Summary

Andre harmonisk generasjon signaler i kanin Sclera som et verktøy for evaluering av terapeutiske vev Cross-linking (TXL) for nærsynthet

Published: January 06, 2018
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver teknikker for å vurdere kjemiske cross-linking av kanin sclera bruker andre harmonisk generasjon bildebehandling og differensial skanning calorimetry.

Abstract

Metoder for å styrke vev ved å innføre kjemisk obligasjoner (ikke-enzymatisk cross-linking) i strukturelle proteiner (fibrillar collagens) for terapi inkluderer fotokjemisk cross-linking og vev cross-linking (TXL) metoder. Slike metoder for å indusere mekanisk vev endringer er blir ansatt å hornhinnen i hornhinnen tynning (mekanisk svekket) lidelser som keratokonus samt sclera i progressiv myopi, tynt og svekkelsen av bakre sclera oppstår og trolig bidrar til aksial forlengelse. De primære målet proteinene for slike vev styrke er fibrillar collagens som utgjør majoriteten av tørrvekt proteiner i hornhinnen og sclera. Tilfeldig, er fibrillar collagens den viktigste kilden til andre harmonisk generasjon signaler i vev ekstracellulære plass. Derfor kan modifikasjoner av kollagen proteiner, slik som indusert gjennom cross-linking terapier, potensielt oppdages og quantitated ved hjelp av andre harmonisk generasjon mikroskopi (SHGM). Overvåking SHGM signaler ved hjelp av en laser skanning mikroskopi systemet kombinert med excitation infrarødt lys er en spennende moderne bildebehandling metode som nyter utstrakt bruk i biomedisinsk vitenskapene. Derfor studien ble gjennomført for å vurdere bruken av SHGM mikroskopi som et middel til å måle indusert cross-linking effekter i ex vivo kanin sclera, etter injeksjon av en kjemisk cross-linking agent i sub-Tenon plass (sT), en injeksjon tilnærming som er vanlig praksis for forårsaker okulær anestesi under ophthalmologic kliniske prosedyrer. Kjemisk cross-linking agent, er natrium hydroxymethylglycinate (SMG), en klasse av kosmetiske konserveringsmidler kjent som formaldehyd slippe agenter (FARs). Innbukking endringer etter reaksjon med SMG resulterte i en økning i SHG signaler og korrelert med endringer i termisk rødsprit temperatur, en standardmetode for å vurdere indusert vev cross-linking effekter.

Introduction

Progressiv myopi er postulert skal behandles gjennom ikke-enzymatisk Innbukking cross-linking (fotokjemisk og/eller kjemisk), som er fornuftig gitt at blokkerer kollagen enzymatisk cross-linking kan øke eksperimentelle skjemaet deprivasjon (FD)-indusert nærsynthet1. Elsheikh og Phillips2 nylig diskutert gjennomførbarhet og potensialet for å bruke standard UV-A bestråling (UVA)-riboflavin mediert fotokjemisk cross-linking (også kjent som Dresden protocol), forkortet som (riboflavin CXL) for bakre Innbukking stabilisering å stanse aksial forlengelse i myopi. Denne fotokjemisk metoden har blitt brukt til behandling av destabilisering av fremre verden overflaten (dvs., svulmende hornhinnen) sett i keratoconus og stolpe-LASIK keratectasia. Men hindret anvendelsen av denne CXL protokollen for sclera av spørsmål knyttet til vanskeligheter med tilgang til bakre sclera med en ultrafiolett (UV) lys kilde, samt behovet for å endre en mye større vev areal. Som blir sagt, CXL tilnærmingen er brukt til å stoppe aksial forlengelse i visuelt skjemaet fratatt kanin (av tarsorrhaphy), selv om flere områder av bakre sclera kreves flere separate bestråling soner i at studien3. Derimot kan injeksjon av en stabiliserende kjemiske middel (dvs., cross-linking agent) via sT plassen representere en enklere måte endre bakre sclera, unngå behovet for å innføre en UV lyskilde. Denne injeksjon teknikken er kjent som en nyttig måte å indusere okulær anestesi under ophthalmologic prosedyrer som cataract kirurgi4,5,6. Wollensak7 har beskrevet tidligere bruk av sT injeksjon med glyceraldehyde (en kjemisk cross-linking agent lignende i konsept til formaldehyd slippe agenter (FARs) beskrevet i denne studien) til stive kanin sclera og genipin vist seg å begrense aksial lengde i FD marsvin8,9. Disse etterforskere har vist en klar fordel av benytter en løselig kjemiske middel over fotokjemisk CXL teknikken. Dermed Innbukking cross-linking bruker en injiserbare kjemiske middel av noen type, inkludert FARs (dvs., TXL)10, kan gi en mulig behandlingsmetode å stoppe utviklingen av Innbukking forlengelse sett i myopi.

