Summary

Murine Kortaxel Ventrikulär Hjärtskivor för Elektrofysiologiska Studier

Published: June 04, 2017
doi:

Summary

Här beskriver vi förberedelsen av livskraftiga ventrikulära skivor från vuxna möss och deras användning för skarpa elektrodverkningspotentialinspelningar. Dessa multicellulära preparat ger en bevarad in vivo liknande vävnadsstruktur, vilket gör dem till en värdefull modell för elektrofysiologiska och farmakologiska studier in vitro .

Abstract

Murinska kardiomyocyter har använts i stor utsträckning för in vitro- studier av hjärtfysiologi och nya terapeutiska strategier. Flercelliga preparat av dissocierade kardiomyocyter är dock inte representativa för den komplexa in vivo strukturen av kardiomyocyter, icke-myocyter och extracellulär matris, vilken påverkar både mekaniska och elektrofysiologiska egenskaper hos hjärtat. Här beskriver vi en teknik för att förbereda livskraftiga ventrikulära skivor av vuxna mushjärtor med en bevarad in vivo- liknande vävnadsstruktur och visa deras lämplighet för elektrofysiologiska inspelningar. Efter excision av hjärtat separeras ventriklarna från atrierna, perfusioneras med Ca2 + -fri lösning innehållande 2,3-butandionmonoxim och inbäddad i ett 4% lågmältat agarosblock. Blocket placeras på en mikrotom med ett vibrerande blad, och vävnadsskivor med en tjocklek av 150-400 μm är beredda för att hålla vibrationen friBladets sväng vid 60-70 Hz och förflyttar bladet framåt så långsamt som möjligt. Skivans tjocklek beror på den ytterligare applikationen. Skivor lagras i iskall Tyrode lösning med 0,9 mM Ca 2+ och 2,3-butandionmonoxim (BDM) i 30 min. Efteråt överförs skivor till 37 ° C DMEM i 30 minuter för att tvätta BDM. Skivor kan användas för elektrofysiologiska studier med skarpa elektroder eller mikroelektroder, för kraftmätningar för att analysera kontraktil funktion eller för att undersöka interaktionen mellan transplanterade stamceller härledda kardiomyocyter och värdvävnad. För skarpa elektrodinspelningar placeras en skiva i en 3 cm-cellkulturskål på värmeplattan i ett inverterat mikroskop. Skivan stimuleras med en unipolär elektrod, och intracellulära aktionspotentialer av kardiomyocyter i skivan registreras med en skarp glaselektrod.

Introduction

Tunna vävnadsskivor har använts ofta i grundvetenskapen, eftersom Yamamot och Mcllwain visade 1966 att elektrisk aktivitet av hjärnskivor upprätthålls in vitro 1 . Sedan dess har elektrofysiologiska och farmakologiska studier utförts på skivor från hjärna 2 , lever 3 , lung 4 och myokardvävnad 5 , 6 , 7 . Första patch-clamp-inspelningar i ventrikulära skivor från neonatala råtthjärtor beskrivs i 1990 8 , men denna teknik föll i oblivion under en tid. Mer än ett decennium senare etablerade vår grupp en ny metod för att förbereda murina embryonala 9 , neonatala 10 och vuxna 11 hjärtskivor. Dessa livsdugliga vävnadsskivor kan användas för akuta experiment (vuxenskivaS kan odlas i flera timmar) eller kortsiktiga odlingsexperiment (embryonala och neonatala skivor kan odlas i några dagar). Skivor visar in vivo som elektrofysiologiska egenskaper och en homogen excitationsspridning som bedömts av skarp elektrodverkningspotential och mikroelektroduppsättning 11 . På grund av sin "tvådimensionella" morfologi tillåter de direkt inspelningselektroder till alla områden i ventrikeln, vilket gör dem till ett intressant verktyg för elektrofysiologiska undersökningar och väcker nya experimentella alternativ i jämförelse med Langendorff-perfuserade hela hjärtan. Läkemedelsreaktion av skivorna till jonkanalblockerare som verapamil (L-typ Ca 2+ -kanalblockerare), lidokain (Na + -kanalblockerare), 4-aminopyridin (icke-selektiv spänningsberoende K + -kanalblockerare) och linopirdin (KCNQ K + -kanalblåsare) 9 , 11 </suP> motsvarade kända effekter på dissocierade kardiomyocyter. Isometriska kraftmätningar avslöjade ett positivt kraftfrekvensförhållande och föreslog starkt intakt sammandragsfunktion 10 . Dessa fynd visade att murina ventrikulära skivor är lämpliga som en in vitro vävnadsmodell för fysiologiska och farmakologiska studier. Vidare har ventrikulära skivor av mottagarhjärtan i kombination med skarpa elektrodinspelningar visat sig vara ett mycket användbart verktyg för att karakterisera elektrisk och mekanisk integration samt mognad av transplantatfoster 12 , 13 , 14 och stamceller härledda 15 kardiomyocyter.

