Dette manuskript beskriver den eksperimentelle procedure og softwareanalyse for et tovejs integrationssite-assay, der samtidigt kan analysere opstrøms og nedstrøms vektor-værtsforbindelses-DNA. Tovejsede PCR-produkter kan anvendes til enhver downstream-sekventeringsplatform. De resulterende data er nyttige til en høj-gennemløbs kvantitativ sammenligning af integrerede DNA-mål.
Integration Site (IS) analyser er en kritisk komponent i studiet af retrovirale integrationssteder og deres biologiske betydning. I nyere retrovirale genterapiundersøgelser er IS-analyser i kombination med næste generations sekventering blevet anvendt som et celleopsparingsværktøj til karakterisering af klonale stamcellepopulationer, der deler samme IS. For den nøjagtige sammenligning af repopulerende stamcellekloner inden for og på tværs af forskellige prøver er detektionens følsomhed, data reproducerbarhed og høj gennemløbskapacitet af analysen blandt de vigtigste analysekvaliteter. Dette arbejde giver en detaljeret protokol- og dataanalyseproces for tovejs-IS-analyse. Det tovejsede assay kan samtidigt sekvensere både opstrøms og nedstrøms vektor-værtsforbindelser. Sammenlignet med konventionelle ensrettede IS-sekventeringsmetoder forbedrer den tovejstilgang signifikant IS-detektionshastigheder og karakteriseringen af integrationshændelser i begge ender af tHan målretter DNA. Dataanalysepipelinjen beskrevet her identificerer og opregner identiske og identiske identiske sekvenser gennem flere trin af sammenligning, som kort IS sekvenser på referencegenomet og bestemmer sekventeringsfejl. Ved hjælp af en optimeret analyseprocedure har vi for nylig offentliggjort de detaljerede repopulation mønstre af tusinder af hæmatopoietiske stamceller (HSC) kloner efter transplantation i rhesus macaques, der for første gang demonstrerer det præcise tidspunkt for HSC-repopulation og den funktionelle heterogenitet af HSC'er i Primatsystem. Den følgende protokol beskriver trin for trin eksperimentel procedure og dataanalyse-arbejdsgang, der identificerer og kvantificerer identiske IS-sekvenser nøjagtigt.
Retrovirus indsætter deres genomiske DNA i værtsgenomet på forskellige steder. Denne unikke egenskab, som kan bidrage til udviklingen af kræftformer og andre former for viral patogenese, har den ironiske fordel at gøre disse vira yderst velegnede til celleteknik til genterapi og grundbiologiforskning. Viral Integration Site (IS) – placeringen på værtsgenomet hvor et fremmed DNA (virus) er integreret – har vigtige implikationer for skæbnen for både de integrerede vira og værtscellerne. IS-analyser er blevet anvendt i forskellige biologiske og kliniske forskningsinstitutioner for at studere retroviral integrationssiteudvælgelse og patogenese, kræftudvikling, stamcellebiologi og udviklingsbiologi 1 , 2 , 3 , 4 . Lav detektionsfølsomhed, dårlig data reproducerbarhed og hyppig krydskontaminering er blandtNøglefaktorerne begrænser anvendelsen af IS-analyser til aktuelle og planlagte undersøgelser.
Mange IS-analyseteknologier er blevet udviklet. Restriktionsenzymbaserede integrationssite-assays, herunder linker-medieret (LM) polymerase-kædereaktion (PCR) 5 , inverse PCR 6 og lineærforstærkningsmedieret (LAM) PCR 7 er de mest anvendte. Anvendelsen af stedsspecifikke restriktionsenzymer genererer imidlertid en bias under hentningen af IS, hvilket tillader kun en delmængde af integromer (et fremmed DNA integreret i værtsgenomet) i nærheden af restriktionsstedet, der skal genvindes 4 . Analyseteknologier, der mere omfattende vurderer vektor IS, er også blevet introduceret i de seneste år. Disse analyser anvender forskellige strategier, herunder Mu transposon-medieret PCR 8 , ikke-restriktive (nr) -LAM PCR 9 , type II restriktionsenzym-mEdieret fordøjelse 10 , mekanisk forskydning 11 og tilfældig hexamerbaseret PCR (Re-fri PCR) 12 til fragmentering af genomiske DNA'er og amplificering af IS. Nuværende teknologier har varierende niveauer af detektionsfølsomhed, genomdækning, målspecificitet, høj kapacitetskapacitet, kompleksitet af analyseprocedurer og forstyrrelser ved detektering af de relative frekvenser af målsteder. I betragtning af de forskellige kvaliteter af de eksisterende analyser og de forskellige formål, som de kan anvendes til, bør den optimale analysemetode udvælges omhyggeligt.
