Summary

कुशल पीढ़ी और फीडर का संपादन-CRISPR-Cas9 प्रणाली का उपयोग मानव अग्नाशय कोशिकाओं से मुक्त IPSCs

Published: November 08, 2017
doi:

Summary

इस प्रोटोकॉल विस्तार से पदचिह्न-मुक्त प्रेरित pluripotent स्टेम सेल (iPSCs) में मानव अग्नाशय कोशिकाओं से फीडर मुक्त शर्तों, CRISPR/Cas9 ribonucleoproteins और संशोधित के लक्षण वर्णन का उपयोग कर संपादन द्वारा पीछा की पीढ़ी का वर्णन एकल सेल क्लोन ।

Abstract

भ्रूण और प्रेरित pluripotent स्टेम कोशिकाएं स्वयं को नवीनीकृत और शरीर के कई प्रकार के कोशिका में अंतर कर सकते हैं । pluripotent कोशिकाओं को इस प्रकार reअपक्षयी चिकित्सा में अनुसंधान के लिए प्रतिष्ठित हैं और नेत्र रोगों, मधुमेह, हृदय रोगों, और अन्य विकारों के लिए नैदानिक परीक्षणों में वर्तमान में कर रहे हैं । CRISPR/कैस प्रणाली सहित जीनोम संपादन प्रौद्योगिकियों में हाल ही में अग्रिमों के साथ युग्मित विशेष कोशिका प्रकार में अंतर करने की क्षमता विभिंन अनुप्रयोगों के लिए iPSC के जीनोम सिलाई के लिए अतिरिक्त अवसर प्रदान की है रोग मॉडलिंग सहित, जीन थेरेपी, और भेदभाव के रास्ते पक्षपात, कुछ नाम है । उपलब्ध संपादन प्रौद्योगिकियों के अलावा, CRISPR/Cas9 से स्ट्रेप्टोकोकस pyogenes साइट-युकेरियोटिक जीनोम के विशेष संपादन के लिए पसंद के एक उपकरण के रूप में उभरा है । CRISPRs आसानी से सुलभ हैं, सस्ती, और अत्यधिक कुशल इंजीनियरिंग लक्षित संपादन में । प्रणाली एक Cas9 nuclease और एक गाइड अनुक्रम की आवश्यकता है (20-मेर) जीनोमिक लक्ष्य के लिए विशिष्ट abutting एक 3-न्यूक्लियोटाइड “NGG” protospacer-संनिकट-आकृति (पाम) Cas9 को लक्षित करने के लिए वांछित जीनोमिक लोकस के साथ, एक सार्वभौमिक Cas9 बाध्यकारी अनुरेखक आरएनए के साथ ( एक साथ एक गाइड आरएनए या sgRNA कहा जाता है) । यहाँ हम फीडर की कुशल पीढ़ी के लिए एक कदम दर कदम प्रोटोकॉल-स्वतंत्र और पदचिह्न-मुक्त iPSC और Cas9 ribonucleoprotein (RNP) परिसरों का उपयोग iPSC के जीनोम संपादन के लिए तरीके का वर्णन प्रस्तुत करते हैं । जीनोम संपादन प्रोटोकॉल प्रभावी है और आसानी से Cas9 प्रोटीन के साथ एक से अधिक लक्ष्य के लिए पूर्व जटिल sgRNAs द्वारा और एक साथ कोशिकाओं में पहुंचाने के लिए मल्टीप्लेक्स किया जा सकता है । अंत में, हम वांछित संपादन के साथ iPSCs की पहचान और लक्षण वर्णन के लिए एक सरलीकृत दृष्टिकोण का वर्णन । एक साथ लिया, रेखांकित रणनीतियों के लिए कई गुना अनुप्रयोगों के लिए iPSC की पीढ़ी और संपादन को कारगर बनाने की उंमीद कर रहे हैं ।

