Summary

Tvåriktad retroviral integrationsplats PCR-metodik och kvantitativ dataanalys arbetsflöde

Published: June 14, 2017
doi:

Summary

Detta manuskript beskriver experimentell procedur och mjukvaruanalys för en dubbelriktad integreringsställeanalys som samtidigt kan analysera uppströms och nedströms vektor-värd-kryssnings-DNA. Tvåriktiga PCR-produkter kan användas för någon nedströms sekvenseringsplattform. Den resulterande data är användbar för en hög genomströmning, kvantitativ jämförelse av integrerade DNA-mål.

Abstract

Integration Site (IS) analyser är en kritisk komponent i studien av retrovirala integrationsställen och deras biologiska betydelse. I de senaste retrovirala genterapistudierna har IS-analyser, i kombination med nästa generationens sekvensering, använts som ett cellspårningsverktyg för att karakterisera klonala stamcellspopulationer som delar samma IS. För den korrekta jämförelsen av repopulerande stamcellkloner inom och över olika prover är detektionens känslighet, dataframtagbarhet och hög genomströmningskapacitet hos analysen bland de viktigaste analysegenskaperna. Det här arbetet ger ett detaljerat protokoll- och dataanalys-arbetsflöde för dubbelriktad IS-analys. Tvåriktningsanalysen kan samtidigt sekvensera både uppströms och nedströms vektor-värdkryssningar. Jämfört med konventionella enriktade IS-sekvenseringsmetoder, förbättrar dubbelriktat tillvägagångssätt signifikant IS-detekteringshastigheter och karakteriseringen av integrationshändelser i båda ändarna av tHan riktar sig mot DNA. Dataanalyspipelinjen som beskrivs här identifierar och summerar identiska IS-sekvenser genom flera steg för jämförelse som kartlägger IS-sekvenser på referensgenomet och bestämmer sekvenseringsfel. Med hjälp av ett optimerat analysförfarande har vi nyligen publicerat detaljerade återuppbyggnadsmönster av tusentals hematopoetiska stamceller (HSC) efter transplantation i rhesusmakar, vilket för första gången demonstrerar den exakta tidpunkten för HSC-repopulationen och den funktionella heterogeniteten hos HSCs i Primatsystem. Följande protokoll beskriver steg för steg experimentell procedur och dataanalys arbetsflöde som exakt identifierar och kvantifierar identiska IS-sekvenser.

Introduction

Retrovirus sätter in deras genomiska DNA i värdgenomet på olika ställen. Denna unika egenskap, som kan bidra till utvecklingen av cancer och andra former av viral patogenes, har en ironisk fördel att göra dessa virus mycket mottagliga för cellteknik för genterapi och grundbiologiforskning. Viral Integration Site (IS) – placeringen på värdgenomet där ett främmande DNA (virus) integreras – har viktiga konsekvenser för ödet för både de integrerade virusen och värdcellerna. IS-analyser har använts i olika biologiska och kliniska forskningsinställningar för att studera retroviralt integrationsställsval och patogenes, cancerutveckling, stamcellsbiologi och utvecklingsbiologi 1 , 2 , 3 , 4 . Låg detekteringskänslighet, dålig datareproducerbarhet och frekvent korsförorening är blandNyckelfaktorerna begränsar användningen av IS-analyser till aktuella och planerade studier.

