Summary

DiI perfusjon som en metode for vaskulær visualisering i<em> Ambystoma mexicanum</em

Published: June 16, 2017
doi:

Summary

Ved bruk av en lipofil 1,1'-dioctadecy-3,3,3 ', 3'-tetrametylindokarbocyanin-perklorat (DiI) -fargingsteknikk, kan Ambystoma-mexicanske gjennomgå vaskulær perfusjon for å muliggjøre enkel visualisering av vaskulaturen.

Abstract

Perfusjonsteknikker har blitt brukt i århundrer for å visualisere sirkulasjonen av vev. Axolotl (Ambystoma mexicanum) er en art av salamander som har oppstått som en viktig modell for regenereringsstudier. Det er lite kjent om hvordan revaskularisering skjer i sammenheng med regenerering i disse dyrene. Her rapporterer vi en enkel metode for visualisering av vaskulaturen i aksolotl via perfusjon av 1,1'-dioctadecy-3,3,3 ', 3'-tetrametylindokarbocyaninperklorat (DiI). DiI er et lipofilt karbocyaninfargestoff som umiddelbart settes inn i plasmamembranen til endotelceller. Perfusjon gjøres ved bruk av en peristaltisk pumpe slik at DiI går inn i sirkulasjonen gjennom aorta. Under perfusjon flyter fargestoffet gjennom axolotls blodkar og inkorporerer i lipid-bilaget av vaskulære endotelceller ved kontakt. Perfusjonsprosedyren tar omtrent en time for en åtte-tommers aksolotl. Umiddelbart etter perfusjon wiDiI, kan axolotl visualiseres med et konfokal fluorescerende mikroskop. DiI utsender lys i det rød-oransje området når det er opphisset med et grønt fluorescerende filter. Denne DiI perfusjonsprosedyren kan brukes til å visualisere den vaskulære strukturen til aksolotler eller å demonstrere mønstre av revaskularisering i regenererende vev.

Introduction

Visualisering av vaskulatur spiller en viktig rolle i å forstå strukturen og funksjonen av organismer på tvers av mange arter. Fra det 16. århundre med Leonardo da Vinci, har modeller og grafiske representasjoner av sirkulasjonen blitt studert 1 . Ved hjelp av voks og gummiforme ble vev perfusjonert for å skape tredimensjonale modeller av vaskulaturen, som tillot studiet av organogenese og patogenese 1 , 2 . Harpikser og voks ble farget med fargestoffer som India Ink eller carmine rød for å tillate deres enkle visualisering 1 , 2 . Imidlertid forårsaket disse teknikkene mange problemer fordi deres høye viskositeter forhindret full perfusjon av vev av interesse 1 . Da feltet ble mer sofistikert, kom bruk av konfokale og elektronmikroskop inn i spill, og flyttet perfusjonsteknikken Ues vekk fra støpeformer og mot væskeformige perfusjoner av vaskulaturen, hvorav noen tillater perfusjon og avbildning av blodkar uten å ødelegge startvevet 3 . DiI, et fluorescerende karbocyaninfargestoff, er en slik flekk som tillater perfusjon av dyr uten skade på det vaskulære vevet.

Carbocyanin-fargestoffer er lipofile fargestoffer som innarbeider i cellemembraner ved kontakt. Disse fargene tillater enkel og øyeblikkelig farging av vaskulære endotelceller, som deretter kan ses under et fluorescerende konfokalmikroskop. DiI beveger seg via lateral diffusjon i lipidmembranen av celler, som vist i merking og sporing av nevroner 4 . Kjemisk gir de to alkylkjedene av DiI fargestoffet sin høye affinitet for cellemembraner, mens to konjugerte ringer fra en fluorokrom som er ansvarlig for å sende en rød bølgelengde når den blir opphisset av grønne fluorescerende lysfiltre> 4. DiI har blitt brukt i mange kapasiteter, inkludert vellykket merking av plasmamembranen og både anterograd og retrograd merking i nevroner 5 , 6 . DiI har tidligere vært brukt i perfusjonsprotokoller mens du visualiserer muskulaturen 7 .

Axolotls ( Ambystoma mexicanum ) er salamanders som bor utelukkende i brakiske innsjøer i nærheten av Mexico City, Mexico. Disse dyrene har blitt en viktig modell for å forstå regenerative prosesser som de kan regenerere hele lemmer, hale (inkludert nerve ledning), hjertepartier og andre indre organer og deler av øyet som voksne 8 , 9 . I tillegg, med den nylig anvendte genetiske verktøyet i aksolotene, er det nå mulig å få enestående innsikt i molekylene og cellene som driver disse prosessene 8 . Den vellykkede regenenRation av en hel lem krever en omfattende revaskulariseringsprosess, som kan spille en betydelig rolle i regenerering utover bare de tradisjonelle funksjonene til blodkar i å gi oksygen og næringsstoffer. Forståelse av revaskularisering i sammenheng med vevregenerering er viktig. Axolotl blodkar har tidligere blitt visualisert ved hjelp av India Ink, og mens resultatene var spennende, har denne prosessen ikke blitt revidert i påfølgende tiår 10 . Vi søkte å tilpasse en DiI perfusjonsprotokoll utviklet for bruk i pattedyr for å muliggjøre en fullstendig perfusjon og visualisering av aksolotlvaskulaturen 7 . Denne protokollen beskriver trinnene som er tatt for å perfeksjonere og senere visualisere aksolotl-sirkulasjonen med en DiI-fargingsteknikk. Denne prosedyren vil tillate nøyaktig visualisering av patent blodkar i hjemostatiske vev, så vel som i regenererende vev, og gir en ny metode for visualizatioN og analyse av revaskulariseringsprosessen i axolotl.

