Summary

使用高尔基Cox方法评估老年小鼠海马树突状复杂性

Published: June 22, 2017
doi:

Summary

这里我们详细介绍一种高尔基体Cox协议。这种可靠的组织染色方法允许对海马中的细胞结构和整个大脑进行高质量的评估,同时进行最少的故障排除。

Abstract

树枝状突起是包含兴奋性突触的神经元树突状突起。海马内神经元树突的形态和分支变化涉及认知和记忆形成。有几种高尔基染色方法,所有这些方法都可用于确定树突状乔木的形态特征并产生清晰的背景。目前的高尔基Cox方法(商业高尔基染色试剂盒提供的方案略有变化)被设计用于评估相对较低剂量的化疗药物5-氟尿嘧啶(5-Fu)如何影响树突状形态,脊柱数量以及海马内部植树的复杂程度。 5-Fu以区域特异性方式显着调节树突状复杂性并降低整个海马的脊柱密度。数据显示,高尔基染色法对CA1,CA3和海马齿状回(DG)中的成熟神经元进行了有力的染色。该协议报告每个步骤的细节,以便其他研究人员能够以高质量的结果和最少的故障排除,可靠地在整个大脑中染色组织。

Introduction

树突状体是接收和处理突触前输入的神经元的最大部分1 。它们的树突过程具有复杂的几何形状,其中近端分支具有比远端分支更大的直径。当树突发育时,它们在称为树突状树突的过程中与其他神经元形成几个连接。这种分支的程度和模式决定了树突可充分处理的突触输入量2

树突状晶化是活性依赖性可塑性和神经元回路适当发育的必需过程。延伸,收缩,分支和突触发生是复杂的过程,包括内在遗传程序和外在因素的影响。海马内神经元树突的形态和分支变化涉及认知和记忆形成3,4 树突状复杂性的改变与病理生理和行为变化有关5 ,异常与多种疾病状态有关,包括脆性X综合征和唐氏综合征6

树枝状刺是树突状乔木的特殊亚细胞层,在中枢神经系统内接受兴奋性输入。有三种形态类型的树突棘,每个类的名称根据其大小和形状:1)蘑菇棘,具有比其他刺7更复杂的突触后密度,具有更多的谷氨酸受体; 2)粗短的刺,缺乏茎;和3)薄刺,由长而窄的茎和球状头组成。树突状体积部分地用于限定它们,其中薄脊通常较小(0.01μm3 </sup>)与蘑菇刺(0.8μm3) 9,10比较 。脊椎稳定成熟。例如,薄的脊椎在几天之后缩回或发展成蘑菇刺。或者,蘑菇棘相对稳定并且可以长时间存活。神经元连接的强度被认为是基于刺的数量和/或其体积11,12,13

古典高尔基染色方法及其更现代的变化对于检查树突棘形态和密度都是有用的。高尔基染色的一个独特之处在于它随机染色了约5%的总神经元,这允许追踪个体神经元14,15 。虽然高尔基甲基的确切机制od染色单个神经元尚未知,该方法的原理是基于铬酸银(Ag 2 CrO 4 )的结晶16,17 。高尔基方法有三种主要类型:快速高尔基体,高尔基体细胞,高尔基 – 科罗奇18,19 。所有这三种方法从铬盐的初始孵化阶段开始数天至数月,但它们之间存在一定的关键差异。快速高尔基体在第一步使用四氧化锇,而高尔基Kopsch包括多聚甲醛。随后在1-2%硝酸银溶液中孵育约7天,在快速高尔基体和高尔基体系中进行染色。高尔基Cox法使用氯化汞和重铬酸钾代替硝酸银,浸渍时间为2-4周。然后将组织切片并快速置于稀释的氨中溶液,然后用照相定影剂除去盐。在三种类型中,高尔基Cox方法被认为是在没有太多背景干扰下染色树枝状树枝的最佳方法,部分原因是因为晶体表面不会发生在组织表面(不像快速高尔基法) 17,20,21

本方法是商业高尔基染色试剂盒提供的方案的轻微变化,并且设计用于评估相对低剂量的5-Fu如何影响树突状态特征和脊柱密度。获得的任何数据可以进一步了解化学治疗如何影响神经元电路。

