Summary

Une méthode Simple et efficace pour établir les NK et les lymphocytes T lignes provenant de Patients avec une Infection chronique Active Virus Epstein - Barr

Published: March 30, 2018
doi:

Summary

Une méthode simple permettant d’obtenir des clones NK et des lymphocytes T chez des patients CAEBV a été développée avec rendement élevé, une petite quantité de sang périphérique et une faible dose d’il-2.

Abstract

Un certain nombre de méthodes ont été décrit pour établir des lignées de cellules NK/T de patients atteints de syndrome lymphoprolifératif ou de lymphome. Ces méthodes employées des cellules nourricières, les cellules NK ou T purifiées autant que 10 ml de sang ou une dose élevée d’il-2. Cette étude présente une nouvelle méthode avec une stratégie simple et puissante pour établir des lignes NK et des lymphocytes T en cultivant le périphérique du sang des cellules mononucléaires (PBMC) avec l’ajout d’il-2 de recombinante humaine (rhIL-2) et utilise aussi peu que 2 mL de sang total. Les cellules peuvent proliférer rapidement dans les deux semaines et être maintenues pendant plus de 3 mois. Avec cette méthode, 7 lignes de NK ou les lymphocytes T ont été établis avec un taux de réussite élevé. Cette méthode est simple, fiable et applicable à l’établissement de lignées cellulaires de plus de cas de lymphome à cellules NK/T ou de CAEBV.

Introduction

Virus d’Epstein – Barr (EBV) est omniprésent et infecte non seulement B cellules, mais aussi T et natural killer (NK), ce qui provoque un certain nombre de maladies de Syndromes lymphoprolifératifs associés à l’EBV NK/T (LPD) et Lymphome/leucémie, telles que l’activation macrophagique associés à EBV familiale, hydroa vacciniforme type lymphome, lymphome à cellules NK/T extraganglionnaires, type nasal et NK agressive cellule leucémie1,2,3. Parmi ceux-ci est la maladie chronique grave actif EBV (SCAEBV), qui est incident principalement en Asie du sud-est, et qui est maintenant considéré comme un LPD causée par une expansion clonale d’infectées par l’EBV T ou NK cellules4,5,6, 7, mais sans l’immunodéficience apparente présent dans la mononucléose infectieuse (MNI)-comme symptômes, y compris la fièvre, une hépatosplénomégalie, une lymphadénopathie et dysfonction hépatique persistante ou récurrente, ainsi que EBV-ADN haute charge dans la sang périphérique8,9. Patients atteints de CAEBV ont un mauvais pronostic10,11et sa pathogenèse, et ignore le rôle de l’EBV. Donc, lignées dérivées de maladies lymphoprolifératives associés à EBV NK/T de cellules et de lymphomes sont très utiles comme modèles cellulaires pour clarifier le mécanisme d’EBV induit la prolifération NK et des lymphocytes T et sa relation à forte incidence de la leucémie ou lymphome.

A ce jour, plusieurs lignées cellulaires ont été établies avec différentes techniques12,13,14,15,16. Une lignée humaine de cellules NK, NK-YS, créait de leucémie/lymphome à cellules NK, co-culture avec une lignée de cellules stromales de souris comme conducteur et en présence de rhIL-2 à une concentration de 20U par tranche de15mL. KAI3 était une autre lignée de cellules NK, établie à partir de patients présentant une allergie sévère moustique ou SCAEBV avec la lignée lymphoblastoïde autologue (LCL), les lymphocytes B transformés par EBV, sous forme de cellules nourricières et ajout de rhIL-2 à 100U/mL16. SNK6 et SNT8 ont été dérivées de tissus de tumeur nasale patients de lymphome de cellules NK/T en ajoutant de fortes doses de rhIL-2 (700U/mL)12. Avec une technique similaire, la cellule de SNK-1 était de patients CAEBV, cultivées de PBMC en enlevant les cellules T et ajoutant 700U/mL rhIL-213,,17. SNT13 et SNT15 ont été créés en supprimant les CD4 + et CD8 + cellules18. Jusqu’à présent, autres lignées cellulaires de cellules T et NK de patients EBV-NK/T LPD ont tous été conçues avec cette méthode19.

