Summary

מערכת משולבת להפעיל מרחוק אותות תאיים על-ידי Photoactivation קינאז בתיווך Upconversion ננו-חלקיק

Published: August 30, 2017
doi:

Summary

ב פרוטוקול זה, בכלובים קינאז A (PKA), bioeffector התמרה חושית אותות סלולריים, היה מרותק למיטה על משטח ננו-חלקיק microinjected לתוך ציטוזול, מופעל על ידי upconverted UV אור אינפרא אדום (ניר) הקרנה, גרימת מתח הזרם התפוררות סיבים ב ציטוזול.

Abstract

ננו-חלקיק Upconversion (UCNP)-photoactivation בתיווך היא גישה חדשה מרחוק שליטה bioeffectors עם הרבה פחות phototoxicity ועם חדירה לרקמות עמוקות יותר. עם זאת, המכשור הקיים בשוק אינה תואמת ברצון upconversion היישום. לכן, שינוי זמין מסחרית לכלי חיוני עבור מחקר זה. בנייר זה, אנו קודם ממחישים את השינויים של fluorimeter קונבנציונלי ו קרינה פלואורסצנטית מיקרוסקופ כדי להפוך אותם תואם לניסויים upconversion פוטון. לאחר מכן נתאר את הסינתזה של-סגול (ניר)-עוררה בכלובים קינאז A קטליטי יחידת משנה של חלבונים (PKA) ותשמרו על מתחם UCNP. פרמטרים עבור microinjection ונהלים photoactivation ניר מדווחים גם. לאחר בכלוב PKA-UCNP הוא microinjected לתוך תאי פיברובלסט REF52, ההקרנות ניר, אשר עדיפה משמעותית על-קונבנציונאלי הקרנת UV, מפעיל ביעילות מסלול התמרה חושית אות PKA בתאים חיים. בנוסף, ניסויים בקרה חיובית ושלילית לאשר כי מסלול PKA-induced שמוביל התפוררות של סיבי סטרס המופעלת באופן ספציפי על-ידי ניר הקרנה. לפיכך, השימוש של חלבון-השתנה UCNP מספק גישה חדשנית לשלוט מרחוק מאופנן אור הסלולר ניסויים, שבה יש להימנע חשיפה ישירה לאור UV.

Introduction

חלבונים ששונו כימית זה יכול להיות photoactivated (למשל, חלבונים PKA בכלוב) פותחו כשדה המתעוררים בביולוגיה כימי לטיפול לא פולשני תהליכים ביוכימיים המערכת1,2 ,3. באמצעות אור כמו גירוי מספק רזולוציה מעולה ייתכן בעת הפעלת אלה בכלוב חלבונים. אולם אור UV יכולה לגרום שינויים מורפולוגיים רצויה אפופטוזיס, נזק לדנ א תאים4,5. לפיכך, ההתפתחויות האחרונות בעיצוב של קבוצות photocaging מתמקדים הפעלת photocleavage על עירור הגל או שני הפוטונים כדי להפחית את phototoxicity, כמו גם כדי להגביר את רקמות עמוק חדירה6,7. קבוצות שכולאת המגיבות אורך גל ארוך יותר המאפשר לנו לבחור מתאימים אורכי של uncaging גל (קרי, ערוצי) באופן סלקטיבי להפעיל bioeffectors כאשר שני או יותר קבוצות caging נוכח7. בהינתן התכונות השימושיות הבאות, פיתוח קבוצות חדשות photocaging האורות האדומים היא עבודה מאד חשובה במעלה הזרם של מתודולוגיות פוטו אטמוספרי מחקרים ביולוגיים החל בודק את המנגנון של תגובות לשליטה פעילות הסלולר8. בכל זאת, קבוצת caging שני הפוטונים הוא בדרך כלל גם הידרופוביות בזכות מבנה הטבעת הארומטית מאוחה, קבוצה caging האור הוא בדרך כלל אורגנומתכתית, עם ליגנדים ארומטי. מאפיין זה הידרופובי/ארומטי אינה מתאימה כאשר bioeffector הוא חלבון או אנזים, כפי שהוא denatures באתר האקטיבציה של החלבון/האנזים גורם לאובדן של הפונקציה, אפילו אם ההטיה ואת פוטוליזה עדיין עובד ברמה הכימית2 ,9.