I protokollene som presenteres her, bruker vi en kjemisk cross-linking løsning av natrium hydroxymethylglycinate (SMG), levert via sT injeksjon til sclera cadaveric kanin øyne. Vi har implementert lignende protokollene tidligere for aktuell kjemiske cross-linking i hornhinnen. Spesielt i de tidligere rapportert studiene, kan konsentrasjon avhengige cross-linking effekter oppnås ved hjelp av SMG, med en effekt rekkevidde som spenner over som oppnåelig med fotokjemisk CXL som termisk rødsprit analyse11 .

Her beskriver vi for å vurdere cross-linking effekten av SMG levert via sT injeksjoner til Innbukking vev, termisk rødsprit differensial skanning Calorimetry (DSC) og andre harmonisk generasjon mikroskopi (SHGM).

Ved hjelp av differensial skanning calorimetry (DSC), også kjent som termisk analyse, er en termisk rødsprit overgang målt, som for Innbukking vev er hovedsakelig guidet av egenskapene til de fibrillar collagens, siden de utgjør flertallet bulk protein. Denne metoden evaluerer stabiliteten av kollagen molekylær struktur og krysskoblet obligasjoner som stabiliserer kollagen fibrils, den fremste tertiære protein-strukturen. Under oppvarming i DSC, er en kritisk overgang temperatur oppnådd som resulterer i denaturering av kollagen molekylet, noe som resulterer i uncoiling av trippel helix, en prosess som det er kjent som gelatin. Dette termiske rødsprit forstyrrer hydrogenbindinger langs kollagen molekylet og kan bli forskjøvet til høyere temperaturer gjennom indusert cross-linking metoder12,13. Denne metoden er brukt i mange tiår, spesielt i industrien for biologisk materiale og prosesser som inkluderer skinn-making. Men denne metoden krever utvinning av sclera vev og derfor kan bare være nyttig som en ex vivo teknikk.

Andre-harmoniske generasjon mikroskopi (SHGM) er basert på den ikke-lineære optiske egenskapene av bestemt materiale, med ikke-centrosymmetric molekylær miljøer. Slike materialene intens lys, for eksempel lys produsert av lasere, genererer SHG signaler, der det innfallende lyset er doblet i frekvens. Biologisk materiale som kan opprette SHG signaler er kollagen, piskehale som henger og muskel myosin. For eksempel vil kollagen spent med et infrarødt lys av 860 nm bølgelengde avgi en SHG signalet i det synlige området med 430 nm bølgelengde. Andre harmonisk generasjon (SHG) signal imaging er en lovende metode for å vurdere terapeutiske kollagen cross-linking. Det har vært kjent i over 30 år at kollagen fibrils vev avgir SHG signaler14. Men kan bare nylig Høyoppløslige bilder hentes15 ulike vev, inkludert sene16, hud, brusk17, blodkar18, og kollagen gels19.

Basert på denne kunnskapen, evaluerer denne studien SHG signal endringene indusert i sklera gjennom SMG kjemisk indusert cross-linking av kollagen. Resultatene tyder på at SMG endring av sclera øker SHG signalene produsert fra vev kollagen fiber bunter (høyere orden kvartær strukturen består av kollagen fibrils) og produserer også en strukturell morfologiske endring i kollagen nettverk, gjenspeiles i fiber bunt “rette.”

