Summary

ホルマリン固定パラフィン包埋ヒト卵黄扁平上皮癌試料におけるT細胞亜集団の四色蛍光免疫組織化学

Published: July 29, 2017
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Summary

多パラメータ蛍光免疫組織化学を用いて、腫瘍微小環境における免疫細胞集団の数、相対分布、および局在を評価することができる。この文献は、口腔咽頭癌におけるT細胞亜集団を分析するためのこの技術の使用を記載している。

Abstract

4色蛍光免疫組織化学(IHC)技術は、それらの相対的分布および組織におけるそれらの局在を考慮に入れながら、目的の細胞集団を定量する方法である。この技術は、様々な腫瘍型の免疫浸潤を研究するために広く適用されている。腫瘍微小環境は、腫瘍部位に引き付けられる免疫細胞によって浸潤される。異なる免疫細胞集団は、腫瘍微小環境において異なる役割を果たすこと、および疾患の転帰に異なる影響を有することが見出されている。この原稿では、口腔咽頭扁平上皮癌(OPSCC)上の多パラメータ蛍光IHCの使用を例として説明します。この技術は、他の組織サンプルおよび目的の細胞型に拡張することができる。提示された研究では、大きなOPSCCコホート(n = 162)の上皮内および間質コンパートメントを分析した。我々は、全Tリンパ球(CD3 + )、免疫抑制性調節間質から腫瘍上皮を区別するために核対比染色を用いて、T細胞(Tregs; すなわち FoxP3 + )およびTヘルパー17(Th17)細胞( すなわち、 IL-17 + CD3 +腫瘍内IL-17 +非T細胞の数が少ない患者において、多数のT細胞が無病生存期間の改善と相関することが見出された。これは、IL-17 +非T細胞がOPSCCにおける貧弱な免疫応答と相関し得ることを示唆し、これはIL-17と癌患者における生存率の間の相関と一致する。現在、7つまでの異なる蛍光色素を用いて新規なマルチパラメータ蛍光IHC技術が開発されており、腫瘍微小環境における免疫細胞のより正確な特徴付けおよび局在化が可能になる。

Introduction

口腔咽頭扁平上皮癌(OPSCC)は、口腔咽頭に由来する扁平上皮細胞癌の異種群である。 OPSCCの危険因子は、ヒトパピローマウイルス(HPV)感染症とアルコールとタバコの使用1、2挙げられます。免疫反応の役割とこれを臨床現場でどのように使用するかは、まだ検討され始めています。腫瘍微小環境は、癌部位に引き付けられる免疫細胞によって浸潤される。 OPSCC患​​者3では、高いCD8 +細胞傷害性T細胞頻度が改善された生存と相関しているが、TregおよびTh17細胞を含む他のT細胞サブセットの役割は依然として不明である4 。 Th1およびTh17細胞は、腫瘍細胞を標的とする免疫応答を助長すると考えられているが、Tregsは、他のT細胞の活性を抑制する能力に関してよく知られている5 。しかしながら、Tregsは、異なる腫瘍のタイプ6における好都合な反応および好ましくない反応の両方と相関することが見出されている6 。血液中に存在する全ての免疫細胞が腫瘍に同程度まで浸潤するわけではないので、局所腫瘍微小環境を研究することは、腫瘍に対して指向される免疫応答の最も信頼できる尺度を提供する。この研究の目的は、免疫細胞の数とタイプと臨床結果との間の相関関係を決定することである。我々は、ヒトOPSCCにおける種々のT細胞亜集団の数および局在を分析するために、4色蛍光IHCイメージングを使用した。

我々は、分化経路がTh17細胞と密接に関連しているトータルTリンパ球(CD3 + )、Th17細胞、および免疫抑制性FoxP3 + Tregsに焦点を当てた。 Th17細胞は、CD3とIL-17との組み合わせによって特徴付けられる。サイトカインIL-17はまた、非T細胞によって産生され得る7 。我々は、イントラ – エピトープの分布を決定したヘリカルおよび間質性T細胞、Tregs、Th17、およびIL-17 +非T細胞を、OPSCC症例の大規模シリーズで分析し、患者の生存との相関を分析した。多色蛍光IHCを使用して、CD3、Foxp3、およびIL-17の発現を、DAPI対比染色剤と組み合わせて同定した。このアッセイは、腫瘍細胞(DAPI核染色を使用)および浸潤T細胞集団(異なるマーカーの組み合わせを使用する)の両方の容易かつ明確な同定を可能にした。試料の調製および染色の後、蛍光顕微鏡および画像化ソフトウェアを使用して、使用される異なる蛍光色を分離し、腫瘍上皮および腫瘍関連間質の両方に存在する細胞の数および型を決定した。

免疫細胞集団を定量化および表現する別のアッセイは、フローサイトメトリー分析、または腫瘍または末梢サンプル( すなわち血液または腹水)の飛行時間(CyTOF)分析によるサイトメトリーである。これを使用する異なる細胞型の局在化および相対的分布に関するすべての情報が失われる。末梢サンプルの使用および分析はまた、どの細胞が腫瘍微小環境に浸潤できるかについての情報を提供しない。血液および腹水免疫細胞の分析は、腫瘍組織8,9の免疫細胞浸潤の表現型および頻度を反映しないことが示されています。