Introduction

reprogramming कारकों के व्यक्त द्वारा pluripotent राज्य के लिए मानव दैहिक कोशिकाओं के reprogramming रोग मॉडलिंग, अपक्षयी चिकित्सा, और नशीली दवाओं के विकास में आवेदन के साथ स्टेम सेल अनुसंधान में क्रांति ला दिया है । कई गैर वायरल reprogramming तरीकों reprogramming कारकों और सृजन iPSCs के वितरण के लिए उपलब्ध हैं, लेकिन प्रक्रिया गहन श्रम है और नहीं बहुत कुशल1। वायरल तरीकों, हालांकि कुशल, वायरस एकीकरण और tumorigenicity2,3,4की समस्याओं के साथ जुड़े रहे हैं । इस पांडुलिपि में, हम reprogramming कारकों को वितरित करने और पदचिह्न-मुक्त iPSC लाइनों की स्थापना के लिए cytoplasmic सेंडाइ वायरस के उपयोग की रिपोर्ट है कि उनके जीनोम5में किसी भी वायरल वेक्टर दृश्यों के एकीकरण की कमी है । सेंडाइ वायरस एक आरएनए वायरस है कि सेल कोशिका के बाहर पतला है ~ संक्रमण के बाद 10 मार्ग और बहुतायत में reprogramming कारकों का उत्पादन, तेजी से और कुशल reprogramming6,7के लिए अग्रणी । स्थापित iPSCs तो आसानी से फीडर मुक्त माध्यम से संक्रमण हो सकता है फीडर कोशिकाओं8के रूप में माउस भ्रूण fibroblasts (MEFs) के उपयोग से बचने के लिए ।

इस प्रकाशन में, सेंडाइ वायरस मध्यस्थता reprogramming के अलावा, हम भी संपादन iPSCs, जो अनुसंधान के लिए वांछित आनुवंशिक संशोधनों के साथ असीमित मानव कोशिकाओं की आपूर्ति करने की क्षमता है के लिए एक बेहतर प्रोटोकॉल का वर्णन । हम iPSCs के संशोधन के लिए CRISPR/Cas9 प्रौद्योगिकी का इस्तेमाल किया है, जो अब दस्तक सहित आवेदनों की एक विस्तृत श्रृंखला के लिए इस्तेमाल किया जा रहा है ins और नॉकआउट, बड़े पैमाने पर जीनोमिक विलोपन, जीन डिस्कवरी के लिए परित पुस्तकालय स्क्रीनिंग, आनुवंशिक इंजीनियरिंग की कई मॉडल जीवों, और जीन थेरेपी9,10,11. इस तकनीक में स्ट्रेप्टोकोकस pyogenesके परिसरों का गठन शामिल है-व्युत्पंन Cas9 nuclease और 20-मेर गाइड RNAs है कि आधार के माध्यम से लक्ष्य मांयता प्राप्त-जीनोमिक लक्ष्य अनुक्रम से सटे 3 ‘ न्यूक्लियोटाइड protospacer आसंन के साथ बांधना आकृति (पाम) अनुक्रम । Cas9 nuclease एक डबल असहाय तोड़ लाती है ~ पाम साइट है, जो बाद में गैर द्वारा मुख्य रूप से मरंमत मुताबिक़ अंत में शामिल होने से 3 न्यूक्लियोटाइड (NHEJ) मार्ग सम्मिलन या खुले पढ़ने के फ्रेम में हटाने के लिए अग्रणी, और इस तरह कार्यात्मक 12जीन के नॉकआउट ।

