Summary

Generation av en kronisk obstruktiv lungsjukdom modell hos möss av upprepade ozonexponering

Published: August 25, 2017
doi:

Summary

Denna studie beskriver lyckade genereringen av en ny djurmodell för kronisk obstruktiv lungsjukdom (kol) genom att upprepade gånger utsätta möss till höga koncentrationer av ozon.

Abstract

Kronisk obstruktiv lungsjukdom (kol) kännetecknas av ihållande luftflöde begränsning och lung parenkymal förstörelse. Den har en mycket hög förekomst i åldrande befolkningar. De nuvarande konventionella behandlingar för kol fokus främst på symptom-ändra droger; utvecklingen av nya terapier behövs således snarast. Kvalificerad djurmodeller av kol kan bidra till att karakterisera de bakomliggande mekanismerna och kan användas för nya drogkontroll. Nuvarande kol-modeller, såsom lipopolysackarid (LPS) eller de svin bukspottskörteln elastase (PPE)-inducerad emfysem modell, generera kol-liknande lesioner i lungor och luftvägar men inte annars liknar patogenesen av mänskliga kol. En cigarettrök (CS)-inducerad modell är fortfarande en av de mest populära eftersom den simulerar inte bara kol-liknande lesioner i andningsorganen, men den är också baserad på en av de huvudsakliga farliga material som orsakar kol hos människor. Men begränsa de tidsödande och arbetsintensiva aspekterna av CS-inducerad modell dramatiskt dess användning i nya drogkontroll. I denna studie genererade vi framgångsrikt en ny kol-modell genom att exponera möss till höga halter av ozon. Denna modell visat följande: 1) minskad forcerad exspiratorisk volym 25, 50 och 75/tvingade vitalkapacitet (FEV25/FVC, FEV50/FVC och FEV75/FVC), vilket indikerar en försämring av lungfunktionen; (2) utvidgade lung alveolerna, med lung parenkymal förstörelse; (3) minskad trötthet tid och avstånd; och 4) ökade inflammation. Sammantaget visar dessa data att ozon exponering (OE) modellen är en tillförlitlig djurmodell som liknar människor eftersom ozon överexponering är en av de etiologiska faktorerna av kol. Dessutom tog det bara 6-8 veckor, baserat på våra tidigare arbete, att skapa en OE modell, det kräver 3-12 månader att inducera cigarettrök modellen, vilket indikerar att den OE-modellen kan vara ett bra val för kol forskning.

Introduction

Det har uppskattats att kol, emfysem och kronisk bronkit, kan vara den tredje vanligaste dödsorsaken, i världen i 20201,2. Den potentiella incidensen av kol i en population över 40 år uppskattas till 12,7% hos män och 8,3% hos kvinnor inom de nästa 40 år3. Det finns för närvarande ingen läkemedel att vända den progressiv försämringen av KOL patienter4. Pålitlig djurmodeller av kol inte bara kräva imitation av den patologiska processen för sjukdom men också kräva en kort generation. Nuvarande kol-modeller, inklusive LPS eller en PPE-inducerad modell, kan inducera emfysem-liknande symtom5,6. En engångsdos eller en vecka lång utmaning av LPS eller PPE att möss eller råttor resultat i markerade neutrofili i bronkoalveolär lavage vätska (BALF), ökar pro-inflammatoriska mediatorer (exempelvis TNF-α och IL-1β) i BALF eller serum, producerar lung parenkymal förstörelse-förstorade luftvolymer och begränsar luftflödet5,6,7,8,9,10. Dock LPS eller personlig skyddsutrustning är inte orsakerna till människors kol och således efterlikna inte den patologiska process11. En CS-inducerad modell produceras en ihållande obstruktiviteten, lung parenkymal förstörelse och minskad funktionell träning kapacitet. En traditionell CS protokoll kräver dock minst 3 månader för att generera en kol modell12,13,14,15. Det är därför viktigt att generera en ny, mer effektiv djurmodell som uppfyller dessa två krav.