Många IS-analystekniker har utvecklats. Restriktionsenzymbaserade integrationsstadsanalyser, inklusive Linker-medierad (LM) polymerasekedjereaktion (PCR) 5 , invers PCR 6 och linjärförstärkningsmedierad (LAM) PCR 7 är de mest använda. Användningen av platsspecifika restriktionsenzymer genererar emellertid en bias vid återhämtningen av IS, vilket möjliggör endast en delmängd integrerade (ett främmande DNA integrerat i värdgenomet) i närheten av restriktionsstället som skall återvinnas 4 . Analysteknik som mer omfattande utvärderar vektor IS har också introducerats de senaste åren. Dessa analyser använder olika strategier, innefattande Mu transposon-medierad PCR 8 , icke-restriktiv (nr) -LAM PCR 9 , typ II-restriktionsenzym-mEdierad digestion 10 , mekanisk skjuvning 11 och slumpmässig hexamerbaserad PCR (Re-free PCR) 12 , för fragmentering av genomiska DNA och amplifiering av IS. Nuvarande tekniker har varierande nivåer av detekteringskänslighet, genomdäckning, målspecificitet, hög genomströmningskapacitet, analysprocedurernas komplexitet och förspänningar vid detektering av de relativa frekvenserna hos målplatserna. Med tanke på de olika egenskaperna hos de befintliga analyserna och de olika syften för vilka de kan användas, bör den optimala analysmetoden noggrant väljas.

Detta arbete tillhandahåller detaljerade experimentella förfaranden och ett arbetsdata för databasanalys för en dubbelriktad analys som avsevärt förbättrar detekteringshastigheten och sekvenskvantifieringsnoggrannheten genom att samtidigt analysera IS uppströms och nedströms om det integrerade mål-DNA (se Figur 1 för en schematisk bild av analysprocedurerna ). Detta tillvägagångssätt ger ocksåS medel för att karakterisera den retrovirala integrationsprocessen (till exempel trovärdigheten för målplats duplicering och variationer i de genomiska sekvenserna av uppströms och nedströms införingar). Andra bidirektionsmetoder har använts huvudsakligen för kloning och sekvensering av båda ändarna av mål-DNA 11 , 13 , 14 . Denna analys optimeras i stor utsträckning för hög genomströmning och reproducerbar kvantifiering av vektormärkta kloner, med användning av den väletablerade LM-PCR-metoden och kartläggning av analysanalys och för kvantifiering av både uppströms och nedströms förbindelser. Tvåriktningsanalys med TaqaI- enzymet har visat sig vara användbart för högklassig klonal kvantifiering i prekliniska studier av stamcellsgeneration 2 , 15 . I detta dokument beskrivs en modifierad metod med en frekventare skärare (RsaI / CviQI – motiv: GTAC) som dubblerar tHan chanser att detektera integrer jämfört med en Taqal- baserad analys . Detaljerade experimentella och data analysmetoder som använder GTAC-motiv enzymer för lentivirala (NL4.3 och dess derivat) och gamma-retrovirala (pMX vektorer) vektor IS-analys beskrivs. De oligonukleotider som användes vid analysen är listade i tabell 1 . Ett internt programmeringsskript för IS-sekvensanalys finns i kompletteringsdokumentet.

Protocol

1. Generera uppströms (vänster) – och nedströms (höger) -junktionssekvensbiblioteken DNA-linkerpreparat: Förbered en 10 μl linker-DNA-lösning genom att tillsätta 2 μl 100 μM LINKER_A-oligos (slutlig: 20 μM), 2 μl 100 μM LINKER_B-oligos (slutlig: 20 μM), 2 μl 5 M NaCl (slutlig: 1 M) och 4 pl nukleasfritt vatten i ett PCR-rör. Se tabell 1 för länksekvenserna. Inkubera linker-DNA-lösningen vid 95 ° C under 5 minuter i ett PCR-instrument, st…

Representative Results

Den tvåriktiga IS-analysen genererade olika storlekar av PCR-ampliconer för både uppströms (vänster) och nedströms (höger) vektorvärdesövergångar ( Figur 2 ). Storleken på ett PCR-amplicon är beroende av placeringen av närmaste GTAC-motiv uppströms och nedströms från en integrometod. Analysen producerade också interna DNA-PCR-amplikoner: retrovirala sekvenser nära polypurinområdet och primerbindningsstället förstärktes samtidigt under v…

