Summary

Påvisning af resterende Donor Erythroid stamceller efter hæmatopoietisk stamcelletransplantation til patienter med Hemoglobinopathies

Published: September 06, 2017
doi:

Summary

Kvantificering af donor-afledte celler er forpligtet til at overvåge engraftment efter stamcelletransplantation hos patienter med hemoglobinopathies. En kombination af flow flowcytometri-baserede celle sortering, koloni dannelse assay og efterfølgende analyse af korte tandem gentagelser kan bruges til at vurdere spredning og differentiering af stamfaderen i erythroid rum.

Abstract

Tilstedeværelsen af ufuldstændige kimærisme bemærkes, i en stor del af patienterne efter knoglemarvstransplantation for thalassemia større eller seglcelleanæmi. Denne observation har enorme konsekvenser, som efterfølgende terapeutiske immunomodulation strategier kan forbedre kliniske udfald. Konventionelt, bruges polymerase kædereaktion-baseret analyse af korte tandem gentagelser til at identificere kimærisme i donor-stammer blodlegemer. Men denne metode er begrænset til nukleeret celler og kan ikke skelne mellem dissocierede encellede lineages. Vi anvendes analyse af korte tandem gentagelser til flow cytometric-sorteret hæmatopoietisk stamceller og sammenlignede dette med analyse af korte tandem gentagelser fremstillet af udvalgte burst-dannende enhed – erythroid kolonier, både indsamlet fra knoglen marv. Med denne metode er vi i stand til at demonstrere forskellige spredning og differentiering af donor celler i erythroid rum. Denne teknik er berettiget til at fuldføre nuværende overvågning af kimærisme i stamcelletransplantation indstilling og dermed kan blive anvendt i fremtidige kliniske studier, forskning i stamceller og design af gene therapy forsøg.

Introduction

Allogen hæmatopoietisk stamcelletransplantation (HSCT) er den eneste tilgængelige helbredende tilgang til en række medfødte genetiske sygdomme af hæmatopoietisk systemet, at opnå sygdomsfri overlevelsesrater på mere end 90%, for ellers stærkt kompromitteret og begrænset levetid patienter1. Effekten af dette vigtigt terapeutisk redskab er optimeret ved at begrænse toksiciteten af pre- og efter transplantationen regimer2, men også af interventionerne sigter mod at opretholde stabile graft funktion, som skal være talbestemt ved nøje overvågning af donor-afledte celler3,4,5.

I almindelighed, indebærer komplet kimærisme (CC) den samlede udskiftning af lymphohematopoietic til kabinen af donor-afledte celler, hvorimod udtrykket blandet kimærisme (MC) bruges når donor – og modtager-afledte celler findes samtidig i forskellige proportioner. Split kimærisme (SC) betegner sameksistensen af blandet kimærisme observeret i encellede slægter, som i erythroid rum. Hurtig bestemmelse af kimærisme status efter HSCT er kritisk, da det kan hjælpe med at identificere patienter modtagelige for sygdom tilbagefald og indlede efterfølgende immunmodulerende strategier, som donor lymfocytter infusioner eller reduktion af immunosuppressive behandlingsformer6.

Flere metoder er blevet udviklet for at overvåge engraftment efter HSCT. Isotyping af immunoglobuliner og analyse af cytogenetisk har ringe følsomhed og er begrænsede i deres evne til at detektere polymorfi7,8. Indførelsen af fluorescerende i situ hybridisering (FISH) kan øge følsomheden i kimærisme overvågning efter HSCT, men er begrænset til sex-uoverensstemmende allografts9. I øjeblikket, polymerase kædereaktion (PCR) er den mest udbredte metode til at registrere kimærisme og er baseret på konventionelle Agarosen-acrylamid gelelektroforese af variable number tandem gentagelser (VNTRs) eller korte tandem gentager (mistænkelige). Rutinemæssigt anvendes er kvantitativ PCR købedygtig opdager en meget lille del af de resterende donor celler efter HSCT. De store begrænsning af undersøgelserne hidtil er at MC opdagelse er næsten udelukkende begrænset til tilstedeværelsen af nukleeret celler i stedet for modne erythrocytter, nemlig celler at funktionelt afgørende for patienter påvirkes af hemoglobinopathies. Hos patienter med forskellige blodtyper er det værd at huske at cytofluorometric analyse er købedygtig identificere kimærisme i røde blodlegemer ved hjælp af monoklonale antistoffer rettet mod erytrocyt antigener ABO og C, c, D, E og e10 , 11. en anderledes, men meget interessant middel til vurdering af kimærisme i erythroid afstamning er kombinationen af flow cytometric sortering af erythroid ophav og udsnit af forskellige erythroid stamfader ved dyrkning i clonogenic assays, efterfulgt af en analyse af STR12. Denne tilgang er i stand til at kvantificere relative proportioner af donor-versus-modtageren kimærisme i erythroid rum og kan udnyttes i strategien for at opretholde knoglemarv graft.