हमारे सुधार प्रोटोकॉल मानव अग्नाशय कोशिकाओं की संस्कृति के लिए विवरण, mitotically निष्क्रिय माउस भ्रूण fibroblasts (MEFs) पर उनके reprogramming के लिए reprogramming के उच्च दक्षता प्राप्त करने के लिए, फीडर मुक्त संस्कृति के बाद अनुकूलन शामिल Matrigel पर, स्थापित iPSCs के लक्षण वर्णन, CRISPR निर्देशित आरएनए डिजाइन और तैयारी, RNP परिसरों के रूप में iPSCs में प्रसव, एकल कोशिका संपादित iPSCs की क्लोनिंग लाइनों उत्पन्न करने के लिए छंटाई, आसान स्क्रीनिंग और संपादन की पहचान, और के लक्षण वर्णन एकल सेल क्लोन । जीनोमिक हटाए गए Cas9 प्रोटीन और दो CRISPR sgRNA RNP परिसरों की शुरूआत से इस अध्ययन में कुशलतापूर्वक उत्पंन किया गया डबल असहाय टूटता (DSBs) और हस्तक्षेप खंड को हटाने के लिए प्रेरित । इस विधि को खुले पढ़ने के फ्रेम में विलोपन पैदा करने के लिए दो गाइड के उपयोग पर कैपिटल, NHEJ की उच्च दक्षता क्लोन की जरूरत है कि कम संख्या के लिए अग्रणी है, और स्वचालित केशिका द्वारा क्लोन के आसान प्रारंभिक स्क्रीनिंग ट्रो इकाई, अंश विश्लेषक । मानव स्टेम सेल आधारित रोग मॉडल उत्पंन करने के लिए इन प्रभावी जीनोम संपादन तरीकों को जल्द ही किसी भी स्टेम सेल प्रयोगशाला में एक मानक और नियमित दृष्टिकोण बन जाएगा । अंत में, सटीक जीनोम संपादन यह स्टेम सेल रोग मॉडलिंग से परे जाना संभव कर देगा और संभावित उत्प्रेरित सेल आधारित चिकित्सा मदद कर सकता है ।

Protocol

1. reprogramming प्रोटोकॉल पीढ़ी मानव iPSC प्राथमिक मानव अग्नाशय कोशिकाओं से कोट एक 6-अच्छी तरह से थाली के साथ १.५ मिलीग्राम/एमएल ठंडा कोलेजन और यह ३७ पर जेल के लिए अनुमति दें & #176; ग के लिए 1 ज. प?…

Representative Results

इस प्रकाशन में, हम मानव अग्नाशय कोशिकाओं एकीकरण या पदचिह्न से मुक्त सेंडाइ वायरस वैक्टर का उपयोग करने से iPSC की पीढ़ी के लिए एक सरल लेकिन कुशल प्रोटोकॉल का पालन किया है । चित्र 1a इस…

Discussion

iPSCs के लिए मानव दैहिक कोशिकाओं की reprogramming बुनियादी जीव विज्ञान अनुसंधान, व्यक्तिगत चिकित्सा, रोग मॉडलिंग, दवा विकास और अपक्षयी चिकित्सा के क्षेत्र के लिए एक प्रमुख बढ़ावा प्रदान की है16। मानव iPSC पी?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लैब में काम डॉ अंजलि नंदी को postdoctoral फैलोशिप अनुदान, और मैरीलैंड स्टेम सेल रिसर्च फंड से बीटी (TEDCO) के लिए खोजपूर्ण अनुदान द्वारा समर्थित था ।

