Summary

Estereológicos estimación de número de la neurona dopaminérgica en el Nigra del Substantia de ratón usando el fraccionador óptico y equipo de microscopía estándar

Published: September 01, 2017
doi:

Summary

Este trabajo presenta un protocolo paso a paso para la estimación imparcial estereológicos del número de células neuronales dopaminérgicas en la sustancia negra de ratón utilizando equipo de microscopía estándar (es decir, un microscopio de luz, una tabla de objeto motorizado (x, y, z plano) y software de dominio público para el análisis de imagen digital.

Abstract

En la investigación de la enfermedad de Parkinson preclínica, el análisis del tracto nigroestriatal, incluyendo la cuantificación de la pérdida de neuronas dopaminérgicas en el nigra del substantia, es esencial. Para estimar el número de neuronas dopaminérgicas total, estereología imparcial usando el método de fraccionamiento óptico es considerado el estándar de oro. Porque la teoría detrás del método óptico fraccionador es complejo y porque estereología es difícil de lograr sin equipos especializados, existen varios sistemas de estereología completa disponible en el mercado que incluyen el software necesario, puramente para celular con razones. Desde adquirir una configuración de estereología especializados no siempre es factible, por muchas razones, este informe describe un método para la estimación Estereológicas de células neuronales dopaminérgicas cuenta con equipo de microscopia estándar, incluyendo un microscopio de luz, un motorizado de tabla de objeto (x, y, z plano) con software tratamiento de imágenes y una computadora para el análisis. Se da una explicación paso a paso sobre cómo realizar Estereológicas cuantificación mediante el método de fraccionamiento óptico, y se proporcionan archivos preprogramados para el cálculo del estimado del recuento. Para evaluar la exactitud de este método, se realizó una comparación con datos obtenidos de un aparato de estereología comercialmente disponibles. Un número similar de células fueron encontrado usando este protocolo y el dispositivo de la estereología, demostrando así la precisión de este protocolo de estereología imparcial.

Introduction

La cuantificación del número de célula neuronal es fundamental en la investigación de la enfermedad de Parkinson preclínica para determinar el nivel de la neurodegeneración en la substantia nigra (SN)1,2. La estimación imparcial Estereológicas del número de células en una región de interés se considera el estándar de oro3,4,5.

Antes del advenimiento de estereología imparcial, se evaluó el número de neuronas en secciones mediante la manipulación de células contadas perfiles para corregir para las probabilidades variables que las neuronas entran en vista en una sección. Uno de los métodos más utilizados fue la corrección de un recuento cuantificados descritos por Abercrombie6. Este método tratado de tomar en cuenta que las células se pueden cuantificar más de una vez si fragmentos de la misma célula se encuentran en las secciones delgadas adyacentes. Por lo tanto, Abercrombie y otros autores generaron ecuaciones que requieren supuestos sobre la forma, tamaño y orientación de las células contadas7,8. Sin embargo, estos supuestos fueron generalmente no se dio cuenta y por lo tanto condujo a errores sistemáticos y divergencia del número real de la célula (es decir, sesgo). Por otra parte, no podría reducirse el sesgo de muestreo adicional3.

Para la estimación Estereológicas de números de celular mediante el fraccionador óptico, se aplican principios matemáticos para estimar directamente el número de células en un volumen definido, 3 dimensiones. La ventaja de este método es que no involucra supuestos sobre la forma, tamaño y orientación de las células se contaron. Así, el número estimado de la célula está más cercano de los verdaderos valores y acercarse a medida que el tamaño de muestra aumenta (es decir, imparciales)3. Porque muchas reglas deben seguirse cuando se usa la estereología para mantener el método imparcial, se han desarrollado sistemas de estereología comercial lista para usar (para revisión, ver Schmitz y Hof, 2005,4). Sistemas especializados de estereología implementan métodos estereológicos basados en diseño con sondas de priori definidos y planes de muestreo para evaluaciones estereológicos que conducen a la independencia de la forma, tamaño, distribución espacial y orientación de la células para ser analizado4,9. Sin embargo, los sistemas de estereología comercialmente disponibles son caros; Esto puede limitar la aplicación en una nueva investigación.

El objetivo de este estudio fue desarrollar una técnica útil para la estimación Estereológicas basado en el diseño de recuentos de células dopaminérgicas en el ratón SN, empleando el método de fraccionamiento óptica y uso de equipo de microscopia estándar (es decir, luz microscopio, microscopio estándar de software y un motor x, y, z etapa). Para ello, se presenta una guía paso a paso sobre cómo procesar el tejido de cerebro de ratón y cómo estimar el número de células del SN mediante estereología imparcial basada en diseño. Además, se proporcionan plantillas para el cálculo de los números de celular Estimado y los coeficientes de error (CE).