Protocol

1. isolation af hæmatopoietisk knoglemarv celler af multi-parameter-fluorescens-aktiveret celle sortering prøve farvning før du starter processen, de følgende punkter skal indsamles og rede: Gradient medier til fremstilling af mononukleære celler (GM), 50 mL konisk rør 12 x 75 mm flow rør til farvning celler farvning buffer: fosfatbufferet saltopløsning (PBS) + 3% føtalt kalveserum (FCS) pipetter FC blok og farvning antistoffe…

Representative Results

Adskillelse af lymphohematopoietic ophav af FACS celle sortering Her viser vi resultater fra sortering de nødvendige cellepopulationer for downstream STR analyse. Knoglemarv celler var plettet med V450-konjugerede anti-CD45, FITC-konjugeret anti-CD36 og APC-konjugerede anti-CD34. Befolkningens interesse er de megakaryocyte erythroid ophav (MEP), nukleeret celler ansvarlig for udviklingen af erytrocytter. Disse …

Discussion

Formålet med den aktuelle undersøgelse er at give publikum en kombination af to tilgange til analyse af donor/recipient kimærisme i erythroid progenitorceller efter HSCT hos patienter behandlet for hemoglobinopathies: 1.) Fluorescens-aktiveret celle sortering af hæmatopoietisk stamceller i knoglemarven prøver efterfulgt af en analyse af korte tandem gentagelser og 2.) kolonidannende enhed vokser af knoglemarv celler, klassificering af kolonier i forskellige stamfader typer efterfulgt af en analyse af korte tandem ge…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Kinderkrebshilfe Regenbogen Südtirol.

Materials

Ficoll-Paque GE Healthcare GE17-1440-02  Remove RBC
50 mL conical tubes Falcon 14-432-22 Sample preparation
12 x 75 mm flow tubes Falcon 352002 FACS sorting
Phosphate buffered saline Gibco 10010023 PBS
Fetal calf serum Invitrogen Inc. 16000-044 FCS (heat-inactivated)
CD34 APC BD Bioscience 561209 FACS-Ab
CD36 FITC BD Bioscience 555454 FACS-Ab
CD45 V450 BD Bioscience 642275 FACS-Ab
Trypan blue Gibco 15250061
Hemocytometer Invitrogen Inc. C10227 Automatic cell counting
Hank’s Balanced Salt Solution Gibco 14025092 Suspension buffer in FACS analysis
HEPES Gibco 15630080 Component of suspension buffer
FcR BD Bioscience 564220 Block FCR
FACS Aria I BD Bioscience 23-11539-00 FACS Sorter
Recombinant  human erythropoietin Affimetrix eBioscience 14-8992-80 EPO
Isocove’s Modified Dulbecco’s Medium Gibco 12440053 IMDM
L-Glutamine Invitrogen 25030-081 Component of Culture Medium
CD34+ magnetic beads Milteny Biotech 130-046-702 CD34+ purification
Recombinant  human G-CSF Gibco PHC2031 CFU-Assay
Recombinant  human SCF Gibco CTP2113 CFU-Assay
Recombinant  human GM-CSF Gibco PHC2015 CFU-Assay
Recombinant  human IL-3 BD Bioscience 554604 CFU-Assay
Recombinant  human IL-6 BD Bioscience 550071 CFU-Assay
Methocult H4434 Medium Stemcell Technologies 4444 CFU-Assay
QiAmp DNA Blood extraction kit Qiagen 51306 DNA Isolation
Nanodrop ND-1000 spectra photometer Thermo Scientific ND 1000 DNA Quantification
DNAase free H2O Thermo Scientific FEREN0521 DNA Preparation
AmplTaq Gold DNA Polymerase Applied Bioscience N8080240 PCR
Eppendorf mastercycler gradient Eppendorf 6321000019 PCR 
Hi-Di Formamid Applied Bioscience 4311320 PCR
GeneScan 500 ROX Size Standard Applied Bioscience 4310361 PCR
3130 Genetic Analyzer Applied Bioscience 313001R PCR