Nyligen, förutom rökning, luftföroreningar och yrkesmässig exponering har blivit vanligare orsaker till kol16,17,18. Ozon, som en av de stora föroreningarna (dock inte den största delen av luftföroreningar), kan direkt reagerar med luftvägarna och skada lungvävnaden av både barn och vuxna19,20,21 ,22,23,24,25. Ozon, liksom andra stimulatorer inklusive LPS, personlig skyddsutrustning och CS, är inblandade i en allvarlig av biokemiska vägar av pulmonell oxidativ stress och DNA-skada och är kopplade till initiering och främjande av kol26,27. En annan faktor är att symptomen på vissa KOL-patienter försämras efter utsätts för ozon, vilket indikerar att ozon kan störa lung funktion18,28,29. Därför genererat vi en ny kol-modell genom att upprepade gånger utsätta möss till höga koncentrationer av ozon i 7 veckor; Detta resulterade i luftflöde defekter och parenkymal lungskador liknar dem i tidigare utredningar30,31,32. Vi utökade protokollet OE att honmöss i denna studie och återges framgångsrikt den emfysem hos hanmöss i våra tidigare studier30,31,32. Eftersom kol dödlighet har minskat hos män men ökar hos kvinnor i många länder33, behövs en kol modell hos kvinnor att studera mekanismerna och att utveckla terapeutiska metoder för kvinnliga KOL-patienter. Tillämpligheten av OE modellen för alla könen lånar ytterligare stöd till dess användning som en kol-modell.

Protocol

Obs: The OE modell har genereras och används i tidigare rapporterade forskning 30 , 31 , 32. Alla djurförsök godkändes av den institutionella djur vård och användning kommittén (IACUC) av Shanghai Jiaotong University. 1. möss hus patogenfria, 7-9 vecka-gamla BALB/c honmöss i enskilda ventilerade burar i ett djur anläggning under kontrollerad temperatur (20 ° C) och luftfuktig…

Representative Results

Exempel på 3D µCT bilder av varje grupp visas i figur 1en. Ozon-exponerade mössen hade en betydligt större total lungvolym (figur 1en och b) och LAA % (figur 1c) än gjorde luft-exponerade kontroll möss. Den lungvolym och LAA % återstod förhöjda efter sex veckor av ozon exponering31,32</sup…

Discussion

I denna studie presenterar vi en pålitlig metod för att generera en ny kol-modell. Jämfört med andra modeller (dvs LPS eller PPE modeller), recapitulates denna OE modell den patologiska processen av KOL-patienter. Eftersom tobaksrök är den huvudsakliga farliga material som orsakar kol i mänskliga patienter40, är CS modellen den mest populära kol modell41,42. CS modellen kräver dock en 3 – till 12-månaders R & D peri…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill uttrycka tacksamhet till Mr Boyin Qin (Shanghai Public Health Clinical Center) för det tekniska biståndet med µCT utvärdering i detta protokoll.