Les inconvénients des méthodes existantes mentionnées ci-dessus comprennent l’emploi de cellules nourricières, l’exigence d’une forte dose de IL-2, l’utilisation d’autant que 10 mL de sang total ou la purification des cellules NK/T, qui est très difficile dans la clinique due à la nécessité de vérifier quels types de cellules que EBV latentes infecte avant de commencer à la culture. CAEBV se produit principalement chez les enfants en Asie, 10 mL de sang n’est pas facile à acquérir dans toutes les régions. Dans cette étude, nous avons développé une nouvelle méthode simple avec un taux de réussite élevé pour établir des lignes NK et des lymphocytes T en cultivant des PBMC de patients CAEBV en utilisant une faible dose de rhIL2 et un volume de 2 mL de sang total sans cellules nourricières. Les résultats de cette méthode ont prouvé sa grande efficacité et gain de temps.

Protocol

Cette étude a été approuvée par le Comité d’éthique de l’Institut de génétique et biologie du développement, Académie chinoise des Sciences, et le protocole suit les lignes directrices pour le bien-être de l’humanité. Remarque : Voir la Figure 1 pour un schéma du flux de travail. 1. isolement des PBMC de Patients CAEBV Purifier les PBMC primaire de 2 mL de sang total des patients CAEBV en dégradé (par…

Representative Results

Après que 3 jours culture lors de la création de lignées cellulaires, les cellules polymorphes commencent à apparaître (Figure 2). Après 7 jours, les cellules se développent rapidement, comme le numéro et la viabilité des cellules croissent à un rythme élevé (Figure 3). Petits amas de cellules sont clairement visibles après 10-14 jours de plus en plus, lorsque la concentration en cellules peut dépasser les 3 à 6 ×…

Discussion

Dans ce protocole, une nouvelle technique pour l’établissement de lignées de cellules NK/T de sang des patients CAEBV a été développée. Comparaison avec les méthodes existantes, l’avantage majeur de cette méthode est sa simplicité et son exigence de seulement une petite quantité de sang, alors qu’il présente un taux de réussite élevé et de bonnes conditions de viabilité des cellules. En outre, les lignées de cellules NK/T peuvent être établies en cultivant des PBMC sans déterminer les types de ce…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la clé des projets de chinois Académie des Sciences (KFZD-SW-205), stratégique biologique ressources technologie système de soutien de chinois Académie des Sciences (CZBZX-1 et ZSSB-004) et par des subventions de la Fondation nationale des sciences de Chine ( 81401640) et Shanghai fonds de sciences naturelles (14ZR1434800).

Materials

Hu HLA-DR FITC BD 560944 antibody for FACS
Hu CD4 FITC BD 555346 antibody for FACS
Hu/NHP CD8 PE BD 557086 antibody for FACS
Hu CD3 PE BD 555340 antibody for FACS
Hu CD16 FITC 3G8 BD 555406 antibody for FACS
Hu/NHP CD56 PE MY31 BD 556647 antibody for FACS
hu/CD19 PE-Cy7 BD 560728 antibody for FACS
human IL-2 Roche 11147528001
human serum MRC CCC118-125
CO2 incubator SANYO
Centrifuge Techcomp CT6T Centrifugation
microscope OLYMPUS CKX53 CKX53
Automated Cell Counter Countstar IC 1000 For cell counting
24 well cell culture cluster Corning Incorporated 3524 Polystyrene plates
25cm2 cell culture flask Nest 707001 Polystyrene
FBS Gibco 10270 Component of cell medium
RPMI Medium 1640 life 22400089 For cell medium
L-Glutamine Amresco 374 Component of cell medium
100 x streptomycin penicillin solution BioRoYeeBRY-2309 BioRoYee BRY-2309 Component of cell medium
Ficoll paque plus GE Healthcare 17-1440-03 For in vitro isolation of lymphocyte
DMSO Sigma D2650 For freezing cells
flow cytometer BD BD FACSAria II
soft ware BD BD FACSDiva soft ware FACS analysis