Sammanfattningsvis är ventrikulära skivor en värdefull och väl etablerad multicellulär vävnadsmodell och bör anses vara komplementär till dissocierade kardiomyocyter och Langendorff-perfuserade hjärtanI kardiovaskulär forskning, med den största fördelen att tillhandahålla en in vivo- liknande vävnadsstruktur (i motsats till dissocierade celler) samt direkt åtkomst av mätteknik som skarpa elektrodinspelningar till alla hjärtområdena (i motsats till helhjärtans beredningar).

Protocol

Djurhantering måste överensstämma med riktlinjerna från den lokala djurskyddskommittén och till Europaparlamentets direktiv 2010/63 / EU. 1. Förbered lösningar Beredning av Tyrodes lösning utan Ca 2+ (komposition i mM): NaCl 136, KCl 5,4, NaH2PO4 0,33, MgCl2 1, glukos 10, HEPES 5, 2,3-butandionmonoxim (BDM) 30. Justera pH till 7,4 Med NaOH vid 4 ° C. Beredning av Tyrodes lösning med Ca2 + (komposition i mM): NaCl 136, KCl 5,4, NaH2PO4 0,33…

Representative Results

Myokardinfarkt leder till en praktiskt taget irreversibel förlust av kardiomyocyter. Cellersättningsterapi med hjälp av stamcellsavledda kardiomyocyter för exogen hjärtregeneration är en lovande terapeutisk metod. Elektrisk integration och mognad av de transplanterade cellerna är avgörande för säkerheten och effektiviteten av cellbytesbehandling. För att bedöma integration och mognad, transplanterade vi kardiomyocy…

Discussion

Ventrikulära skivor möjliggör elektrofysiologiska, farmakologiska och mekaniska studier med en bevarad in vivo- liknande vävnadsstruktur och direkt åtkomst av mättekniken till alla hjärtområdena. Fysiologiska verkningspotentialegenskaper har påvisats i embryonala, neonatala och vuxna skivor 9 , 10 , 11 . Skivans vitalitet, med undantag för ytskikten som är direkt skadad av skivproceduren, har bekräftats av …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi bekräftar det stöd som ges av Neurofysiologiska institutets verkstäder och djuranläggning. Detta arbete stöddes av Walter und Marga Boll-Stiftung, Köln Fortune och Deutsche Stiftung für Herzforschung.

Materials

Leica VT 1000s Leica Microsystems, Wetzlar, Germany Microtome with vibrating blade.
Stainless Steel Blades Campden Instruments, Loughborough, England 7550-1-SS
Pasteur pipettes  Sigma-Aldrich, St. Louise, USA Z627992 
Fine brush, e.g. size 6 (4/32") VWR, International, Radnor, USA 149-2125
Preparation table self made
Molt for embedding ventricles in agarose self made
1 ml Syringe Becton, Dickinson;  Franklin Lakes, USA 300013
27Gx3/4“ Needles Braun, Melsungen, Germany 4657705
20G 11/2“ Needles 4657519
Small scissor WPI, Sarasota, USA 501263
Tweezers #5, 0.1 x 0.06 mm tip WPI, Sarasota, USA 500342
Oxygen gas (medical grade O2) Linde, Munich, Germany
Carbogen gas (95 % O2, 5 % CO2)  Linde, Munich, Germany
NaCL Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 7647-14-5
KCL Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 746436
CaCl2 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 746495
KH2PO4 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA NIST200B 
HEPES Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 51558
NaHCO3 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA S5761 
D(+)-Glucose Sigma-Aldrich, St. Louise, USA G8270 
MgSO4 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA M7506 
NaOH Sigma-Aldrich, St. Louise, USA S8045 
Cyanoacrylate glue  Henkel, Düsseldorf, Germany
Low-melt Agarose  Roth, Karlsruhe, Germany 6351.2
Heparin-sodium-25000 I.E./5mL Ratiopharm, Ulm, Germany
Dulbecco's Modified Eagle Medium  (DMEM), high glucose, GlutaMAX ThermoScientific, Waltham, USA 10566016
SEC-10LX Amplifier npi electronic GmbH, Tamm, Germany SEC-10LX
EPC 9 HEKA Elektronik GmbH, Lambrecht, Germany
Zeiss Axiovert 200 Zeiss, Oberkochen, Germany
 Low magnification Micromanipulator Narashige, Tokyo, Japan Nm-3
High magnification, three-axis micromanipulator Narashige, Tokyo, Japan MHW-3
Peristaltic perfusion pump Multi Channel Systems, Reutlingen, Germany PPS2
2-channel temperature controller Multi Channel Systems, Reutlingen, Germany TCO02
Square pulse stimulator Natus Europe GmbH, Planegg, Germany Grass SD9
Glass capillaries WPI, Sarasota, USA 1B150F-1

