Summary

Ukontrollert hemoragisk sjokk modellert via leverlakerering i mus med realtids hemodynamisk overvåking

Published: May 21, 2017
doi:

Summary

Ukontrollert blødning, en viktig årsak til dødelighet blant traumapasienter, kan modelleres ved bruk av en standard leverlacerasjon i en murin modell. Denne modellen resulterer i konsekvent blodtap, overlevelse og muliggjør testing av hemostatiske midler. Denne artikkelen gir trinnvis prosess for å utføre denne verdifulle modellen.

Abstract

Ukontrollert blødning er en viktig årsak til forebyggbare dødsfall blant traumapasienter. Vi har utviklet en murin modell av ukontrollert blødning via leverskade som resulterer i konsistent blodtap, hemodynamiske forandringer og overlevelse.

Mus gjennomgår en standard reseksjon av leverens venstre-midterste lobe. De får lov til å bløde uten mekanisk inngrep. Hemostatiske midler kan administreres som forbehandling eller redningsterapi, avhengig av etterforskerens interesse. Under blødningstiden utføres realtids hemodynamisk overvåking via en venstre femoral arteriell linje. Musene blir deretter ofret, blodtap kvantifiseres, blod samles inn for videre analyse, og organer høstes for analyse av skade. Eksperimentell design er beskrevet for å muliggjøre samtidig testing av flere dyr.

Leverblødning som modell for ukontrollert blødning finnes iN litteraturen, primært i rotte- og svinemodeller. Noen av disse modellene benytter hemodynamisk overvåking eller kvantifiserer blodtap, men mangler konsistens. Den foreliggende modellen inkorporerer kvantifisering av blodtap, sanntidshemodynamisk overvåkning i en murin modell som gir fordelen av å bruke transgene linjer og en høy gjennomstrømningsmekanisme for å undersøke de patofysiologiske mekanismer ved ukontrollert blødning.

Introduction

Traumer er den ledende dødsårsaken og funksjonshemming blant unge mennesker over hele verden. 1 Ukontrollert blødning er fortsatt en ledende årsak til dødelighet blant alvorlig skadede traumapasienter. 2 Behandling av hemorrhaging trauma pasienten er to ganger: kontroll av kirurgisk blødning, og gjenopplivning og erstatning av fortapt blod.

Dyrmodeller av hemorragisk sjokk har vært hjørnesteinen i traumavirus og kan brukes i evalueringen av patofysiologien og behandling av traumatisk / hemorragisk sjokk. 3 , 4 Shock i dyremodeller kan oppnås i stor grad ved to metoder: kontrollert blødning og ukontrollert blødning. 5 , 6 Kontrollert blødning utføres ved fjerning av et fast volum blod eller ved blodfjerning for å oppnå et bestemt blodtrykk (fast trykk). MensSe modeller er nyttige i evalueringen i mekanismer og immunforandringer i hemoragisk sjokk, de er ikke anvendelige for testing av hemostatiske midler og etterligner ikke det kliniske scenariet for blødning etter traumer. I denne grad søkte vi å utvikle en modell for ukontrollert blødning som ville tillate oss å teste hemostatiske forandringer og prokoaguleringsmidler i en murin modell. Leveren er et attraktivt alternativ for ukontrollert blødning delvis på grunn av den doble blodtilførselen til leveren, og det er et av de mest skadede intrabdominale organene i både stump og gjennomtrengende traumer. Gitt den høye kliniske relevansen, har leveren blitt brukt som en modell for ukontrollert blødning, oftest hos rotte- og svinemodeller, men nylig i primater også. 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 </suP> Murine-modeller har også innlemmet leverskade, for eksempel en knusemodell eller et stumt traume; Disse modellene resulterer imidlertid ikke i hemorragisk sjokk sekundært til leverskade. 13 , 14

Rotte- og svinemodellene av ukontrollert leverblødning, men verdifull i å se på gjenoppliving og hemodynamisk overvåking, er mindre fordelaktige enn en murinmodell av forskjellige årsaker som kostnad, antall dyr som benyttes, og viktigere er den relative mangelen av transgene linjer som er tilgjengelige for analyse Av spesifikk cellulær og molekylær signalering. Den nåværende murinmodellen deler viktige likheter med eksisterende leverblødningsmodeller, inkludert standardisert leverlakering, blodkvantifisering, hemodynamisk overvåking og evnen til å utføre overlevelsesanalyse. Mange eksisterende modeller inneholder bare noen av disse aspektene, mens modellen vår ble utviklet for å måle mange av de fysiologiske variableneBles samtidig og i flere mus. I tillegg åpner utviklingen av en murin modell døren til undersøkelser utover gjenopplivning og inn i større patofysiologiske mekanismer ved ukontrollert blødning med potensialet til en kostnadseffektiv, høy gjennomstrømningsmodell ved bruk av avanserte molekylære teknikker.