UCNPs הם מתמרים יעיל זה להמיר את האור עירור ניר UV. מאפיין זה ייחודי ומרתק של UCNPs הציע רזולוציות מציאותי להתייחס לאתגרים הקשורים photoactivation ועורר שחרור מבוקר של מולקולות קטנות, כולל חומצה פולית10, ציספלטין נגזרים11 , DNA/siRNA12קופולימר שלפוחית13, חלקיקים חלול14. עם זאת, לפי מיטב ידיעתנו, photoactivation UCNP בסיוע של אנזימים או חלבונים לא נבדקו עד כה. כי אין שום תיק מוצלח של שימוש באור אדום או ניר photoactive אנזים, לנו היו מתבקש לבצע את ההפעלה המופעלות ניר של מבנה חלבון/אנזים מורכב מתחמי ששונו כימית אנזים בכלוב עם סיליקה מצופים, לנתניד מסטול UCNP15. במחקר זה, היה UCNP מצומדת עם קינאז התמרה חושית מגיבים במהירות האות בצורה של PKA בכלובים. PKA שולט סינתזה הגליקוגן ורגולציה cytoskeletal המגיבה לגירויים חיצוניים באמצעות מחזורית אדנוזין פוספט (מחנה) תקנה ציטוזול16. למדנו את הכדאיות של הפעלת אנזים נימוסים הגיאופוליטיות והמרחביות טמפורלית בניסוי הסלולר לאחר הקרנה ניר. פלטפורמה זו בסיוע UCNP photoactivation הוא מתודולוגיה חדשה photoactivate אנזים באמצעות ניר ומונעת את התגובה התמרה חושית אות בלתי רצויה מתאי הנגרמת על ידי קונבנציונאלי UV הקרנה2,4.

. זה קשה מאוד translocate גדול bioeffectors (למשל, חלבונים) על פני קרום התא כדי לשלוט פעילות תאית. למרות חלבון חלקיקים. מרותק למיטה עשוי להיות קל יותר translocate באמצעות אנדוציטוזה לתוך ציטוזול, ייתכן אנדוציטוזה פגום או מושפל באמצעות מלכודת endosomal ו-2,את הסוגר השפלה lysosomal4. גם אם החלבון בכלוב הוא עדיין מתפקד לאחר רוברטסונית ממברנה, הכמויות translocated אולי לא יהיה מספיק כדי לעורר תגובת תאי ה-2,17 בניגוד חריף, microinjection היא גישה ישירה ולא כמותיים כדי לספק bioeffectors גדולים אל הציטופלסמה של התא. יתר על כן, bioeffector UCNP. מרותק למיטה דורש אור upconverted להיות מופעל. לכן, מכשור אופטי דורש שינוי כדי למדוד באופן חזותי, לנצל את האור upconversion. בעבודה זאת, המסירה של מתחם PKA-UCNP בכלובים לתא באמצעות microinjection ו חיוניים ספקטרוסקופיה ו מיקרוסקופ השינויים הבאים עבור ניר photoactivation יתוארו בפרוטרוט.

Protocol

הערה: הפרוטוקול מתארת שינוי נתונים היסטוריים אינסטרומנטציה עבור photoactivation בסיוע upconversion, הליך סינתטיים כדי להפיק בכלוב PKA-UCNP, במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים (TEM) של UCNP מצופה סיליקה ו בכלוב דגימות PKA-UCNP, UV ו ניר פוטוליזה, הכנה תא, PKA-UCNP microinjection, מחקר photoactivation הקמה מתח סיבים ההכתמה של תאים REF52. <p clas…