Discussion

Tvåriktningsanalysen möjliggör samtidig analys av både uppströms (vänster) och nedströms (höger) vektor-värd-DNA-förbindningssekvenser och är användbar i ett antal genterapi-, stamceller- och cancerforskningsapplikationer. Användningen av GTAC-motiv-enzymer (RsaI och CviQI) och det dubbelriktade PCR-förfarandet förbättrar signifikant chanserna för detektering av en integrom (eller en klonal population) jämfört med tidigare TCGA-motiv-enzym ( Taqal ) -baserade analyser <sup class="xre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansiering tillhandahölls av National Institutes of Health Grants R00-HL116234, U19 AI117941 och R56 HL126544; National Science Foundation Grant DMS-1516675; Koreas nationella forskningsstiftelse (NRF-2011-0030049, NRF-2014M3C9A3064552); Och KRIBB-initiativprogrammet.

Materials

Thermostable DNA polymerase Agilent 600424 PicoMaxx Polymerase
Thermostable DNA polymerase buffer Agilent 600424 PicoMaxx Polymerase buffer
Deoxynucleotide (dNTP) solution mix New England Biolabs N0447L dNTP solution mix (10mM each)
PCR tubes VWR International 53509-304 PCR Strip Tubes With Individual Attached Caps
2ml microcentrifuge tube Molecular Bioproducts 3453 microcentrifuge tubes
PCR purification kit Qiagen 28106
RsaI  New England Biolabs R0167L restriction enzyme
CviQI New England Biolabs R0639L restriction enzyme
Buffer A New England Biolabs B7204S NEB CutSmart buffer
DNA Polymerase I large (klenow) fragment  New England Biolabs M0210L Blunting
streptavidin beads solution Invitrogen  60101 Dynabeads kilobaseBINDER kit
Binding Solution Invitrogen  60101 Dynabeads kilobaseBINDER kit
Washing Solution Invitrogen  60101 Dynabeads kilobaseBINDER kit
magnetic stand ThermoFisher 12321D DynaMag™-2 Magnet
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202L T4 DNA ligase
10X T4 DNA ligase buffer New England Biolabs B0202S T4 DNA ligase reaction buffer
5X T4 DNA ligase buffer Invitrogen  46300-018 T4 DNA ligase buffer with polyethylene glycol-8000
UV-Vis spectrophotometer Fisher Scientific S06497 Nanodrop 2000
pvuII new England Biolabs R0151L restriction enzyme
sfoI new England Biolabs R0606L restriction enzyme
Buffer B new England Biolabs B7203S NEB buffer 3.1
Nuclease free water Integrated DNA Technologies 11-05-01-14
Capillary electrophoresis Qiagen 9001941 QIAxcel capillary electrophoresis
Veriti 96-well Fast Thermal Cycler Thermo Fisher Scientific 4375305 PCR Instrument
Rotating wheel (or Roller) Eppendorf M10534004 Cell Culture Roller Drums
DNA size marker Qiagen 929559 QX size marker (100-2,500 bp)
DNA size marker Qiagen 929554 QX size marker (50-1,500 bp)
DNA alignment markers Qiagen 929524 QX DNA Alignment Marker
genomc DNA Not Available Not Available Sample genomc DNA from in vivo or in vitro experiments