Protocol

Alle prosedyrer som ble utført med cadaveric kaninøyne innen intakt outbred kanin hoder. Alle Institutional og nasjonale retningslinjer og bruk av forsøksdyr ble fulgt. 1. forberedelse av løsninger SMG forberedelse til TXL: Forberede 1 mL av 0,2 M konsentrasjon av natrium bikarbonat løsning (NaHCO3) løsning med 0.0165 g NaHCO3 pulver oppløst i 1 mL destillert vann. Oppløse 0.1016 mg av pulverisert natrium hydroxymethylglycinate (SMG) i 1 mL desti…

Representative Results

Termisk rødsprit temperatur (Tm) som en analysen metode for å vurdere TXL cross-linking effekt: Totalt 16 par kaninøyne ble brukt i disse eksperimentene TXL fremgangsmåten. Som en første del av denne studien, ble lokalisering av cross-linking effekten indusert av en enkelt injeksjon SMG cross-linking agent via sT plass i cadaveric kanin hodet evaluert. Denne typen eksperiment har relevans til klinisk behandling av pasienter, siden injeksjoner i flere steder kan være…

Discussion

Utført eksperimenter har vist bevis som støtter bruk av SHG signal mikroskopi som en metode for evaluering av kollagen cross-linking effekter i sclera, øke fremtidige muligheten til å bruke denne teknikken som avlytting verktøyet for cross-linking behandlinger som mål kollagen proteiner. Av notatet er et instrument allerede i klinisk bruk som potensielt kan fange SHG signalet. Selv om dette instrumentet ble hovedsakelig utformet for imaging huden menneskelige dermis, er det brukt med hell bilde hornhinnen og sclera…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Tongalp Tezel, MD, for konsultasjon om sT injeksjon; Theresa Swayne, PhD, for konsultasjon om SHG mikroskopi; og Jimmy Duong fra Design og biostatistikk ressurs og funksjonen Biostatistical kjernen av Irving Institute ved Columbia University Medical Center.

Støttes delvis ved forskning for å hindre blindhet og nasjonale institutter for helse tilskudd NCRR UL1RR024156, NEI P30 EY019007, NCI P30 CA013696 og NEI R01EY020495 (DCP). Columbia University eier relaterte immaterielle: amerikanske utstedte patenter no: 8,466,203 og ingen: 9,125,856. International patentanmeldt: PCT/US2015/020276.

Bildene ble samlet i Confocal og spesialisert mikroskopi delt ressurs av Herbert Irving Comprehensive Cancer Center ved Columbia University, støttet av NIH gi #P30 CA013696 (National Cancer Institute). AC confocal mikroskop ble kjøpt med NIH gi #S10 RR025686.