Materials

Sendai viral vectors – CytoTune-iPS 2.0 Kit Invitrogen A16517 Thaw on ice; S No: 1
Trypsin EDTA Gibco Life Tech 25300-054 0.05%, 100 ml; S No: 2
Rock inhibitor (Y-27632) Milipore SCM075 Use 10 μM; S No: 3
DMEM/F-12 medium Invitrogen 11330-032 S No: 4
Serum replacement (KSR) Gibco 10828028 S No: 5
DMEM Invitrogen 11960069 1X; S No: 6
Fetal bovine serum Thermo Scientific SH30071.03 Aliquot; S No: 7
L-glutamine (Glutamax, 100X), liquid Thermo Scientific 35050061 1/100; S No: 8
Non-Essential Amino Acids Gibco 11140-050 1/100; S No: 9
2-Mercaptoethanol Gibco 21985023 55 mM, 1/1,000; S No: 10
Hausser Hemacytometers Hausser Scientific 02-671-54 S No: 11
 0.1% Gelatin Solution STEMCELL Technologies 7903 Incubate at 37º C for 1 hour; S No: 12
SSEA-4 antibody Santacruz sc-21704 1/100; S No: 13
TRA-1-81 antibody Cell Signaling 4745S 1/200; S No: 14
 OCT4 antibody Santa Cruz sc-5279 1/1,000; S No: 15
Collagen I, Rat Tail Life Technologies A10483-01 Keep cold; S No: 16
Alexa Fluor fluorescent 488/ 568 (secondary antibodies) Invitrogen A21202/A10042 1/2,000; S No: 17
DPBS Hyclone SH30028LS 1X; S No: 18
100-mm tissue culture dish Falcon 353003 S No: 20
96-well tissue culture plate Falcon 353078 S No: 21
6-well tissue culture plate Falcon 353046 S No: 22
Dissecting scope  Nikon SMZ745 S No: 23
Picking hood NuAire NU-301 S No: 24
15 ml Centrifuge Tube Greiner Bio-One 188271 S No: 25
50 ml Centrifuge Tube Greiner Bio-One 227261 S No: 26
Sodium pyruvate Invitrogen 11360 S No: 28
β-mercaptoethanol Sigma M7522 S No: 29
Prigrow III medium ABM TM003 S No: 31
Countess™ Cell Counter Invitrogen C10227 S No: 32
Faxitron X-ray system Faxitron CellRad S No: 33
Accutase Innovative cell Technologies AT-104 S No: 34
Collagenase Life Technologies 17104019 1mg/ml stock; S No: 35
Dispase STEMCELL Technologies 7923 S No: 36
hESC qualified matrigel BD Biosciences 354277 To dilute, use cold DMEM/F-12; S No: 37
bFGF R & D 233-FB Stock 10 ug/ml; S No: 38
Paraformaldehyde EMS 15710 4% stock in PBS; S No: 39
TRA-1-60 Santa Cruz sc-21705 1/100; S No: 40
NANOG ReproCELL RCAB0004P-F 1/100; S No: 41
Tween 20 Sigma P9416-100ML S No: 42
Alkaline Phosphatase kit Stemgent 00-0055 S No: 43
Cas9 protein PNA Bio CP01-50 Thaw and aliquot; S No: 44
Goat or donkey serum Sigma D9663/G9023 S No: 45
Triton X-100 Sigma X100-100ML S No: 46
DAPI Thermo Scientific D1306 S No: 47
Tris Sigma 9285-100ML S No: 48
NaCL Sigma S7653-250G S No: 49
EDTA Sigma BP2482-500 S No: 50
T4 DNA ligase NEB M0202T S No: 51
Mega Shortscript T7 kit Thermo Scientific AM1354 S No: 52
Mega Clear kit Thermo Scientific AM1908 S No: 53
SMC4 BD Biosciences 354357 S No: 54
Fibronectin STEMCELL Technologies 7159 S No: 55
CloneJET cloning kit Thermo Scientific K1232 S No: 56
Fragment analyzerTM Advanced Analytical S No: 57
mTeSR1 medium kit STEMCELL Technologies 5850 Warm to room temperature; S No: 58
Freezing medium mFreSR™ STEMCELL Technologies 5855 S No: 59
Freezing medium CryoStor® STEMCELL Technologies 7930 S No: 60
MEFs Globalstem GSC-6301G S No: 61
L-glutamine Invitrogen 25030081 S No: 62
Human pancreatic cells ABM T0159 S No: 63
STEMdiff™ Neural Induction Medium Stemcell Technologies 5835 S No: 64
RPMI Thermofisher 11875-093 S No: 65
2% B27-insulin Thermofisher A1895601 S No: 66
CHIR99021 Stemcell Technologies 72052 S No: 67
IWP4 Stemcell Technologies 72552 S No: 68
2% B27 Thermofisher 17504044 S No: 69
MCDB 131 Life Technologies 10372019 S No: 70
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S8761-100ML S No: 71
Glucose Sigma-Aldrich G8270-100G S No: 72
BSA Proliant 68700 S No: 73
GDF8 Pepro-Tech 120-00 S No: 74
TUJ1 antibody EMD Milipore AB9354 S No: 75
NKX2-5 antibody Santa Cruz Sc-14033 S No: 76
SOX17 antibody R & D systems AF1924 S No: 77
Propidium iodide Thermo Scientific P3566 S No: 78
Amaxa 4D-nucleofector™ Lonza AAF-1002 S No: 79
FACSAria II (cell sorter) BD biosciences SORP UV S No: 80

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Cite This Article
Nandal, A., Mallon, B., Telugu, B. P. Efficient Generation and Editing of Feeder-free IPSCs from Human Pancreatic Cells Using the CRISPR-Cas9 System. J. Vis. Exp. (129), e56260, doi:10.3791/56260 (2017).

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