Representative Results

העיצוב של הבונה אנזים בכלוב-UCNP מודגם באיור1. האנזים PKA היה תחילה הגיבו 2-nitrobenzyl ברומיד ליצירת של PKA בכלוב אינו פעיל, זה היה אז electrostatically ללא יכולת תנועה על פני השטח של UCNP. UCNPs פולטים אור upconverted, וכתוצאה מכך photolytically קליב הקבוצות o-nitrobenzyl על Cys 199 ואת Cys 343, יוצר את PKA ?…

Discussion

בעבר, הופמן ועמיתים מצא כי שינויים מורפולוגיים דרמטי נצפו בתאים REF52 לאחר microinjection של PKA חופשי19. במחקר אחר, קבוצת לורנס הוכיח כי PKA בכלוב יכול להיות מופעל ויוו, המוביל שינויים מורפולוגיים התפוררות של סיבי סטרס כאשר נתון UV פוטוליזה20. מוקדם יותר דיווח על ניצול אור …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים המדע ננו טכנולוגיה תוכנית של אקדמיה Sinica, משרד המדע ואת הטכנולוגיה של טייוואן לצורך מימון (101-2113-M-001-001-MY2; 103-2113-M-001-028-MY2).

Materials

Reagent
Tris(hydorxymethyl)aminomethane Sigma 154563
Magnesium chloride hexahydrate Sigma M9272
MOPS Sigma M1254
HEPES Sigma H4034
Sodium chloride  Sigma 31434
Potassium chloride Sigma 12636
Yttrium acetate hydrate Sigma 326046 Y(C2H3CO2)3 · xH2O
Thulium(III) acetate hydrate Alfa Aesar 14582 Tm(CH3CO2)3 · xH2O
Ytterbium(III) acetate tetrahydrate Sigma 326011 Yb(C2H3O2)3 · 4H2O
1-Octadecene Sigma O806
Oleic acid Sigma 364525
Methanol  macron 304168
Sodium hydroxide Sigma 30620
Ammonium fluoride J.T.Baker 69804
IGEPAL CO-520 Sigma 238643
Cyclohexane J.T.Baker 920601
Amomonium hydroxide (28%-30%) J.T.Baker 972101 Ammonia
Tetraethyl orthosilicate (TEOS) Sigma 8658
DL-Dithiothreitol (DTT) Sigma D0632
N-hydroxymaleimide (NHM) Sigma 226351 PKA activity blocking reagent
Prionex protein stabilizer solution from hog collagen Sigma 81662 Protein stabilizer solution
2-nitrobenzyl bromide (NBB) Sigma 107794 PKA caging reagent
8-(4-Chlorophenylthio)adenosine 3′,5′-cyclic monophosphate sodium salt Sigma C3912 8-CPT-cAMP
Pyruvate Kinase/Lactic Dehydrogenase enzymes from rabbit muscle Sigma P0294 PK/LDH
Adenosine 5'-triphosphate disodium Sigma A2387 ATP
β-NADH reduced from dipotassium Sigma N4505
Phosphoenolpyruvate Sigma P7127 PEP
Coomassie Protein Assay Reagent, 950 ml Thermo Scientific 23200 Bradford assay reagent
cAMP-dependent protein kinase Promega V5161 PKA activity control
pET15b-PKACAT plasmid Addgene #14921
pKaede-MC1 plasmid CoralHue AM-V0012
Phosphate buffered saline (PBS), pH 7.4 Thermo Scientific 10010023
DMEM, high glucose, pyruvate Gibco 12800-017 Cell culture medium
Leibovitz L-15 Medium Biological Industries 01-115-1A Cell culture medium
Fetal Bovine Serum Biological Industries 04-001-1A
Paraformaldehyde ACROS 416785000
DAPI Invitrogen D1306 Nucleus staining dye
Alexa 594-phalloidin Invitrogen A12381 F-actin staining dye
5(6)-Carboxyfluorescein Novabiochem 8.51082.0005
5(6)-Carboxytetramethylrhodamine  Novabiochem 8.51030.9999
Pierce Coomassie (Bradford) Protein Assay Kit Thermo Scientific 23200
CelluSep T4 Tubings/Nominal filter rating MWCO 12000-14000 Da Membrane Filtration Products, Inc. 1430-33 Dialysis membrane
Millex-HV Syringe Filter Unit, 0.45 µm, PVDF, 13 mm, gamma sterilized EMD Milipore SLHVX13NL
Equipment
Dynamic Light Scattering/Zetapotential Zetasizer nano-ZS Malvern M104
Transmission Electron Microscope JEOL JEM-1400
Fluorescence Spectrophotometer Agilent Technologies 10075200 Cary Eclipse 
UV-Vis Spectrophotometer Agilent Technologies 10068900 Cary 50 
Fluorescence Microscopy Olympus IX-71
950 nm longpass filter  Thorlabs FEL0950
850 nm dichroic mirror shortpass Chroma NC265609
RT3 color CCD system SPOT RT2520
Fluorescence Illumination PRIOR Lumen 200
980nm Infra-red diode laser CNI MDL-N-980-8W
UV LED Spot Light Source UVATA UVATA-UPS412 With a UPH-056-365 nm LED at 200 mW/cm2
Thermal pile sensor OPHIR 12A-V1-ROHS
Picospritzer III Parker Hannifin 052-0500-900 Intracellular Microinjection Dispense Systems
PC-10 Needle puller Narishige PC-10
MANOMETER Digital pressure gauge Lutron PM-9100
One-axis Oil Hydraulic Micromanipulator Narishige MMO-220A
Heraeus Fresco 17 Centrifuge, Refrigerated Thermo Scientific 75002421