Protocol

Mus ble plassert i samsvar med University of Pittsburgh (Pittsburgh, PA, USA) og National Institutes of Health (NIH; Bethesda, MD, USA) retningslinjer for dyrepleie i spesifikke patogenfrie forhold med 12 h lysmørke sykluser og fri tilgang til Standard fôr og vann. Alle dyreforsøk ble godkjent og utført i samsvar med retningslinjene fra Animal Research and Care Committee ved University of Pittsburgh. 1. Kirurgisk felt- og instrumentoppsett Steriliser alle kirurgiske in…

Representative Results

Leverlacerasjonsmodellen resulterer i reproduserbart og konsistent blodtap i mus. Figur 1A demonstrerer den konsistente vekten av lacerert leveren som kan oppnås med en standardavvik på bare 0,02 g. Denne konsistensen i lacerert levervekt gjør det mulig å reprodusere modellen mellom mus og i forskjellige eksperimentelle oppsett som forskjellige resuscitative protokoller. I tillegg gir den reproduserbare vekten av den lacererte leveren, med en standardfeil på bare 0,…

Discussion

Den murine leveren laceration modell beskrevet her gir en pålitelig, konsekvent modell for ukontrollert blødning. Denne modellen er grei å utføre, men det er viktige skritt som krever grundig vurdering. Den mest teknisk utfordrende delen av modellen er kanylering av femorale karene for hemodynamisk overvåking og væske- / legemiddeladministrasjon. Det må tas forsiktighet under disseksjon av nerve og arteriotomi / venotomi. Det er viktig å ikke berøre nerven under disseksjonen av fartøyene for å unngå å forå…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeidet med dette manuskriptet ble støttet av finansiering til Dr. Neal av Vaskulærmedisininstituttets pilotprosjekt i hemostase og vaskulærbiologi (P3HVB) og AAST Research fellesskap. Dette arbeidet støttes av amerikanske National Institutes of Health-stipend 1 R35 GM119526-01 og UM1HL120877-01.

Materials

SS/45 dumonts Fine Science Tools 11203-25
surgical scissors Fine Science Tools 14068-12
hemostats Fine Science Tools 13009-12
microscissors Fine Science Tools 15000-08
0.8mm curved forceps Fine Science Tools 11009-13
suture reel 6-0 Fine Science Tools 18020-60
suture 4-0 silk w/ needle Owens Minor K188H
gauze 4×4 can be purchased through any global vendor
cotton-tip applicator can be purchased through any global vendor
30G needle can be purchased through any global vendor
23G needle can be purchased through any global vendor
10cc syringe can be purchased through any global vendor
50cc conical tube can be purchased through any global vendor
1cc syringe w/ 25G needle Fisher Scientific 14-826-88
Polyethylene 10 tubing 100`(PE-10) Fisher Scientific 14-170-12P
Polyethylene 50 tubing 100`(PE-50) Fisher Scientific 14-170-12B
3-way stopcock Fisher Scientific NC9779127
surgical blue pad Fisher Scientific 50-7105
Sterile Field dressings Fisher Scientific NC9517505
tape rolls 1" Corporate Express MMM26001
straight side wide mouth jars VWR 159000-058
stainless steel tray 8" x 11" VWR 62687-049
male-male leur lock 3-way VWR 20068-909
sterilization pouch 3"x8" VWR 24008
sterilization pouch 5"x10" VWR 24010
absorption triangles Fine Science Tools 18105-03
7mm wound clip applier Fisher Scientific E0522687
1000 7mm wound clips Fisher Scientific E0522687
betadine (4oz) can be purchased through any global vendor
sterile gloves can be purchased through any global vendor
eppendorfs  can be purchased through any global vendor
1/2cc Lo-Dose insulin syringe Fisher Scientific 12-826-79
small weigh boat can be purchased through any global vendor
lactated ringers can be purchased through any global vendor
hepranized saline solution (.1µ hep + 9.9µNaCl) can be purchased through any global vendor
phosphate buffered saline  can be purchased through any global vendor
pentobarbital  can be purchased through any global vendor
Wild M650 microscope w/ boom stand Leica
Digi-Med BPA-400 analyzer & systems integrator Micro-Med SYS-400
TXD-310 (Digi-Med Transducer)  Micro-Med TXD-300
Computer Dell
microbead instrument sterilizer VWR 11156-002
Oster A5 clippers w. size 40 blade VWR 10749-020
circulating heating pad 18×26 Harvard py872-5272
rectal thermometer Kent Scientific RET-3

