma因子是负责转录起始的RNA聚合酶亚基,它们由四个结构域组成( σ1,σ2,σ3和σ4) 8 。氨基酸序列长度由rpoDsigA编码的蛋白质的h分别为613和685。 RpoD和SigA共享48%的身份(98%的覆盖率)。这些主要的σ因子在区域σ2和σ3之间分成两个互补的片段。根据该设计组装两个嵌合基因:嵌合体01(RpoDσ1-σ2+SigAσ3-σ4)和嵌合体02(SigAσ1-σ2+RpoDσ3-σ4)。通过测序验证DNA融合产物。

Protocol

CAPRRESI协议注意: 图1表示总体CAPRRESI协议。该技术基于计算机设计和随后构建期望的嵌合体。 选择克隆质粒pUC18或pUC19。 选择最适合技术需求的pUC载体。 注意:两个载体具有相同的序列,但多克隆位点的方向除外。这对于寡核苷酸的设计和PCR质粒破坏是重要的。 在野生型基因和pUC18 / 19序列的?…

Representative Results

图1描绘了CAPRRESI。使用该方法,通过交换两个细菌原始sigma因子( 即大肠杆菌 RpoD和R.etli SigA)的结构域来组装两个嵌合基因。使用GenBank基因组文件NC_000913和NC_007761的Artemis Genome浏览器14分别获得rpoD和sigA基因的DNA序列。从NCBI服务器的核苷酸数据库获得pUC18载体的DNA序列。通过运行REsearch.pl Perl脚本对DNA序列进行限制酶位点?…

Discussion

CAPRRESI被设计为PRM 2的替代品。原来的PRM是一种强大的技术;它允许沿所选基因的任何部分融合DNA序列。对于PRM,野生型基因应该被克隆到相同的质粒中。之后,在质粒内发现野生型和抗生素抗性基因内设计寡核苷酸。通过使用平端,高保真DNA聚合酶和先前设计的寡核苷酸的PCR实现质粒破坏。互补PCR产物的连接组装嵌合基因并恢复抗生素抗性盒,导致功能质粒恢复。 PRM使得能够在…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了墨西哥国家科学委员会,墨西哥国家科学委员会(ACACYT),墨西哥国家科学院(154833)和墨西哥国立自治大学的支持。作者希望感谢VíctorGonzález,Rosa I.Santamaría,Patricia Bustos和SoledadJuárez的行政和技术咨询。

Materials

Platinum Taq DNA polymerase High Fidelity Thermo Fisher 11304011 Produces a mix of blunt/3’-A overhang ended PCR products
High pure plasmid isolation kit Roche 11754785001 Used for all plasmid purification reactions
High pure PCR product purification kit Roche 11732676001 Used for all PCR purification reactions from agarose gels
AflII restriction enzyme New England Biolabs R0520L Recognizes sequence 5’-CTTAAG-3’ and cuts at 37 °C
KpnI-HF restriction enzyme New England Biolabs R3142L Recognizes sequence 5’-GGTACC-3’ and cuts at 37 °C
SpeI-HF restriction enzyme New England Biolabs R3133L Recognizes sequence 5’-ACTAGT-3’ and cuts at 37 °C
XbaI restriction enzyme New England Biolabs R0145L Recognizes sequence 5’-TCTAGA-3’ and cuts at 37 °C
Ampicillin sodium salt Sigma Aldrich A0166-5G Antibiotics
Nalidixic acid Sigma Aldrich N8878-5G Antibiotics
Yeast Extract Sigma Aldrich Y1625-1KG Bacterial cell culture
Casein peptone Sigma Aldrich 70171-500G Bacterial cell culture
NaCl Sigma Aldrich S9888-1KG Sodium chloride
Agar Sigma Aldrich 05040-1KG Bacterial cell culture
XbaI restriction enzyme Thermo Fisher FD0684 Fast digest XbaI enzyme
KpnI restriction enzyme Thermo Fisher FD0524 Fast digest KpnI enzyme
Quick Ligation Kit New England Biolabs M2200S Fast DNA ligation kit
AflII restriction enzyme Thermo Fisher FD0834 Fast digest AflII enzyme
SpeI restriction enzyme Thermo Fisher FD1253 Fast digest SpeI enzyme

References

  1. Horton, R. M., Hunt, H. D., Ho, S. N., Pullen, J. K., Pease, L. R. Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes: gene splicing by overlap extension. Gene. 77 (1), 61-68 (1989).
  2. Vos, M. J., Kampinga, H. H. A PCR amplification strategy for unrestricted generation of chimeric genes. Anal. Biochem. 380 (2), 338-340 (2008).
  3. Hawkins, N. C., Garriga, G., Beh, C. T. Creating Precise GFP Fusions in Plasmids Using Yeast Homologous Recombination. Biotechniques. 34 (1), 1-5 (2003).
  4. Sander, J. D., Joung, J. K. CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes. Nat Biotechnol. 32 (4), 347-355 (2014).
  5. Nagy, A. Cre recombinase: The universal reagent for genome tailoring. Genesis. 26 (2), 99-109 (2000).
  6. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  7. Norrander, J., Kempe, T., Messing, J. Construction of improved M13 vectors using oligodeoxynucleotide-directed mutagenesis. Gene. 26 (1), 101-106 (1983).
  8. Gruber, T. M., Gross, C. A. Multiple sigma subunits and the partitioning of bacterial transcription space. Annu Rev Microbiol. 57, 441-466 (2003).
  9. Edgar, R. C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Res. 32 (5), 1792-1797 (2004).
  10. Thompson, J. D., Gibson, T. J., Higgins, D. G. Multiple sequence alignment using ClustalW and ClustalX. Curr Protoc Bioinformatics. , 1-22 (2002).
  11. Sambrook, J., Russell, D. W. Molecular Cloning: A laboratory manual. CSHLP. , (2001).
  12. Rutherford, K., et al. Artemis: sequence visualization and annotation. Bioinformatics. 16 (10), 944-945 (2000).
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Cite This Article
Santillán, O., Ramírez-Romero, M. A., Dávila, G. CAPRRESI: Chimera Assembly by Plasmid Recovery and Restriction Enzyme Site Insertion. J. Vis. Exp. (124), e55526, doi:10.3791/55526 (2017).

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