El método descrito aquí no se limita al análisis del SN, pero puede ser adaptado para su uso en otras regiones anatómicamente definidas del cerebro de ratón o rata. Por ejemplo, estereología imparcial se ha utilizado para estimar el número de células neuronales en el hipocampo10 y el locus coeruleus11. Además, tipos de células distintos de neuronas, como12 y microglia astrocitos13, pueden ser evaluados también. Por lo tanto, este método puede ser útil para los científicos que pretenden implementar estereología imparcial en sus investigaciones, pero no están dispuestos a gastar mucho dinero para comprar un sistema de estereología.

Protocol

se siguieron todas las guías internacionales, nacionales o institucionales aplicables para el cuidado y uso de animales. El protocolo fue aprobado por las autoridades locales en el Regierung von Unterfranken, Würzburg, Alemania. 1. procesamiento de tejido e inmunohistoquímica Euthanize ratones con CO 2 o cualquier otro método aprobaron. Transcardially de ratones machos de C56Bl/6N de 12 semanas de edad Perfuse seis con 10 mL de 0.1 M tampón fosfato salino …

Representative Results

El método presentado, el número estimado de TH + las neuronas dopaminérgicas en la derecha SN oscilado entre células 7.363 y 7.987 y en la izquierda SN, entre las células 7.446 y 7.904. Así, la media de las neuronas dopaminérgicas (± SEM) fue 7.647 ± 83 células para la derecha SN y 7.675 ± 66 para la izquierda SN. La CE calculado para cada animal fue inferior a 0.08 (gama: 0.079 0.073) (figura 7). Para determinar la comparabilidad de este método c…

Discussion

Estereología se inicia con el proceso de tejido. La serie corte de tejido SN debe realizarse cuidadosamente para evitar la pérdida de las secciones durante el análisis estereológicos. Además, un paso esencial es marcar un hemisferio para distinguir la derecha de la izquierda SN realización de estereología. Colocar un pequeño agujero en la parte superior del tronco encefálico genera los mejores resultados en el estudio presentado. Por otra parte, desde el trabajo con las exigencias de método fraccionador óptico…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecemos a Keali Röhm, Louisa Frieß y Heike Menzel por su asistencia técnica especializada; a Helga Brünner para el cuidado de los animales; y Chistopher S. Ward para la generación y distribución del disector óptico grid plugin para el software ImageJ.

Materials

Paxinos mouse atlas The Mouse Brain George Paxinos Keith B.J.FranklinCopyright @2001 by Academic Press CD Rom designet & created by Paul Halasz
brain matrix slicer mouse Zivic Instruments  BSMAS 001-1
paraformaldehyde Merck 1040051000
sucrose /D(+) Saccharose  Roth 4621.1
isopentane Roth 3927.1
glycerol Merck 1040931000
Ethanol Sigma Aldrich 32205-1L
Name Company Catalog Number Comments
phosphate buffered saline ingredients:
sodium chloride Sigma Aldrich 31434-1KG-R
potassium dihydrogen phosphate Merck 1048731000
di-sodium hydrogen phosphate dihydrate Merck 1065801000
potassium chloride Merck 1049360500
normal goat serum Dako X0907
bovine serum albumin Sigma  A4503-100G
Triton X-100 Sigma Aldrich X100-100ml detergent
3,3-Diaminobenzidine-tetrahydrochlorid/DAB tablets 10mg pH 7.0 Kem En Tec 4170
H2O2/ Hydrogen peroxide 30% Merck 1072090250
avidin/biotin reagent Thermo Scientific 32050 Standard Ultra Sensitive ABC Staining Kit, 1:100
rabbit anti mouse tyrosine hydroxylase antibody abcam Ab112 1:1000
biotinylated goat-anti-rabbit IgG H+L vector laboratories BA-1000 1:100
StereoInvestigator version 11.07 MBF
BX53 microscope Olympus
Visiview Visitron Systems GmbH 3.3.0.2
Axiophot2 Zeiss
ImageJ software NIH Version 4.7
Tissue-TEK OCT Sakura 4583
dry ice
grid overlay plugin Wayne Rasband https://imagej.nih.gov/ij/plugins/graphic-overlay.html
cell counter plugin Kurt de Vos https://imagej.nih.gov/ij/plugins/cell-counter.html). 
optical disector macro Christopher Ward
C57Bl/6N male mice Charles River, Germany
SuperFrost Plus coated object slides Langenbrinck, Germany
25G needle Microlance 3 BD  300400
REGLO Analog Infusion pump Ismatec ISM 829
StereoInvestigator system StereoInvestigator version 11.07
BX53 microscope BX53 microscope
self-assorted stereology Visiview
Axiophot2 Axiophot2