Materials

BALB/c mice Slac Laboratory Animal,Shanghai, China N/A 7-to-9-week-old female BALB/c mice were used in this study.
Individual ventilated cages Suhang, Shanghai, China Model Number: MU64S7 The cages were used for housing mice in the animal facility.
Sealing perspex-box Suhang, Shanghai, China N/A The box was used  to contain the ozone generator. Mice were exposed to ozone within the box.
Electric generator Sander Ozoniser, Uetze-Eltze, Germany Model 500  The device was used for generating ozone.
Ozone probe ATi Technologies, Ashton-U-Lyne, Greater Manchester, UK Ozone 300 The device was used for monitoring and controlling the generation of ozone.
Pelltobarbitalum natricum Sigma, St. Louis, MO, USA P3761 Mice were anesthetized by intraperitoneal injection of pelltobarbitalum natricum.
Micro-Computed Tomography GE Healthcare, London, ON, Canada RS0800639-0075 This device was used for acquiring images of the lung.
Micro-view 2.01 ABA software GE Healthcare, London, ON, Canada Micro-view 2.01  This device was used for reconstruct the lung and analyze volume, LAA of the lung.
Treadmill machine  Duanshi, Hangzhou, Zhejiang, China DSPT-208 This machine was usd for fatigue test.
Body plethysmograph eSpira™ Forced Manoeuvres System, EMMS, Edinburgh, UK Forced Manoeuvres System This device was used to test spirometry pulmonary function.
Ventilator eSpira™ Forced Manoeuvres System, EMMS, Edinburgh, UK Forced Manoeuvres System This device was used to test spirometry pulmonary function.
Slide spinner centrifuge Denville Scientific, Holliston, MA, USA C1183  It was used to spin BALF cells onto slides.
Wright Staining Hanhong, Shanghai, China RE04000054  It was used to staining macrophages, neutrophils in the suspended BALF.
Hemocytometer Hausser Scientific, Horsham, PA, USA 4000 It was used to count cells.
IL-1β Abcam, Cambridge, MA, USA ab100704 They were used to test the respective factors in serum.
IL-10 Abcam, Cambridge, MA, USA ab46103 They were used to test the respective factors in serum.
TNF-α Abcam, Cambridge, MA, USA ab100747 They were used to test the respective factors in serum.
Paraformaldehyde  Sigma, St. Louis, MO, USA P6148 The lung was inflated by 4% paraformaldehyde.
Paraffin Hualing, Shanghai, China 56# It was used to embed the lung.
Rotary Microtome Leica, Wetzlar,  Hesse, Germany RM2255 It was used for sectioning the lung.
Hgaematoxylin and Eosin (H&E) staining solution Solarbio, Beijing, China G1120 H&E staining was done for morphometric analysis.
Upright bright field microscope Olympus, Center Valley, PA, USA CX41 It was used to image the H&E staining slides.
Adobe Photoshop 12 Adobe, San Jose, CA, USA Adobe Photoshop 12 It was used to count the number of alveoli on the H&E stained images.
GraphPad prism 5 Graphpad Software Inc., San Diego, CA GraphPad prism 5 It was used for data analysis and production of figures.