Dette arbejde giver detaljerede eksperimentelle procedurer og en beregningsdataanalyseproces for et tovejsanalyse, der signifikant forbedrer detektionshastigheder og sekvenskvantificeringsnøjagtighed ved samtidigt at analysere IS opstrøms og nedstrøms for det integrerede mål-DNA (se figur 1 for et skematisk billede af analyseprocedurerne ). Denne tilgang giver ogsåS midler til at karakterisere den retrovirale integrationsproces (for eksempel troværdigheden af målstedduplikation og variationer i de genomiske sekvenser af opstrøms og nedstrøms insertioner). Andre bidirektionelle metoder er primært brugt til kloning og sekventering af begge ender af mål-DNA'et 11 , 13 , 14 . Dette assay optimeres i høj grad for den høje gennemstrømning og reproducerbare kvantificering af vektormarkerede kloner ved anvendelse af den veletablerede LM-PCR-metode og beregningsanalyse-kortlægning og til kvantificering af både opstrøms og nedstrøms krydsninger. Tovejsanalyse med TaqaI- enzymet har vist sig nyttigt til højkvalitets klonal kvantificering i stamcelle genterapi prækliniske studier 2 , 15 . Dette papir beskriver en ændret metode ved hjælp af en hyppigere cutter (RsaI / CviQI – motiv: GTAC), der fordobler tHan chancer for at detektere integromer sammenlignet med et TaqaI- baseret assay . Detaljerede forsøgs- og dataanalyseprocedurer, der bruger GTAC-motiv enzymer til lentiviral (NL4.3 og dets derivater) og gamma-retroviral (pMX vektorer) vektor IS-analyse, er beskrevet. Oligonukleotiderne anvendt i assayet er anført i tabel 1 . Et internt programmeringsskript til IS-sekvensanalyse findes i supplerende dokument.
Det tovejsede assay muliggør samtidig analyse af både opstrøms (venstre) og nedstrøms (højre) vektor-vært-DNA-forbindelsessekvenser og er anvendelig i en række genterapi-, stamceller- og cancerforskningsapplikationer. Anvendelsen af GTAC-motiv-enzymer (RsaI og CviQI) og den tovejsede PCR-tilgang forbedrer signifikant chancerne for at detektere en integromet (eller en klonal population) sammenlignet med tidligere TCGA-motiv enzym ( TaqaI ) -baserede assays 2 ,</…
The authors have nothing to disclose.
Finansiering blev ydet af National Institutes of Health Grants R00-HL116234, U19 AI117941 og R56 HL126544; National Science Foundation Grant DMS-1516675; Koreas Nationale Forskningsfond (NRF-2011-0030049, NRF-2014M3C9A3064552); Og KRIBB initiativprogrammet.
Thermostable DNA polymerase | Agilent | 600424 | PicoMaxx Polymerase |
Thermostable DNA polymerase buffer | Agilent | 600424 | PicoMaxx Polymerase buffer |
Deoxynucleotide (dNTP) solution mix | New England Biolabs | N0447L | dNTP solution mix (10mM each) |
PCR tubes | VWR International | 53509-304 | PCR Strip Tubes With Individual Attached Caps |
2ml microcentrifuge tube | Molecular Bioproducts | 3453 | microcentrifuge tubes |
PCR purification kit | Qiagen | 28106 | |
RsaI | New England Biolabs | R0167L | restriction enzyme |
CviQI | New England Biolabs | R0639L | restriction enzyme |
Buffer A | New England Biolabs | B7204S | NEB CutSmart buffer |
DNA Polymerase I large (klenow) fragment | New England Biolabs | M0210L | Blunting |
streptavidin beads solution | Invitrogen | 60101 | Dynabeads kilobaseBINDER kit |
Binding Solution | Invitrogen | 60101 | Dynabeads kilobaseBINDER kit |
Washing Solution | Invitrogen | 60101 | Dynabeads kilobaseBINDER kit |
magnetic stand | ThermoFisher | 12321D | DynaMag™-2 Magnet |
T4 DNA ligase | New England Biolabs | M0202L | T4 DNA ligase |
10X T4 DNA ligase buffer | New England Biolabs | B0202S | T4 DNA ligase reaction buffer |
5X T4 DNA ligase buffer | Invitrogen | 46300-018 | T4 DNA ligase buffer with polyethylene glycol-8000 |
UV-Vis spectrophotometer | Fisher Scientific | S06497 | Nanodrop 2000 |
pvuII | new England Biolabs | R0151L | restriction enzyme |
sfoI | new England Biolabs | R0606L | restriction enzyme |
Buffer B | new England Biolabs | B7203S | NEB buffer 3.1 |
Nuclease free water | Integrated DNA Technologies | 11-05-01-14 | |
Capillary electrophoresis | Qiagen | 9001941 | QIAxcel capillary electrophoresis |
Veriti 96-well Fast Thermal Cycler | Thermo Fisher Scientific | 4375305 | PCR Instrument |
Rotating wheel (or Roller) | Eppendorf | M10534004 | Cell Culture Roller Drums |
DNA size marker | Qiagen | 929559 | QX size marker (100-2,500 bp) |
DNA size marker | Qiagen | 929554 | QX size marker (50-1,500 bp) |
DNA alignment markers | Qiagen | 929524 | QX DNA Alignment Marker |
genomc DNA | Not Available | Not Available | Sample genomc DNA from in vivo or in vitro experiments |