References

  1. Ip, C. W., et al. AAV1/2-induced overexpression of A53T-alpha-synuclein in the substantia nigra results in degeneration of the nigrostriatal system with Lewy-like pathology and motor impairment: a new mouse model for Parkinson’s disease. Acta Neuropathol Commun. 5 (1), 11 (2017).
  2. Ip, C. W., Beck, S. K., Volkmann, J. Lymphocytes reduce nigrostriatal deficits in the 6-hydroxydopamine mouse model of Parkinson’s disease. J Neural Transm (Vienna). 122 (12), 1633-1643 (2015).
  3. West, M. J., Slomianka, L., Gundersen, H. J. Unbiased stereological estimation of the total number of neurons in thesubdivisions of the rat hippocampus using the optical fractionator. Anat Rec. 231 (4), 482-497 (1991).
  4. Schmitz, C., Hof, P. R. Design-based stereology in neuroscience. 신경과학. 130 (4), 813-831 (2005).
  5. Tieu, K. A guide to neurotoxic animal models of Parkinson’s disease. Cold Spring Harb Perspect Med. 1 (1), e009316 (2011).
  6. Abercrombie, M. Estimation of nuclear population from microtome sections. Anat Rec. 94, 239-247 (1946).
  7. Rose, R. D., Rohrlich, D. Counting sectioned cells via mathematical reconstruction. J Comp Neurol. 263 (3), 365-386 (1987).
  8. Weibel, E. R., Gomez, D. M. A principle for counting tissue structures on random sections. J Appl Physiol. 17, 343-348 (1962).
  9. West, M. J. Design-based stereological methods for counting neurons. Prog Brain Res. 135, 43-51 (2002).
  10. Keuker, J. I., Vollmann-Honsdorf, G. K., Fuchs, E. How to use the optical fractionator: an example based on the estimation of neurons in the hippocampal CA1 and CA3 regions of tree shrews. Brain Res Brain Res Protoc. 7 (3), 211-221 (2001).
  11. Mouton, P. R., et al. The effects of age and lipopolysaccharide (LPS)-mediated peripheral inflammation on numbers of central catecholaminergic neurons. Neurobiol Aging. 33 (2), e427-e436 (2012).
  12. Barreto, G. E., Sun, X., Xu, L., Giffard, R. G. Astrocyte proliferation following stroke in the mouse depends on distance from the infarct. PLoS One. 6 (11), e27881 (2011).
  13. Robinson, S., et al. Microstructural and microglial changes after repetitive mild traumatic brain injury in mice. J Neurosci Res. 95 (4), 1025-1035 (2017).
  14. Paxinos, G., Franklin, K. . The mouse brain in stereotaxic coordinates. , (2001).
  15. . Grid_Overlay.java Available from: https://imagej.nih.gov/ij/plugins/graphic-overlay.html (2010)
  16. . cell_counter.jar Available from: https://imagej.nih.gov/ij/plugins/cell-counter.html (2010)
  17. Baquet, Z. C., Williams, D., Brody, J., Smeyne, R. J. A comparison of model-based (2D) and design-based (3D) stereological methods for estimating cell number in the substantia nigra pars compacta (SNpc) of the C57BL/6J mouse. 신경과학. 161 (4), 1082-1090 (2009).
  18. Fu, Y., et al. A cytoarchitectonic and chemoarchitectonic analysis of the dopamine cell groups in the substantia nigra, ventral tegmental area, and retrorubral field in the mouse. Brain Struct Funct. 217 (2), 591-612 (2012).
  19. German, D. C., Manaye, K. F. Midbrain dopaminergic neurons (nuclei A8, A9, and A10): three-dimensional reconstruction in the rat. J Comp Neurol. 331 (3), 297-309 (1993).
  20. Smeyne, R. J., et al. Assessment of the Effects of MPTP and Paraquat on Dopaminergic Neurons and Microglia in the Substantia Nigra Pars Compacta of C57BL/6 Mice. PLoS One. 11 (10), e0164094 (2016).

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Cite This Article
Ip, C. W., Cheong, D., Volkmann, J. Stereological Estimation of Dopaminergic Neuron Number in the Mouse Substantia Nigra Using the Optical Fractionator and Standard Microscopy Equipment. J. Vis. Exp. (127), e56103, doi:10.3791/56103 (2017).

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