Summary

Preparação de Dissociated rato Culturas Neuron Cortical

Published: December 19, 2007
doi:

Summary

Este vídeo mostra um procedimento para a geração de culturas de neurônios a partir de embrião tarde e córtex do rato pós-natal precoce. Essas culturas podem ser usados ​​para imunocitoquímica, bioquímica, eletrofisiologia, cálcio e sódio de imagem e fornecer uma plataforma para estudar o desenvolvimento neuronal de animais transgênicos que carregam uma mutação genética pós-natal letal.

Abstract

Este vídeo irá guiá-lo através do processo de geração de culturas cortical neuronal de embriões tarde e cérebro de camundongos pós-natal precoce. Essas culturas podem ser usados ​​para uma variedade de aplicações, incluindo imunocitoquímica, bioquímica, eletrofisiologia, imageamento de cálcio e sódio, proteína e / ou RNA isolamento. Estas culturas também fornecer uma plataforma para estudar o desenvolvimento neuronal de animais transgênicos que carregam uma mutação genética tarde embrionárias ou pós-natal letal. O procedimento é relativamente simples, requer alguma experiência na técnica de cultura de tecidos e não deve demorar mais do que 2-3 horas, se você estiver devidamente preparado. Uma separação cuidadosa da casca cortical do trato fibras tálamo-cortical vai reduzir o número de gravidezes indesejadas células não-neuronais. Para aumentar a produção de células neuronais triturar os pedaços do tecido cortical delicadamente após a etapa de incubação enzimática. Isto é imperativo, uma vez que evita lesões desnecessárias para as células e prematura morte celular neuronal. Uma vez que estas culturas são mantidos na ausência de células alimentadoras glia, eles também oferecem uma vantagem adicional de culturas em crescimento enriquecido em neurônios.

Protocol

Preparações antes do dia da cultura: Preparar a solução de dissecação estéril (DS). Prepare NBM/B27 (Mediom Neurobasal com suplementos B27). Autoclave DDH 2 O e esterilizar coversilps vidro, se necessário. Brasão pratos de cultura de tecidos ou lamínulas de vidro com poli-D-lisina. Poli-D-lisina Revestimento: Prepare um dia antes de cultivo em condições estéreis. Alíquota de desconge…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
5-Fluoro-2′-deoxyuridine   Sigma F0503  
Sodium Chloride   Sigma S9625  
Vibraslicer   Campden Instruments Ltd.    
Potassim Chloride   Sigma P4504  
Sodium Phosphate Dibasic   Sigma S0876  
Potassium Phosphate Monobasic   Sigma P5379  
Hepes   Sigma H3375  
D (+)-Glucose   Sigma G8270  
Sucrose   Sigma S0389  
Poly-D-Lysine   Sigma P7280  
B27 Supplement   Invitrogen (Gibco) 17504-044  
Neurobasal Media (NBM)   Invirtogen (Gibco) 21103-049  
2-Amino-5-phosphonopentanoic acid   Sigma A5282  
Bovine Albumin   Sigma A7030  
Trypsin Inhibitor   Sigma T9253  
Sodium Hydroxide, 1N solution   Fisher SS266-1  
L-Cysteine   Sigma C7755  
Bacto Agar   Difco 0140-01  
Papain   Worthington LS 03126  
Sterile 0.2 µm Syringe Filter   Fisher DDA02025S0  
Glass Coverslips, No1, Ø12mm   Bellco Glass Inc. 1943-00012  
Minimum Essential Media (MEM)   Invitrogen (Gibco) 11090-081 with Earle’s salts without L-glutamine, needed for growing non-neuronal cultures
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen (Gibco) 15070-063 for non-neuronal culture
Fetal Bovine Serum   Invitrogen (Gibco) 16140-071 needed for non-neuronal cultures
Nunclon “Triple Flask” Tissue Culture Bottle   Fisher 12-565-25 Use for non-neuronal cultures. these flasks are very convenient when producing “conditioned Neurobasal Media/B27”, but any other tissue culture flasks or dishes can be used instead.
Glass bottom “Imaging dishes”   MatTek Corp. P35G-1.5-10-C Glass bottomed, Ø35mm culture dishes ideal for Calcium or Sodium Imaging when using an inverted imaging setup. But expensive!
check_url/kr/562?article_type=t

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Cite This Article
Hilgenberg, L. G. W., Smith, M. A. Preparation of Dissociated Mouse Cortical Neuron Cultures. J. Vis. Exp. (10), e562, doi:10.3791/562 (2007).

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