References

  1. Angelucci, E., et al. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia major and sickle cell disease: indications and management recommendations from an international expert panel. Haematologica. 99, 811-820 (2014).
  2. Lucarelli, G., Isgro, A., Sodani, P., Gaziev, J. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia and sickle cell anemia. Cold Spring Harb Perspect Med. 2, a011825 (2012).
  3. Andreani, M., Testi, M., Lucarelli, G. Mixed chimerism in haemoglobinopathies: from risk of graft rejection to immune tolerance. Tissue Antigens. 83, 137-146 (2014).
  4. Andreani, M., et al. Persistence of mixed chimerism in patients transplanted for the treatment of thalassemia. Blood. 87, 3494-3499 (1996).
  5. Andreani, M., et al. Long-term survival of ex-thalassemic patients with persistent mixed chimerism after bone marrow transplantation. Bone Marrow Transplant. 25, 401-404 (2000).
  6. Kumar, A. J., et al. Pilot study of prophylactic ex vivo costimulated donor leukocyte infusion after reduced-intensity conditioned allogeneic stem cell transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 19, 1094-1101 (2013).
  7. Lawler, S. D., Harris, H., Millar, J., Barrett, A., Powles, R. L. Cytogenetic follow-up studies of recipients of T-cell depleted allogeneic bone marrow. Br J Haematol. 65, 143-150 (1987).
  8. McCann, S. R., Crampe, M., Molloy, K., Lawler, M. Hemopoietic chimerism following stem cell transplantation. Transfus Apher Sci. 32, 55-61 (2005).
  9. Dewald, G., et al. A multicenter investigation with interphase fluorescence in situ hybridization using X- and Y-chromosome probes. Am J Med Genet. 76, 318-326 (1998).
  10. Andreani, M., et al. Quantitatively different red cell/nucleated cell chimerism in patients with long-term, persistent hematopoietic mixed chimerism after bone marrow transplantation for thalassemia major or sickle cell disease. Haematologica. 96, 128-133 (2011).
  11. Andreani, M., Testi, M., Battarra, M., Lucarelli, G. Split chimerism between nucleated and red blood cells after bone marrow transplantation for haemoglobinopathies. Chimerism. 2, 21-22 (2011).
  12. Kropshofer, G., Sopper, S., Steurer, M., Schwinger, W., Crazzolara, R. Successful management of mixed chimerism after bone marrow transplant in beta-thalassemia major. Am J Hematol. 91, E357-E358 (2016).
  13. Kimpton, C. P., et al. Automated DNA profiling employing multiplex amplification of short tandem repeat loci. PCR Methods Appl. 3, 13-22 (1993).
  14. Centis, F., et al. The importance of erythroid expansion in determining the extent of apoptosis in erythroid precursors in patients with beta-thalassemia major. Blood. 96, 3624-3629 (2000).
  15. Miccio, A., et al. In vivo selection of genetically modified erythroblastic progenitors leads to long-term correction of beta-thalassemia. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 105, 10547-10552 (2008).
check_url/kr/56002?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Crazzolara, R., Kropshofer, G., Steurer, M., Sopper, S., Schwinger, W. Detection of Residual Donor Erythroid Progenitor Cells after Hematopoietic Stem Cell Transplantation for Patients with Hemoglobinopathies. J. Vis. Exp. (127), e56002, doi:10.3791/56002 (2017).

View Video