Protocol

实验按照UAMS机构动物护理和使用委员会批准的道德标准进行。 动物和5-Fu注射模式购买6个月大的雄性C57Bl6 / J野生型小鼠,并将其置于恒定的12小时光/黑暗循环下,直至达到1岁。 在0.9%无菌盐水中稀释5-Fu。使用60 mg / kg作为每只小鼠所需的剂量。 腹腔注射5-Fu(每周一次,持续三周)。 每天在同一时间内进行腹膜内注射。例如,在0900-1…

Representative Results

使用市售成像软件量化5-Fu处理对高尔基染色脑切片海马树突状结构和复杂性的影响。在追踪后,使用Sholl分析和树突复合指数(DCI)分析树突状树枝状结构,脊柱密度和脊柱形态。 Sholl分析是一种定量分析方法,可用于确定树枝状心轴形态25 。从soma开始,距离彼此相隔10微米的圆圈覆盖树突状迹。枝晶的长度取决于枝晶交叉的圆数。分支点分析,一种确?…

Discussion

与更现代的技术相比,高尔基Cox方法具有几个优点,使其成为检查脊柱形态的首选方法:1)染色可用于基本上任何组织,2)基本的光学显微镜设置是所有需要的获得基于高尔基体的图像,3)高尔基Cox成像比共焦成像更快; 4)高尔基染色切片比荧光标记的样品长达数月至数年。即使有这些优点,高尔基Cox方法仍然有一定的局限性。首先,整个过程非常耗时,需要几周的染色,然后分析图像。如本?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到NIH P20 GM109005(ARA)和转化神经科学中心IDeA计划奖P30 GM110702的试点资助。

Materials

superGolgi Kit  Bioenno Lifesciences 30100  Contains hazardous materials. 
PBS 10X powder concentrate Fisher  BP665-1
Triton X-100 Sigma 9002-93-1
Permount  Fisher  SP 15-100
Slide cover  Fisher  12-546-14
7mL Transfer pipette  Globe Scientific  135030
10 mL Falcon tubes  BD Biosciences  352099
Foil  Fisher  01-213-105
12-well plate  BD Biosciences  353043
200 proof Ethanol  Pharmco-AAPER 111000200
Xylene  Acros Organics  1330-20-7 Hazardous. 
Permabond 200 Permabond LLC GF2492
25 mL serological pipette Sigma SIAL1489
Parafilm Midsci HS234526C 
Vibratome  World Precision Instruments  NVSLM1
C57Bl/6 Male Mice  The Jackson Laboratory  000664
Axio Imager 2 ZEISS Multiple components, see website for details. 
AxioCam MRc Camera ZEISS 426508-9902-000
Staining Dish , Green Tissue-Tek 62541-12
Staining Dish Set  Electron Microscopy Sciences  70312-20
Motorized Pipet Filler  Fisher  03-692-168
Neurolucida  mbf Bioscience 
Neurolucida Explorer  mbf Bioscience 
Prism  GraphPad