Materials

MILLI-Q SYNTHESIS A10 120V EMD Millipore, Massachusetts, USA Double distilled, deionized water. – protocol step 1.1.1
Sodium hydroxymethylglycinate  Tyger Chemicals Scientific, Inc. Ewing, NJ, USA Crosslinking reagent – protocol step 1.1.2
Injection needle with luer-lock syringe BD Eclipse, NJ, USA Syringe for sub tenon injection. – protocol step 2.1
Rabbit head La Granja poultry Outbred Rabbit head separated and delivered within 1 hour postmortem. – protocol step 2.2
Tono-pen  Reichter Technologies Depew, NY IOP measurements – protocol step 2.4
DSC 6000 Autosampler Perkin-Elmer Waltham, MA, USA Thermal denaturation analyzer – protocol step 7.4
Pyris software  Perkin-Elmer, Waltham, MA, USA Ver 11.0  protocol step 7.5
CFI75 Apochromat LWD 25X/1.10 W MP Nikon Instruments, Melville, NY, USA A water immersionn objective with high IR transmittance with a working distance of 2.0 mm – protocol step 8.1.1.
GenTeal  Alcon, Fort Worth, TX  B000URVDQ8 Water-based gel used as objective immersion medium instead of water to prevent evaporation – 8.1.1
Chameleon Vision II  Coherent, Santa Clara,CA, USA Ti:Sapphire pulsed laser with a 140 fs pulse width at 80 MHz and a tunable range from 680 nm to 1080 nm. – protocol step 8.1.11
AttoFluor cell chamber Thermo Fisher Scientific Inc A7816 Fixation of the cover slip – protocol step 8.1.3
25-mm round coverslips, #1.5 Neuvitro Corporation, Vancouver, WA, USA GG-25-1.5 protocol step 8.1.3
Eclipse Ti-E Nikon Instruments, Melville, NY, USA protocol step 8.1.4.
Non-descanned (NDD) GaAsP detector Nikon Instruments, Melville, NY, USA Equipped with a 400-450 nm band pass filter – protocol step 8.1.7
A1R-MP laser scanning system Nikon Instruments, Melville, NY, USA Compatible with infrared (IR) multi-photon excitation. – protocol step 8.1.8
NIS Elements software Nikon Instruments, Melville, NY, USA Ver 4.3 refered to as "software" in the text – protocol step 8.1.9
Fiji/ImageJ National Institute of Health  protocol step 9.1.2
NeuronJ Eric Meijering, Erasmus University Medical Center, Rotterdam, The Netherlands https://imagescience.org/meijering/software/neuronj/, for protocol step 9.2.2
Microsoft Excel  Microsoft Corporation, Redmond, WA, USA Ver 14 protocol step 9.2.8