References

  1. Cohen, J. I. Epstein-Barr virus infection. N Engl J Med. 343 (7), 481-492 (2000).
  2. Cohen, J. I., Kimura, H., Nakamura, S., Ko, Y. H., Jaffe, E. S. Epstein-Barr virus-associated lymphoproliferative disease in non-immunocompromised hosts: a status report and summary of an international meeting, 8-9 September 2008. Ann Oncol. 20 (9), 1472-1482 (2009).
  3. Oshimi, K. Progress in understanding and managing natural killer-cell malignancies. Br J Haematol. 139 (4), 532-544 (2007).
  4. Kawa, K., et al. Mosquito allergy and Epstein-Barr virus-associated T/natural killer-cell lymphoproliferative disease. Blood. 98 (10), 3173-3174 (2001).
  5. Kimura, H. Pathogenesis of chronic active Epstein-Barr virus infection: is this an infectious disease, lymphoproliferative disorder, or immunodeficiency?. Rev Med Virol. 16 (4), 251-261 (2006).
  6. Kimura, H., et al. Clinical and virologic characteristics of chronic active Epstein-Barr virus infection. Blood. 98 (2), 280-286 (2001).
  7. Ohshima, K., et al. Proposed categorization of pathological states of EBV-associated T/natural killer-cell lymphoproliferative disorder (LPD) in children and young adults: overlap with chronic active EBV infection and infantile fulminant EBV T-LPD. Pathol Int. 58 (4), 209-217 (2008).
  8. Okano, M. Overview and problematic standpoints of severe chronic active Epstein-Barr virus infection syndrome. Crit Rev Oncol Hematol. 44 (3), 273-282 (2002).
  9. Straus, S. E. The chronic mononucleosis syndrome. J Infect Dis. 157 (3), 405-412 (1988).
  10. Jones, J. F., et al. T-cell lymphomas containing Epstein-Barr viral DNA in patients with chronic Epstein-Barr virus infections. N Engl J Med. 318 (12), 733-741 (1988).
  11. Kikuta, H., et al. Epstein-Barr virus genome-positive T lymphocytes in a boy with chronic active EBV infection associated with Kawasaki-like disease. Nature. 333 (6172), 455-457 (1988).
  12. Nagata, H., et al. Characterization of novel natural killer (NK)-cell and gammadelta T-cell lines established from primary lesions of nasal T/NK-cell lymphomas associated with the Epstein-Barr virus. Blood. 97 (3), 708-713 (2001).
  13. Nagata, H., et al. Presence of natural killer-cell clones with variable proliferative capacity in chronic active Epstein-Barr virus infection. Pathol Int. 51 (10), 778-785 (2001).
  14. Tabata, N., et al. Hydroa vacciniforme-like lymphomatoid papulosis in a Japanese child: a new subset. J Am Acad Dermatol. 32 (2 Pt 2), 378-381 (1995).
  15. Tsuchiyama, J., et al. Characterization of a novel human natural killer-cell line (NK-YS) established from natural killer cell lymphoma/leukemia associated with Epstein-Barr virus infection. Blood. 92 (4), 1374-1383 (1998).
  16. Tsuge, I., et al. Characterization of Epstein-Barr virus (EBV)-infected natural killer (NK) cell proliferation in patients with severe mosquito allergy; establishment of an IL-2-dependent NK-like cell line. Clin Exp Immunol. 115 (3), 385-392 (1999).
  17. Zhang, Y., et al. Common cytological and cytogenetic features of Epstein-Barr virus (EBV)-positive natural killer (NK) cells and cell lines derived from patients with nasal T/NK-cell lymphomas, chronic active EBV infection and hydroa vacciniforme-like eruptions. Br J Haematol. 121 (5), 805-814 (2003).
  18. Oyoshi, M. K., et al. Preferential expansion of Vgamma9-JgammaP/Vdelta2-Jdelta3 gammadelta T cells in nasal T-cell lymphoma and chronic active Epstein-Barr virus infection. Am J Pathol. 162 (5), 1629-1638 (2003).
  19. Imadome, K., et al. Novel mouse xenograft models reveal a critical role of CD4+ T cells in the proliferation of EBV-infected T and NK cells. PLoS Pathog. 7 (10), e1002326 (2011).
  20. Shibuya, A., Nagayoshi, K., Nakamura, K., Nakauchi, H. Lymphokine requirement for the generation of natural killer cells from CD34+ hematopoietic progenitor cells. Blood. 85 (12), 3538-3546 (1995).
  21. Spits, H., Yssel, H. Cloning of Human T and Natural Killer Cells. Methods. 9 (3), 416-421 (1996).
  22. Liu, X., Xu, C., Duan, Z. A Simple Red Blood Cell Lysis Method for the Establishment of B Lymphoblastoid Cell Lines. J Vis Exp. (119), (2017).
  23. Kawabe, S., et al. Application of flow cytometric in situ hybridization assay to Epstein-Barr virus-associated T/natural killer cell lymphoproliferative diseases. Cancer Sci. 103 (8), 1481-1488 (2012).
check_url/kr/56515?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xu, C., Ai, J., Zhang, Q., Li, T., Wu, X., Xie, Z., Duan, Z. An Efficient and Simple Method to Establish NK and T Cell Lines from Patients with Chronic Active Epstein-Barr Virus Infection. J. Vis. Exp. (133), e56515, doi:10.3791/56515 (2018).

View Video