References

  1. Stuart, G. J., Spruston, N. Dendritic integration: 60 years of progress. Nat Neurosci. 18 (12), 1713-1721 (2015).
  2. Jan, Y. N., Jan, L. Y. Branching out: mechanisms of dendritic arborization. Nat Rev Neurosci. 11 (5), 316-328 (2010).
  3. Kulkarni, V. A., Firestein, B. L. The dendritic tree and brain disorders. Mol Cell Neurosci. 50 (1), 10-20 (2012).
  4. Kasai, H. Structural Dynamics of Dendritic Spines in Memory and Cognition. Trends Neurosci. 33 (3), 121-129 (2010).
  5. von Bohlen Und Halbach, O. Structure and function of dendritic spines within the hippocampus. Ann Anat. 191 (6), 518-531 (2009).
  6. Wayman, G. A., et al. Activity-dependent dendritic arborization mediated by CaM-kinase I activation and enhanced CREB-dependent transcription of Wnt-2. Neuron. 50 (6), 897-909 (2006).
  7. Bourne, J. N., Harris, K. M. Balancing structure and function at hippocampal dendritic spines. Ann Rev Neurosci. 31, 47-67 (2008).
  8. Lai, K. O., Ip, N. Y. Structural plasticity of dendritic spines: the underlying mechanisms and its dysregulation in brain disorders. Biochim Biophys Acta. 1832 (12), 2257-2263 (2013).
  9. Harris, K. M. Structure, development, and plasticity of dendritic spines. Current Op Neurobiol. 9 (3), 343-348 (1999).
  10. Harris, K. M., Kater, S. B. Dendritic spines: cellular specializations imparting both stability and flexibility to synaptic function. Ann Rev Neurosci. 17, 341-371 (1994).
  11. Leuner, B., Shors, T. J. Stress, anxiety, and dendritic spines: what are the connections. 신경과학. 251, 108-119 (2013).
  12. Harris, K. M., Fiala, J. C., Ostroff, L. Structural changes at dendritic spine synapses during long-term potentiation. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 358 (1432), 745-748 (2003).
  13. Kasai, H., Matsuzaki, M., Noguchi, J., Yasumatsu, N., Nakahara, H. Structure-stability-function relationships of dendritic spines. Trends Neurosci. 26 (7), 360-368 (2003).
  14. Das, G., Reuhl, K., Zhou, R. The Golgi-Cox method. Methods Mol Biol. 1018, 313-321 (2013).
  15. Koyama, Y. The unending fascination with the Golgi method. OA Anat. 1 (3), 24 (2013).
  16. Pasternak, J. F., Woolsey, T. A. On the “selectivity” of the Golgi-Cox method. J Comp Neurol. 160 (3), 307-312 (1975).
  17. Friedland, D. R., Los, J. G., Ryugo, D. K. A modified Golgi staining protocol for use in the human brain stem and cerebellum. J Neurosci Methods. 150 (1), 90-95 (2006).
  18. Rosoklija, G., et al. Optimization of Golgi methods for impregnation of brain tissue from humans and monkeys. J Neurosci Methods. 131 (1-2), 1-7 (2003).
  19. de Castro, F., Lopez-Mascaraque, L., De Carlos, J. A. Cajal: lessons on brain development. Brain Res Rev. 55 (2), 481-489 (2007).
  20. Gabbott, P. L., Somogyi, J. The “single” section Golgi-impregnation procedure: methodological description. J Neurosci Methods. 11 (4), 221-230 (1984).
  21. Zaqout, S., Kaindl, A. M. Golgi-Cox staining step by step. Front Neuroanat. 10 (38), (2016).
  22. . Vibroslice NVSL & Vibroslice NVSLM123 Available from: https://www.wpiinc.com/clientuploads/pdf/NVSL_NVSLM1_IM.pdf (2000)
  23. . . Neurolucida 11.03. , (2017).
  24. Sholl, D. A. Dendritic organization in the neurons of the visual and motor cortices of the cat. J Anat. 87 (4), 387-406 (1953).
  25. Pillai, A. G., et al. Dendritic morphology of hippocampal and amygdalar neurons in adolescent mice is resilient to genetic differences in stress reactivity. PLoS ONE. 7 (6), (2012).
  26. Morley, B. J., Mervis, R. F. Dendritic spine alterations in the hippocampus and parietal cortex of alpha7 nicotinic acetylcholine receptor knockout mice. 신경과학. 233, 54-63 (2013).
  27. Titus, A. D., et al. Hypobaric hypoxia-induced dendritic atrophy of hippocampal neurons is associated with cognitive impairment in adult rats. 신경과학. 145 (1), 265-278 (2007).
  28. Groves, T. R., et al. 5-Fluorouracil chemotherapy upregulates cytokines and alters hippocampal dendritic complexity in aged mice. Behavioral Brain Research. 316, 215-224 (2017).
  29. Risher, W. C., Ustunkaya, T., Singh Alvarado, J., Eroglu, C. Rapid Golgi analysis method for efficient and unbiased classification of dendritic spines. PloS One. 9 (9), (2014).
  30. Kaufmann, W. E., Moser, H. W. Dendritic anomalies in disorders associated with mental retardation. Cerebral cortex. 10 (10), 981-991 (2000).
  31. Kulkarni, V. A., Firestein, B. L. The dendritic tree and brain disorders. Mol Cell Neurosci. 50 (1), 10-20 (2012).

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Groves, T. R., Wang, J., Boerma, M., Allen, A. R. Assessment of Hippocampal Dendritic Complexity in Aged Mice Using the Golgi-Cox Method. J. Vis. Exp. (124), e55696, doi:10.3791/55696 (2017).

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