References

  1. McBrien, N. A., Norton, T. T. Prevention of collagen crosslinking increases form-deprivation myopia in tree shrew. Exp Eye Res. 59 (4), 475-486 (1994).
  2. Elsheikh, A., Phillips, J. R. Is scleral cross-linking a feasible treatment for myopia control?. Ophthalmic Physiol Opt. 33 (3), 385-389 (2013).
  3. Dotan, A., et al. Scleral cross-linking using riboflavin and ultraviolet-a radiation for prevention of progressive myopia in a rabbit model. Exp Eye Res. 127, 190-195 (2014).
  4. Canavan, K. S., Dark, A., Garrioch, M. A. Sub-Tenon’s administration of local anaesthetic: a review of the technique. Br J Anaesth. 90 (6), 787-793 (2003).
  5. Guise, P. Sub-Tenon’s anesthesia: an update. Local Reg Anesth. 5, 35-46 (2012).
  6. Ahn, J. S., et al. A sub-Tenon’s capsule injection of lidocaine induces extraocular muscle akinesia and mydriasis in dogs. Vet J. 196 (1), 103-108 (2013).
  7. Wollensak, G., Redl, B. Gel electrophoretic analysis of corneal collagen after photodynamic cross-linking treatment. Cornea. 27 (3), 353-356 (2008).
  8. Liu, T. X., Wang, Z. Collagen crosslinking of porcine sclera using genipin. Acta Ophthalmol. 91 (4), e253-e257 (2013).
  9. Wang, M., Corpuz, C. C. Effects of scleral cross-linking using genipin on the process of form-deprivation myopia in the guinea pig: a randomized controlled experimental study. BMC Ophthalmol. 15, 89 (2015).
  10. Babar, N., et al. Cosmetic preservatives as therapeutic corneal and scleral tissue cross-linking agents. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56 (2), 1274-1282 (2015).
  11. Kim, S. Y., et al. Evaluating the Toxicity/Fixation Balance for Corneal Cross-Linking With Sodium Hydroxymethylglycinate (SMG) and Riboflavin-UVA (CXL) in an Ex Vivo Rabbit Model Using Confocal Laser Scanning Fluorescence Microscopy. Cornea. 35 (4), 550-556 (2016).
  12. da Cruz, L. G., Moraes, G. D. A., Nogueira, R. F., Morandim-Giannetti, A. D. A., Bersanetti, P. A. DSC characterization of rabbit corneas treated with Stryphnodendron adstringens (Mart.) Coville extracts. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. , (2017).
  13. Bersanetti, P. A., et al. Characterization of Rabbit Corneas Subjected to Stromal Stiffening by the Acai Extract (Euterpe oleracea). Curr Eye Res. 42 (4), 528-533 (2017).
  14. Freund, I., Deutsch, M. Second-harmonic microscopy of biological tissue. Opt Lett. 11 (2), 94 (1986).
  15. Campagnola, P. J., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy for visualizing biomolecular arrays in cells, tissues and organisms. Nat Biotechnol. 21 (11), 1356-1360 (2003).
  16. Williams, R. M., Zipfel, W. R., Webb, W. W. Interpreting second-harmonic generation images of collagen I fibrils. Biophys J. 88 (2), 1377-1386 (2005).
  17. Mansfield, J., et al. The elastin network: its relationship with collagen and cells in articular cartilage as visualized by multiphoton microscopy. J Anat. 215 (6), 682-691 (2009).
  18. Tsamis, A., Krawiec, J. T., Vorp, D. A. Elastin and collagen fibre microstructure of the human aorta in ageing and disease: a review. J R Soc Interface. 10 (83), 20121004 (2013).
  19. Raub, C. B., et al. Noninvasive assessment of collagen gel microstructure and mechanics using multiphoton microscopy. Biophys J. 92 (6), 2212-2222 (2007).
  20. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nat Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  21. Meijering, E., et al. Design and validation of a tool for neurite tracing and analysis in fluorescence microscopy images. Cytometry A. 58 (2), 167-176 (2004).
  22. Zyablitskaya, M., et al. Evaluation of Therapeutic Tissue Crosslinking (TXL) for Myopia Using Second Harmonic Generation Signal Microscopy in Rabbit Sclera. Invest Ophthalmol Vis Sci. 58 (1), 21-29 (2017).
  23. Steven, P., Muller, M., Koop, N., Rose, C., Huttmann, G. Comparison of Cornea Module and DermaInspect for noninvasive imaging of ocular surface pathologies. J Biomed Opt. 14 (6), 064040 (2009).
  24. Han, M., Giese, G., Bille, J. F. Second harmonic generation imaging of collagen fibrils in cornea and sclera. Optics Express. 13 (15), 5791-5797 (2005).
  25. Wang, B. G., Konig, K., Halbhuber, K. J. Two-photon microscopy of deep intravital tissues and its merits in clinical research. J Microsc. 238 (1), 1-20 (2010).
  26. Teng, S. W., et al. Multiphoton autofluorescence and second-harmonic generation imaging of the ex vivo porcine eye. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47 (3), 1216-1224 (2006).
  27. Rao, R. A., Mehta, M. R., Leithem, S., Toussaint, K. C. Quantitative analysis of forward and backward second-harmonic images of collagen fibers using Fourier transform second-harmonic-generation microscopy. Opt Lett. 34 (24), 3779-3781 (2009).