References

  1. Brieke, C., Rohrbach, F., Gottschalk, A., Mayer, G., Heckel, A. Light-Controlled Tools. Angew Chem Int Ed. 51 (34), 8446-8476 (2012).
  2. Lee, H. M., Larson, D. R., Lawrence, D. S. Illuminating the Chemistry of Life: Design, Synthesis, and Applications of “Caged” and Related Photoresponsive Compounds. ACS Chem Biol. 4 (6), 409-427 (2009).
  3. Pavlovic, I., et al. Cellular Delivery and Photochemical Release of a Caged Inositol-pyrophosphate Induces PH-domain Translocation in Cellulo. Nature Commun. 7, 10622-10629 (2016).
  4. Priestman, M. A., Sun, L. A., Lawrence, D. S. Dual Wavelength Photoactivation of cAMP- and cGMP-Dependent Protein Kinase Signaling Pathways. ACS Chem Biol. 6 (4), 377-384 (2011).
  5. Amatrudo, J. M., Olson, J. P., Lur, G., Chiu, C. Q., Higley, M. J., Ellis-Davies, G. C. R. Wavelength-Selective One- and Two-Photon Uncaging of GABA. ACS Chem Neurosci. 5 (1), 64-70 (2014).
  6. Warther, D., et al. Two-Photon Uncaging: New Prospects in Neuroscience and Cellular Biology. Bioorg Med Chem. 18 (22), 7753-7758 (2010).
  7. Priestman, M. A., Shell, T. A., Sun, L., Lee, H. M., Lawrence, D. S. Merging of Confocal and Caging Technologies: Selective Three-Color Communication with Profluorescent Reporters. Angew Chem. Int Ed. 51 (31), 7684-7687 (2012).
  8. Hansen, M. J., Velema, W. A., Lerch, M. M., Szymanski, W., Feringa, B. L. Wavelength-selective cleavage of photoprotecting groups: strategies and applications in dynamic systems. Chem Soc Rev. 44 (11), 3358-3377 (2015).
  9. Klán, P., et al. Photoremovable Protecting Groups in Chemistry and Biology: Reaction Mechanisms and Efficacy. Chem Rev. 113 (1), 119-191 (2013).
  10. Chien, Y. H., et al. Near-Infrared Light Photocontrolled Targeting, Bioimaging, and Chemotherapy with Caged Upconversion Nanoparticles in Vitro and in Vivo. ACS Nano. 7 (10), 8516-8528 (2013).
  11. Min, Y. Z., Li, J. M., Liu, F., Yeow, E. K. L., Xing, B. G. Near-Infrared Light-Mediated Photoactivation of a Platinum Antitumor Prodrug and Simultaneous Cellular Apoptosis Imaging by Upconversion-Luminescent Nanoparticles. Angew Chem Int Ed. 53 (4), 1012-1016 (2014).
  12. Yang, Y. M., Liu, F., Liu, X. G., Xing, B. G. NIR Light Controlled Photorelease of siRNA and Its Targeted Intracellular Delivery Based on Upconversion Nanoparticles. Nanoscale. 5 (1), 231-238 (2013).