References

  1. Lozano, R., et al. Global and regional mortality from 235 causes of death for 20 age groups in 1990 and 2010: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet. 380, 2095-2128 (2012).
  2. Chapman, K. R., et al. Epidemiology and costs of chronic obstructive pulmonary disease. Eur Respir J. 27, 188-207 (2006).
  3. Afonso, A. S., Verhamme, K. M., Sturkenboom, M. C., Brusselle, G. G. COPD in the general population: prevalence, incidence and survival. Respir Med. 105, 1872-1884 (2011).
  4. Rabe, K. F., et al. Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of chronic obstructive pulmonary disease: GOLD executive summary. Am J Respir Crit Care Med. 176, 532-555 (2007).
  5. Ogata-Suetsugu, S., et al. Amphiregulin suppresses epithelial cell apoptosis in lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. Biochem Biophys Res Communi. 484, 422-428 (2017).
  6. Oliveira, M. V., et al. Characterization of a Mouse Model of Emphysema Induced by Multiple Instillations of Low-Dose Elastase. Front Physiol. 7, 457 (2016).
  7. Vernooy, J. H., Dentener, M. A., van Suylen, R. J., Buurman, W. A., Wouters, E. F. Long-term intratracheal lipopolysaccharide exposure in mice results in chronic lung inflammation and persistent pathology. Am J Respir Cell Mol Biol. 26, 152-159 (2002).
  8. Birrell, M. A., et al. Role of matrix metalloproteinases in the inflammatory response in human airway cell-based assays and in rodent models of airway disease. J Pharm Exp Ther. 318, 741-750 (2006).
  9. Gamze, K., et al. Effect of bosentan on the production of proinflammatory cytokines in a rat model of emphysema. Exp Mol Med. 39, 614-620 (2007).
  10. Vanoirbeek, J. A., et al. Noninvasive and invasive pulmonary function in mouse models of obstructive and restrictive respiratory diseases. Am J Respir Cell Mol Biol. 42, 96-104 (2010).
  11. Wright, J. L., Cosio, M., Churg, A. Animal models of chronic obstructive pulmonary disease. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 295, 1-15 (2008).
  12. Huh, J. W., et al. Bone marrow cells repair cigarette smoke-induced emphysema in rats. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 301, 255-266 (2011).
  13. Schweitzer, K. S., et al. Adipose stem cell treatment in mice attenuates lung and systemic injury induced by cigarette smoking. Am J Respir Crit Care Med. 183, 215-225 (2011).
  14. Guan, X. J., et al. Mesenchymal stem cells protect cigarette smoke-damaged lung and pulmonary function partly via VEGF-VEGF receptors. J Cell Biochem. 114, 323-335 (2013).
  15. Gu, W., et al. Mesenchymal stem cells alleviate airway inflammation and emphysema in COPD through down-regulation of cyclooxygenase-2 via p38 and ERK MAPK pathways. Sci Rep. 5, 8733 (2015).
  16. Cordasco, E. M., VanOrdstrand, H. S. Air pollution and COPD. Postgrad Med. 62, 124-127 (1977).
  17. Berend, N. Contribution of air pollution to COPD and small airway dysfunction. Respirology. 21, 237-244 (2016).
  18. DeVries, R., Kriebel, D., Sama, S. Outdoor Air Pollution and COPD-Related Emergency Department Visits, Hospital Admissions, and Mortality: A Meta-Analysis. COPD. 14 (1), 113-121 (2016).
  19. Penha, P. D., Amaral, L., Werthamer, S. Ozone air pollutants and lung damage. IMS Ind Med Surg. 41, 17-20 (1972).
  20. Stern, B. R., et al. Air pollution and childhood respiratory health: exposure to sulfate and ozone in 10 Canadian rural communities. Environ Res. 66, 125-142 (1994).
  21. Tager, I. B., et al. Chronic exposure to ambient ozone and lung function in young adults. Epidemiology. 16, 751-759 (2005).
  22. Romieu, I., Castro-Giner, F., Kunzli, N., Sunyer, J. Air pollution, oxidative stress and dietary supplementation: a review. Eur Respir J. 31, 179-197 (2008).
  23. Hemming, J. M., et al. Environmental Pollutant Ozone Causes Damage to Lung Surfactant Protein B (SP-B). 생화학. 54, 5185-5197 (2015).
  24. Chu, H., et al. Comparison of lung damage in mice exposed to black carbon particles and ozone-oxidized black carbon particles. Sci Total Environ. 573, 303-312 (2016).
  25. Jin, M., et al. MAP4K4 deficiency in CD4(+) T cells aggravates lung damage induced by ozone-oxidized black carbon particles. Environ Toxicol Pharmacol. 46, 246-254 (2016).