  28. Morishige, N., Petroll, W. M., Nishida, T., Kenney, M. C., Jester, J. V. Noninvasive corneal stromal collagen imaging using two-photon-generated second-harmonic signals. J Cataract Refract Surg. 32 (11), 1784-1791 (2006).
  29. Aptel, F., et al. Multimodal nonlinear imaging of the human cornea. Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (5), 2459-2465 (2010).
  30. Winkler, M., et al. Nonlinear optical macroscopic assessment of 3-D corneal collagen organization and axial biomechanics. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (12), 8818-8827 (2011).
  31. Morishige, N., Takagi, Y., Chikama, T., Takahara, A., Nishida, T. Three-dimensional analysis of collagen lamellae in the anterior stroma of the human cornea visualized by second harmonic generation imaging microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (2), 911-915 (2011).
  32. Gore, D. M., et al. Two-photon fluorescence microscopy of corneal riboflavin absorption. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (4), 2476-2481 (2014).
  33. Park, C. Y., Lee, J. K., Chuck, R. S. Second Harmonic Generation Imaging Analysis of Collagen Arrangement in Human Cornea. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56 (9), 5622-5629 (2015).
  34. Quantock, A. J., et al. From nano to macro: studying the hierarchical structure of the corneal extracellular matrix. Exp Eye Res. 133, 81-99 (2015).
  35. Morishige, N., et al. Quantitative analysis of collagen lamellae in the normal and keratoconic human cornea by second harmonic generation imaging microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55 (12), 8377-8385 (2014).
  36. Morishige, N., et al. Second-harmonic imaging microscopy of normal human and keratoconus cornea. Invest Ophthalmol Vis Sci. 48 (3), 1087-1094 (2007).
  37. Steven, P., Hovakimyan, M., Guthoff, R. F., Huttmann, G., Stachs, O. Imaging corneal crosslinking by autofluorescence 2-photon microscopy, second harmonic generation, and fluorescence lifetime measurements. J Cataract Refract Surg. 36 (12), 2150-2159 (2010).
  38. Bueno, J. M., et al. Multiphoton microscopy of ex vivo corneas after collagen cross-linking. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (8), 5325-5331 (2011).
  39. McQuaid, R., Li, J. J., Cummings, A., Mrochen, M., Vohnsen, B. Second-Harmonic Reflection Imaging of Normal and Accelerated Corneal Crosslinking Using Porcine Corneas and the Role of Intraocular Pressure. Cornea. 33 (2), 125-130 (2014).
  40. Laggner, M., et al. Correlation Between Multimodal Microscopy, Tissue Morphology, and Enzymatic Resistance in Riboflavin-UVA Cross-Linked Human Corneas. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56 (6), 3584-3592 (2015).
  41. Chai, D., et al. Quantitative assessment of UVA-riboflavin corneal cross-linking using nonlinear optical microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (7), 4231-4238 (2011).
  42. Scarcelli, G., et al. Brillouin microscopy of collagen crosslinking: noncontact depth-dependent analysis of corneal elastic modulus. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (2), 1418-1425 (2013).
  43. Shao, P., Besner, S., Zhang, J., Scarcelli, G., Yun, S. H. Etalon filters for Brillouin microscopy of highly scattering tissues. Opt Express. 24 (19), 22232-22238 (2016).
  44. Kumar, C. M., McNeela, B. J. Ultrasonic localization of anaesthetic fluid using sub-Tenon’s cannulae of three different lengths. Eye (Lond). 17 (9), 1003-1007 (2003).
  45. Winder, S., Walker, S. B., Atta, H. R. Ultrasonic localization of anesthetic fluid in sub-Tenon’s, peribulbar, and retrobulbar techniques. J Cataract Refract Surg. 25 (1), 56-59 (1999).
  46. Ripart, J., Eledjam, J. J. [Locoregional anesthesia for ophthalmic surgery: unique episcleral injection (sub-tenon) in the internal canthus]. Ann Fr Anesth Reanim. 17 (4), Fi72-Fi74 (1998).
  47. Meek, K. M., Hayes, S. Corneal cross-linking–a review. Ophthalmic Physiol Opt. 33 (2), 78-93 (2013).
  48. Wollensak, G., Spoerl, E. Collagen crosslinking of human and porcine sclera. J Cataract Refract Surg. 30 (3), 689-695 (2004).
  49. Paik, D. C., Wen, Q., Airiani, S., Braunstein, R. E., Trokel, S. L. Aliphatic beta-nitro alcohols for non-enzymatic collagen cross-linking of scleral tissue. Exp Eye Res. 87 (3), 279-285 (2008).
check_url/kr/56385?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zyablitskaya, M., Munteanu, E. L., Nagasaki, T., Paik, D. C. Second Harmonic Generation Signals in Rabbit Sclera As a Tool for Evaluation of Therapeutic Tissue Cross-linking (TXL) for Myopia. J. Vis. Exp. (131), e56385, doi:10.3791/56385 (2018).

View Video