Protocol

Alle aksolotl-eksperimenter ble utført i samsvar med Brigham og Women's Hospital's (BWH) Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Sett opp Perfusion Experiment Plasser en voksen axolotl i en plastbeholder fylt med 0,1% tricaine-oppløsning (MS222) i 15-20 minutter eller til helt bedøvet. Sørg for at beholderen er fylt med nok tricaine løsning slik at axolotl er helt nedsenket. Merk: Alle prosedyrer må utføres i samsvar med institusjonelle retningslinjer…

Representative Results

Med DiI-farging kan sylinderens vaskulator lett visualiseres. Blodkar av dyr perfusert med det lipofile fargestoffet er umiddelbart synlige under et fluorescerende konfokalmikroskop. Figur 1 .1-1.5 er en skjematisk fremstilling av perfusjonsprotokollen. Etter perfusjon med det lyserøde fargestoffet, vil en vellykket perfused axolotl vises rosa. Ved å bruke et grønt fluorescerende filter på et konfokalt mikroskop vil det oppstå en …

Discussion

Visualisering av aksolotlens vaskulat kan vellykkes gjennom perfusjon med det lipofile karbocyaninfargestoffet, DiI. I denne studien beskriver vi en romanprotokoll for perfusjon av axolotl med DiI ved hjelp av en peristaltisk pumpe. Vi viser også den påfølgende visualiseringen av aksolotlvaskulaturen ved hjelp av et fluorescerende konfokalmikroskop. Denne protokollen var en tilpasning av gnagere DiI perfusjonsprotokollen sett i Li et al. 7 , men store forskjeller mellom gnageren og ax…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøkelsen ble støttet av Brigham & Women's Hospital og March of Dimes. Forfatterne vil gjerne takke alle medlemmene av Whited Lab for deres støtte og råd.

Materials

Peristaltic Pump  Marshall Scientific  RD-RP1
Perfusion tubing Excelon Lab & Vacuum Tubing 436901705 size S1A
27g butterfly needle EXELint Medical Products 26709
NaCl AmericanBio 7647-14-5
KCl AmericanBio 7747-40-7
Na2HPO4  AmericanBio 7558-79-4
NaH2PO4 AmericanBio 10049-21-5
Distilled water
HCl AmericanBio 7647-01-0
Glucose ThermoFischer A2494001
1,1′-Dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindocarbocyanine perchlorate Sigma Aldrich 468495
Ethanol (100% vol/vol) Sigma Aldrich 64-17-5
Surgical foreceps  Medline MDG0748741
Polystyrene foam frame any polystyrene foam square with an axolotl-shaped  cut out
Surgical scissors Medline DYND04025
Scalpel  Medline MDS15210
Absorbent underpad Avacare Medical PKUFSx
Paper towels
Standard disposable transfer pipette Fisherbrand 50216954
Clamp stand Adafruit 291
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate Sigma Aldrich E10521 Tricaine powder
Adult axolotl
MgSO4 AmericanBio 10034-99-8
CaCl2 Sigma Aldrich C1016-100G
NaHCO3 Sigma Aldrich S5761-500G
Plastic tanks Varying size appropriate for the axolotl
Paraformaldehyde Sigma Aldrich 30525-89-4
Axolotl
Leica Microscope Leica M165 FC
ET-CY3 Fluorescent Filter Leica M205FA/M165FC

References

  1. Giuvarasteanu, I. Scanning electron microscopy of vascular corrosion casts – standard method for studying microvessels. Rom J Morphol Embryo. 48 (3), 257-261 (2007).
  2. Hasan, M. R., Herz, J., Hermann, D. M., Doeppner, T. R. Intravascular perfusion of carbon black ink allows reliable visualization of cerebral vessels. J Vis Exp. (71), e4374 (2013).
  3. Minnich, B., Lametschwandtner, A. Scanning electron microscopy and vascular corrosion casting for the characterization of microvascular networks in human and animal tissues. Microscopy: Science, Technology, Applications, and Education. 1, 29-39 (2010).
  4. Honig, M., Hume, R. I. DiI and DiO: versatile fluorescent dyes for neuronal labelling and pathway tracing. Trends Neurosci. 13, 333-335 (1989).
  5. Honig, M. G., Hume, R. I. Fluorescent carbocyanine dyes allow living neurons of identified origin to be studied in long-term cultures. J Cell Biol. 103 (1), 171-187 (1986).
  6. Schwartz, M., Agranoff, B. W. Outgrowth and maintenance of neurites from cultured goldfish retinal ganglion cells. Brain Res. 206 (2), 331-343 (1981).
  7. Li, Y., Song, Y., Zhao, L., Gaidosh, G., Laties, A. M., Wen, R. Direct labeling and visualization of blood vessels with lipophilic carbocyanine dye DiI. Nat Protoc. 3 (11), 1703-1708 (2008).
  8. Kuo, T. H., Kowalko, J. E., DiTommaso, T., Nyambi, M., Montoro, D. T., Essner, J. J., Whited, J. L. Evidence of TALEN-mediated gene editing of an endogenous locus in axolotl. Regeneration. 2 (1), 37-43 (2015).
  9. Brockes, J. P., Kumar, A. Appendage Regeneration in Adult Vertebrates and Implications for Regenerative Medicine. Science. 310 (5756), 1919-1923 (2005).
  10. Smith, A. R., Wolpert, L. Nerves and angiogenesis in amphibian limb regeneration. Nature. 257 (5523), 224-225 (1975).
check_url/kr/55740?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Saltman, A. J., Barakat, M., Bryant, D. M., Brodovskaya, A., Whited, J. L. DiI Perfusion as a Method for Vascular Visualization in Ambystoma mexicanum. J. Vis. Exp. (124), e55740, doi:10.3791/55740 (2017).

View Video