  26. Brusselle, G. G., Joos, G. F., Bracke, K. R. New insights into the immunology of chronic obstructive pulmonary disease. Lancet. 378, 1015-1026 (2011).
  27. Valavanidis, A., Vlachogianni, T., Fiotakis, K., Loridas, S. Pulmonary oxidative stress, inflammation and cancer: respirable particulate matter, fibrous dusts and ozone as major causes of lung carcinogenesis through reactive oxygen species mechanisms. Int J Environ Res Public Health. 10, 3886-3907 (2013).
  28. Medina-Ramon, M., Zanobetti, A., Schwartz, J. The effect of ozone and PM10 on hospital admissions for pneumonia and chronic obstructive pulmonary disease: a national multicity study. Am J Epidemiol. 163, 579-588 (2006).
  29. Lee, I. M., Tsai, S. S., Chang, C. C., Ho, C. K., Yang, C. Y. Air pollution and hospital admissions for chronic obstructive pulmonary disease in a tropical city: Kaohsiung, Taiwan. Inha Toxicol. 19, 393-398 (2007).
  30. Triantaphyllopoulos, K., et al. A model of chronic inflammation and pulmonary emphysema after multiple ozone exposures in mice. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 300, 691-700 (2011).
  31. Li, F., et al. Effects of N-acetylcysteine in ozone-induced chronic obstructive pulmonary disease model. PLoS ONE. 8, e80782 (2013).
  32. Li, F., et al. Hydrogen Sulfide Prevents and Partially Reverses Ozone-Induced Features of Lung Inflammation and Emphysema in Mice. Am J Respir Cell Mol Biol. 55, 72-81 (2016).
  33. Rycroft, C. E., Heyes, A., Lanza, L., Becker, K. Epidemiology of chronic obstructive pulmonary disease: a literature review. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 7, 457-494 (2012).
  34. Washko, G. R., et al. Airway wall attenuation: a biomarker of airway disease in subjects with COPD. J Appl Physiol. 107, 185-191 (2009).
  35. Yamashiro, T., et al. Quantitative assessment of bronchial wall attenuation with thin-section CT: An indicator of airflow limitation in chronic obstructive pulmonary disease. AJR Am J Roentgenol. 195, 363-369 (2010).
  36. Tang, X., et al. Arctigenin efficiently enhanced sedentary mice treadmill endurance. PLoS ONE. 6, e24224 (2011).
  37. Schmidt, G. A., et al. Official Executive Summary of an American Thoracic Society/American College of Chest Physicians Clinical Practice Guideline: Liberation from Mechanical Ventilation in Critically Ill Adults. Am J Respir Crit Care Med. 195, 115-119 (2017).
  38. ATS Committee on Proficiency Standards for Clinical Pulmonary Function Laboratories. ATS statement: guidelines for the six-minute walk test. Am J Respir Crit Care Med. 166, 111-117 (2002).
  39. Shigemura, N., et al. Autologous transplantation of adipose tissue-derived stromal cells ameliorates pulmonary emphysema. Am J Transplant. 6, 2592-2600 (2006).
  40. Bchir, S., et al. Concomitant elevations of MMP-9, NGAL, proMMP-9/NGAL and neutrophil elastase in serum of smokers with chronic obstructive pulmonary disease. J Cell Mol Med. , 1-12 (2016).
  41. Fricker, M., Deane, A., Hansbro, P. M. Animal models of chronic obstructive pulmonary disease. Expert Opin Drug Discov. 9, 629-645 (2014).
  42. Perez-Rial, S., Giron-Martinez, A., Peces-Barba, G. Animal models of chronic obstructive pulmonary disease. Arch Bronconeumol. 51, 121-127 (2015).
  43. Antunes, M. A., et al. Effects of different mesenchymal stromal cell sources and delivery routes in experimental emphysema. Respir Res. 15, 118 (2014).
  44. Celli, B. R., MacNee, W., Force, A. E. T. Standards for the diagnosis and treatment of patients with COPD: a summary of the ATS/ERS position paper. Eur Respir J. 23, 932-946 (2004).
  45. U.S. Preventive Services Task Force. Screening for chronic obstructive pulmonary disease using spirometry: U.S. Preventive Services Task Force recommendation statement. Ann Intern Med. 148, 529-534 (2008).
  46. Ward, R. E., et al. Design considerations of CareWindows, a Windows 3.0-based graphical front end to a Medical Information Management System using a pass-through-requester architecture. Proc Annu Symp Comput Appl Med Care. , 564-568 (1991).
check_url/kr/56095?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sun, Z., Li, F., Zhou, X., Wang, W. Generation of a Chronic Obstructive Pulmonary Disease Model in Mice by Repeated Ozone Exposure. J. Vis. Exp. (126), e56095, doi:10.3791/56095 (2017).

View Video