References

  1. Serrao, E., Engelman, A. N. Sites of Retroviral DNA Integration: From Basic Research to Clinical Applications. Crit. Rev. Biochem. Mol. Bio. 51 (1), 26-42 (2016).
  2. Kim, S., et al. Dynamics of HSPC Repopulation in Nonhuman Primates Revealed by a Decade-Long Clonal-Tracking Study. Cell Stem Cell. 14 (4), 473-485 (2014).
  3. Bushman, F. Retroviral integration and human gene therapy. J. Clin. Invest. 117 (8), 2083-2086 (2007).
  4. Bystrykh, L. V., Verovskaya, E., Zwart, E., Broekhuis, M., de Haan, G. Counting stem cells: methodological constraints. Nat Meth. 9 (6), 567-574 (2012).
  5. Schröder, A., et al. HIV-1 integration in the human genome favors active genes and local hotspots. Cell. 110 (4), 521-529 (2002).
  6. Silver, J., Keerikatte, V. Novel use of polymerase chain reaction to amplify cellular DNA adjacent to an integrated provirus. J. Virol. 64, 3150 (1990).
  7. Schmidt, M., et al. High-resolution insertion-site analysis by linear amplification-mediated PCR (LAM-PCR). Nat. Meth. 4 (12), 1051-1057 (2007).
  8. Brady, T., et al. A method to sequence and quantify DNA integration for monitoring outcome in gene therapy. Nucleic Acids Res. 39 (11), e72 (2011).
  9. Gabriel, R., et al. Comprehensive genomic access to vector integration in clinical gene therapy. Nat. Med. 15 (12), 1431-1436 (2009).
  10. Kim, S., Kim, Y., Liang, T., Sinsheimer, J., Chow, S. A high-throughput method for cloning and sequencing human immunodeficiency virus type 1 integration sites. J. Virol. 80 (22), 11313-11321 (2006).
  11. Maldarelli, F., et al. Specific HIV integration sites are linked to clonal expansion and persistence of infected cells. Science. 345 (6193), 179-183 (2014).
  12. Wu, C., et al. High Efficiency Restriction Enzyme-Free Linear Amplification-Mediated Polymerase Chain Reaction Approach for Tracking Lentiviral Integration Sites Does Not Abrogate Retrieval Bias. Hum. Gene. Ther. 24 (1), 38-47 (2013).
  13. Aker, M., Tubb, J., Miller, D. G., Stamatoyannopoulos, G., Emery, D. W. Integration Bias of Gammaretrovirus Vectors following Transduction and Growth of Primary Mouse Hematopoietic Progenitor Cells with and without Selection. Mol. Ther. 14 (2), 226-235 (2006).
  14. Gabriel, R., Kutschera, I., Bartholomae, C. C., von Kalle, C., Schmidt, M. Linear Amplification Mediated PCR; Localization of Genetic Elements and Characterization of Unknown Flanking DNA. J Vis Exp. (88), e51543 (2014).
  15. Kim, S., et al. High-throughput, sensitive quantification of repopulating hematopoietic stem cell clones. J. Virol. 84 (22), 11771-11780 (2010).
  16. Mitchell, R., et al. Retroviral DNA integration: ASLV, HIV, and MLV show distinct target site preferences. PLoS Biol. 2 (8), e234 (2004).
  17. Melkus, M., et al. Humanized mice mount specific adaptive and innate immune responses to EBV and TSST-1. Nat. Med. 12 (11), 1316-1322 (2006).
  18. Bystrykh, L. V. A combinatorial approach to the restriction of a mouse genome. BMC Res Notes. 6, 284 (2013).
  19. Beard, B. C., Adair, J. E., Trobridge, G. D., Kiem, H. -. P. High-throughput genomic mapping of vector integration sites in gene therapy studies. Methods Mol Biol. , 321-344 (2014).
  20. Gabriel, R., et al. Comprehensive genomic access to vector integration in clinical gene therapy. Nat. Med. 15 (12), 1431-1436 (2009).
  21. Qin, X., An, D., Chen, I., Baltimore, D. Inhibiting HIV-1 infection in human T cells by lentiviral-mediated delivery of small interfering RNA against CCR5. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (1), 183-188 (2003).
  22. Kitamura, T., et al. Retrovirus-mediated gene transfer and expression cloning: powerful tools in functional genomics. Exp. Hematol. 31 (11), 1007-1014 (2003).
  23. Cartier, N., et al. Hematopoietic stem cell gene therapy with a lentiviral vector in X-linked adrenoleukodystrophy. Science. 326 (5954), 818-823 (2009).

Play Video

Cite This Article
Suryawanshi, G. W., Xu, S., Xie, Y., Chou, T., Kim, N., Chen, I. S. Y., Kim, S. Bidirectional Retroviral Integration Site PCR Methodology and Quantitative Data Analysis Workflow. J. Vis. Exp. (124), e55812, doi:10.3791/55812 (2017).

View Video