  13. Wu, T. Q., Barker, M., Arafeh, K. M., Boyer, J. C., Carling, C. J., Branda, N. R. A UV-Blocking Polymer Shell Prevents One-Photon Photoreactions while Allowing Multi-Photon Processes in Encapsulated Upconverting Nanoparticles. Angew Chem Int Ed. 52 (42), 11106-11109 (2013).
  14. Zhou, L., Chen, Z. W., Dong, K., Yin, M. L., Ren, J. S., Qu, X. G. DNA-mediated Construction of Hollow Upconversion Nanoparticles for Protein Harvesting and Near-Infrared Light Triggered Release. Adv Mater. 26 (15), 2424-2430 (2014).
  15. Gao, H. -. D., et al. Construction of a Near-Infrared-Activatable Enzyme Platform To Remotely Trigger Intracellular Signal Transduction Using an Upconversion Nanoparticle. ACS Nano. 9 (7), 7041-7051 (2015).
  16. Wehbi, V. L., Taskén, K. Molecular Mechanisms for cAMP-Mediated Immunoregulation in T cells – Role of Anchored Protein Kinase A Signaling Units. Front Immunol. 7, (2016).
  17. Pitchiaya, S., Heinicke, L. A., Custer, T. C., Walter, N. G. Single Molecule Fluorescence Approaches Shed Light on Intracellular RNAs. Chem Rev. 114 (6), 3224-3265 (2014).
  18. Gao, D., Tian, D., Zhang, X., Gao, W. Simultaneous Quasi-one dimensional Propagationand Tuning of Upconversion Luminescence Through Waveguide Effect. Scientific Rep. 6, 22433-22442 (2016).
  19. Roger, P. P., Rickaert, F., Huez, G., Authelet, M., Hofmann, F., Dumont, J. E. Microinjection of catalytic subunit of cyclic AMP-dependent protein kinases triggers acute morphological changes in thyroid epithelial cells. FEBS Lett. 232 (2), 409-413 (1988).
  20. Curley, K., Lawrence, D. S. Photoactivation of a Signal Transduction Pathway in Living Cells. J Am Chem Soc. 120 (33), 8573-8574 (1998).
  21. Carling, C. J., Nourmohammadian, F., Boyer, J. C., Branda, N. R. Remote-control Photorelease of Caged Compounds Using Near-infrared Light and Upconverting Nanoparticles. Angew Chem Int Ed. 49 (22), 3782-3785 (2010).
  22. Garcia, J. V., et al. NIR-triggered Release of Caged Nitric Oxide Using Upconverting Nanostructured Materials. Small. 8 (24), 3800-3805 (2012).
  23. Liu, G., Zhou, L. Z., Su, Y., Dong, C. M. An NIR-responsive and sugar-targeted polypeptide composite nanomedicine for intracellular cancer therapy. Chem Commun. 50 (83), 12538-12541 (2014).
check_url/kr/55769?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gao, H., Thanasekaran, P., Chen, T., Chang, Y., Chen, Y., Lee, H. An Integrated System to Remotely Trigger Intracellular Signal Transduction by Upconversion Nanoparticle-mediated Kinase Photoactivation. J. Vis. Exp. (126), e55769, doi:10.3791/55769 (2017).

View Video