References

  1. Chang, R., Cardenas, J. C., Wade, C. E., Holcomb, J. B. Advances in the understanding of trauma-induced coagulopathy. Blood. 128 (8), 1043-1049 (2016).
  2. Kutcher, M. E., et al. A paradigm shift in trauma resuscitation: evaluation of evolving massive transfusion practices. JAMA surgery. 148 (9), 834-840 (2013).
  3. Tsukamoto, T., Pape, H. C. Animal Models for Trauma Research. Shock. 31 (1), 3-10 (2009).
  4. Darwiche, S. S., et al. Pseudofracture: an acute peripheral tissue trauma model. J Vis Exp. (50), (2011).
  5. Lomas-Niera, J. L., Perl, M., Chung, C. -. S., Ayala, A. Shock and Hemorrhage: an Overview of Animal Models. Shock. 24, 33-39 (2005).
  6. Kohut, L. K., Darwiche, S. S., Brumfield, J. M., Frank, A. M., Billiar, T. R. Fixed volume or fixed pressure: a murine model of hemorrhagic shock. J Vis Exp. (52), (2011).
  7. Matsuoka, T., Hildreth, J., Wisner, D. H. Liver injury as a model of uncontrolled hemorrhagic shock: resuscitation with different hypertonic regimens. J Trauma. 39 (4), 674-680 (1995).
  8. Komachi, T., et al. Adhesive and Robust Multilayered Poly(lactic acid) Nanosheets for Hemostatic Dressing in Liver Injury Model. J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. , (2016).
  9. Orfanos, N. F., et al. The effects of antioxidants on a porcine model of liver hemorrhage. J Trauma Acute Care Surg. 80 (6), 964-971 (2016).
  10. Morgan, C. E., Prakash, V. S., Vercammen, J. M., Pritts, T., Kibbe, M. R. Development and validation of 4 different rat models of uncontrolled hemorrhage. JAMA Surgery. 150 (4), 316-324 (2015).
  11. Rosselli, D. D., Brainard, B. M., Schmiedt, C. W. Efficacy of a topical bovine-derived thrombin solution as a hemostatic agent in a rodent model of hepatic injury. Can J Vet Res. 14 (14), 303-308 (2015).
  12. Sheppard, F. R., et al. Development of a Nonhuman Primate (Rhesus Macaque) Model of Uncontrolled Traumatic Liver Hemorrhage. Shock. 44, 114-122 (2015).
  13. Nemzek-Hamlin, J. A., Hwang, H., Hampel, J. A., Yu, B., Raghavendran, K. Development of a murine model of blunt hepatic trauma. Comp Med. 63 (5), 398-408 (2013).
  14. Vogel, S., et al. Platelet-derived HMGB1 is a critical mediator of thrombosis. J Clin Invest. 125 (12), (2015).
  15. Modery-Pawlowski, C. L., Tian, L. L., Ravikumar, M., Wong, T. L., Sen Gupta, A. In vitro and in vivo hemostatic capabilities of a functionally integrated platelet-mimetic liposomal nanoconstruct. Biomaterials. 34 (12), 3031-3041 (2013).
check_url/kr/55554?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Dyer, M., Haldeman, S., Gutierrez, A., Kohut, L., Sen Gupta, A., Neal, M. D. Uncontrolled Hemorrhagic Shock Modeled via Liver Laceration in Mice with Real Time Hemodynamic Monitoring. J. Vis. Exp. (123), e55554, doi:10.3791/55554 (2017).

View Video