もう一つの選択肢は、明視野顕微鏡の使用である。蛍光イメージングに対するこの技術の利点は、組織自己蛍光がないことである。いくつかの試料はより多くの自家蛍光、特に赤血球を含有するが、好中球顆粒球を含む他の細胞型も含まれるが、これらの領域はほとんどすべての試料の分析において容易に除去することができる。免疫蛍光法は、標的蛍光体のパネルを使用することにより、1つの試料中の複数のマーカーを分析する利点を提供するnt個の波長を有する。これは、特定の抗原についての十分な数の標識および市販の抗体アイソタイプの欠如のために、明視野顕微鏡法については現在同じ程度には不可能である。

ここで説明した多色蛍光IHC技術は例えば、ヒト白血球抗原(HLA)とPD-L1 10、11などの異なる免疫細胞集団、ならびに腫瘍細胞発現分子を研究する癌の種類及び抗体の組合せさまざまに使用されています12 。このプロトコールは、多くの異なるタイプのサンプルおよび抗体を用いて確立され、検証されている。

Protocol

患者サンプルは、オランダの生物医学社会連合(www.federa.org)のヒト組織の適切な二次的使用のための行動規範に記載された医学的倫理ガイドラインに従って取り扱われた。 1.スライドの準備切除された材料を使用する医療倫理委員会の許可を得た後、病理部門から切除された組織材料(あらゆる種類の組織)を入手する。 注:現在の実験では、前治療(n = …

Representative Results

前述したように選択された1970年から2011年の間にライデン大学医療センター、ライデン、オランダで診断原発口腔咽頭腫瘍から得られたFFPE前処理腫瘍サンプルのシリーズ、(N = 162)は、13に記載のプロトコルを用いて染色しました。各スライドの1から4つのランダム画像を分析した( 図1 )。いくつかの自家蛍光細胞が示され?…

Discussion

記載されたプロトコールについて、最も重要な工程の1つは、使用される一次抗体の正確な希釈を決定することである。これらの特異的なAlexa標識抗体の製造元が推奨するように、標識二次抗体の希釈度は1:200であった。一次抗体の希釈は、好ましくは意図された組織型の2つの異なる試料(この場合はOPSCC)を用いて連続希釈によって決定されるべきである。最適な作業希釈は、バックグラウ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Simone Puntは、オランダ癌協会の助成金UL2010-4801の支援を受けました。我々は、このJoVEプロトコルが基づいている元の論文の共著者すべてに感謝したいと思います:Emilie A. Dronkers、Marij JP Welters、Renske Goedemans、SenadaKoljenović、Elisabeth Bloemena、Peter JF Snijders、Arko Gorter、Sjoerd vanバーグ。

Materials

Pathos Delta Ultra Rapid Tissue Processor Milestone and Histostar Automated tissue processor
Histostar Thermo Scientific  Tissue block embedding machine
Formaldehyde Baker
Xylol Merck
Ethanol Merck
milliQ water Elaga Purelab Chorus
Paraffin wax/Paraclean Klinipath 5079A
Microtome tissue holder  Leica RM225
Flex IHC side Dako Tissue slide
Tris Merk-Milipore 1,083,821,000
EDTA Baker 1073
PBS Bio-Rad BUF036A
BSA Sigma A9647
Rabbit anti-CD3 Abcam ab828 Titrate required antibody dilution
Mouse IgG1 anti-FoxP3 Abcam ab20034 Titrate required antibody dilution
Goat IgG anti-IL-17 R&D Systems AF-317-NA Titrate required antibody dilution
Rabbit Ig isotype control antibody Abcam ab27472 Use at same final concentration as anti-CD3
Mouse IgG1 isotype control antibody Abcam ab91353 Use at same final concentration as anti-FoxP3
Goat IgG isotype control antibody ThermoFisher Scientific 02-6202 Use at same final concentration as anti-IL-17
Donkey anti-rabbit IgG A546 ThermoFisher Scientific A10040 Dilute 1:200 in 1% BSA/PBS
Donkey anti-mouse-A647 ThermoFisher Scientific A31571 Dilute 1:200 in 1% BSA/PBS
Donkey anti-goat IgG A488 ThermoFisher Scientific A11055 Dilute 1:200 in 1% BSA/PBS
VectaShield containing DAPI Vector Laboratories H-1200
LSM700 confocal laser scanning microscope  Zeiss
LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 Imm Korr DIC M27 objective Zeiss 420852-9972-720
LSM Zen Software Zeiss version 2009
LSM Image Browser Zeiss version 4.2.0.121 Available to download at www.zeiss.com/microscopy/int/website/downloads/lsm-image-browser.html.
SPSS IBM Corp. version 20.0
ImageJ version 1.50i Available to download at http://rsb.info.nih.gov/ij.

References

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Cite This Article
Punt, S., Baatenburg de Jong, R. J., Jordanova, E. S. Four-color Fluorescence Immunohistochemistry of T-cell Subpopulations in Archival Formalin-fixed, Paraffin-embedded Human Oropharyngeal Squamous Cell Carcinoma Samples. J. Vis. Exp. (125), e55589, doi:10.3791/55589 (2017).

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