References

  1. Yamamoto, C., McIlwain, H. Electrical activities in thin sections from the mammalian brain maintained in chemically-defined media in vitro. J Neurochem. 13, 1333-1343 (1966).
  2. Colbert, C. M. Preparation of cortical brain slices for electrophysiological recording. Methods Mol Biol. 337, 117-125 (2006).
  3. Ad Graaf, I., Groothuis, G. M., Olinga, P. Precision-cut tissue slices as a tool to predict metabolism of novel drugs. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 3, 879-898 (2007).
  4. Kim, Y. H., et al. Cardiopulmonary toxicity of peat wildfire particulate matter and the predictive utility of precision cut lung slices. Part Fibre Toxicol. 11, 29 (2014).
  5. Nembo, E. N., et al. In vitro chronotropic effects of Erythrina senegalensis DC (Fabaceae) aqueous extract on mouse heart slice and pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. J Ethnopharmacol. 165, 163-172 (2015).
  6. Wang, K., et al. Cardiac tissue slices: preparation, handling, and successful optical mapping. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 308, H1112-H1125 (2015).
  7. Bussek, A., et al. Tissue slices from adult mammalian hearts as a model for pharmacological drug testing. Cell Physiol Biochem. 24, 527-536 (2009).
  8. Burnashev, N. A., Edwards, F. A., Verkhratsky, A. N. Patch-clamp recordings on rat cardiac muscle slices. Pflugers Arch. 417, 123-125 (1990).
  9. Pillekamp, F., et al. Establishment and characterization of a mouse embryonic heart slice preparation. Cell Physiol Biochem. 16, 127-132 (2005).
  10. Pillekamp, F., et al. Neonatal murine heart slices. A robust model to study ventricular isometric contractions. Cell Physiol Biochem. 20, 837-846 (2007).
  11. Halbach, M., et al. Ventricular slices of adult mouse hearts–a new multicellular in vitro model for electrophysiological studies. Cell Physiol Biochem. 18, 1-8 (2006).
  12. Halbach, M., et al. Electrophysiological maturation and integration of murine fetal cardiomyocytes after transplantation. Circ. Res. 101, 484-492 (2007).
  13. Halbach, M., et al. Time-course of the electrophysiological maturation and integration of transplanted cardiomyocytes. J. Mol. Cell Cardiol. 53, 401-408 (2012).
  14. Halbach, M., et al. Cell persistence and electrical integration of transplanted fetal cardiomyocytes from different developmental stages. Int. J. Cardiol. 171, e122-e124 (2014).
  15. Halbach, M., et al. Electrophysiological integration and action potential properties of transplanted cardiomyocytes derived from induced pluripotent stem cells. Cardiovasc. Res. 100, 432-440 (2013).
  16. Verrecchia, F., Herve, J. C. Reversible blockade of gap junctional communication by 2,3-butanedione monoxime in rat cardiac myocytes. Am J Physiol. 272, C875-C885 (1997).
  17. Watanabe, Y., et al. Inhibitory effect of 2,3-butanedione monoxime (BDM) on Na(+)/Ca(2+) exchange current in guinea-pig cardiac ventricular myocytes. Br J Pharmacol. 132, 1317-1325 (2001).
  18. Fleischmann, B. K., et al. Differential subunit composition of the G protein-activated inward-rectifier potassium channel during cardiac development. J Clin Invest. 114, 994-1001 (2004).
  19. Peinkofer, G., et al. From Early Embryonic to Adult Stage: Comparative Study of Action Potentials of Native and Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes. Stem Cells Dev. 25, 1397-1406 (2016).
check_url/kr/55725?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Peinkofer, G., Hescheler, J., Halbach, M. Murine Short Axis Ventricular Heart Slices for Electrophysiological Studies. J. Vis. Exp. (124), e55725, doi:10.3791/55725 (2017).

View Video