Summary

Analysere kommunikasjonen mellom monocytter og primære brystkreft celler i en ekstracellulær Matrix ekstrakt (ECME)-basert tredimensjonale System

Published: January 08, 2018
doi:

Summary

Her beskriver vi en tredimensjonal kultur metode for å analysere morfologi av primære brystkreft celler, så vel som å studere deres direkte/indirekte interaksjon med monocytter og resultatene som kollagen fornedrelse, immun celle rekruttering, celle invasjon, og fremme av kreft relatert betennelse.

Abstract

Innebygd i den ekstracellulære matrisen (EFM), kommunisere normal og neoplastic epitelceller nært med blodkreft og ikke-blodkreft cellene, dermed sterkt påvirke normalt vev homeostase og sykdom utfallet. Brystkreft spille tumor-assosiert makrofager (TAMs) en avgjørende rolle i sykdomsprogresjon og metastasering regelmessighet; Det er derfor viktig å kontrollere sykdommen å forstå mekanismene av monocyte chemoattraction svulst microenvironment og deres samhandling med kreftceller. Her gir vi en detaljert beskrivelse av et tredimensjonalt (3D) co kultur system av menneskelige brystkreft (BrC) celler og menneskelige monocytter. BrC celler produsert høye basale nivåer av regulert på-aktivisering, normal T-celle uttrykt og utskilles (RANTES), monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) og granulocytt-macrophage koloni-stimulerende faktor (G-CSF), mens i co kultur med monocytter, Pro-inflammatoriske cytokiner Interleukin (IL) -1 beta (IL-1β) og IL-8 var beriket med matrise metalloproteinases (MMP) -1, MMP-2 og MMP-10. Dette svulst stroma microenvironment fremmet motstand mot anoikis i MCF-10A 3D acini-lignende strukturer, chemoattraction av monocytter og invasjonen av aggressiv BrC celler. Protokollene presenteres her gir et rimelig alternativ for å studere intra-svulst kommunikasjon og er et eksempel på det store potensialet som in vitro 3D celle-systemer for å avhøre funksjoner i svulst biologi relatert til tumor aggresjon.

Introduction

Svulst biologi er langt mer intrikate enn tidligere antatt. Montering bevis viser at kreftceller er mer enn bare bulk av ukontrollert voksende celler. Snarere, forskjellige neoplastic celler synes å utføre forskjellige funksjoner viser høy organisasjon og hierarki innenfor svulst1. Kreftceller er også i intime kommunikasjon med ikke-transformert cellene: makrofager, fibroblaster, lymfocytter, adipocytter, endotelceller, blant andre celler er alle midt i stillaset proteiner og polysakkarider som utgjør ECM. Mange direkte og indirekte samhandling er etablert mellom transformert og ikke-transformert celler og ECM, som utøver en mektig innflytelse over sykdom utfallet2,3. I det konkrete tilfellet av BrC er det spesielt viktig å analysere kommunikasjonen av BrC celler med TAMs, vurderer at TAMs har blitt funnet for å spille en avgjørende rolle i utviklingen av svulsten, øker risikoen for metastasering og for sykdommen tilbakefall4 ,5.

Analysere intra-tumoral vekselsvirkningene og deres mulige utfall, nye 3D i vitro tilnærminger har blitt utviklet basert på bruk av ECM ekstrakter som gir en mye mer komplisert microenvironment, nærmere virkeligheten av svulst biologi, i forhold til de konvensjonelle monolayer cellekulturer der cellene vokse knyttet til plast. Petersen og Bissell6 gitt den første modellen av nonmalignant og ondartet mammary epitelceller kultivert på en laminin-rik kjelleren membran og var først til å beskrive 3D organotypic strukturer som diskriminerer nonmalignant menneske bryst epitelceller fra sine ondartet kolleger. Et tiår senere, modellen utviklet av Debnath, Muthuswamy, og Brugge7,8,9 gitt et verdifullt verktøy for å belyse de biologiske banene kompromittert under malign transformasjon av kjertel acini, slik som store acini formasjon på grunn av ukontrollerte spredningen, delocalization av tett krysset proteiner som bevis av nedsatt celle polarisering, og tap av acini lumen som følge av cellen motstand mot anoikis, en type programmert celledød som oppstår i Anchorage-avhengige celler når de koble fra omkringliggende ECM. Modeller av Sameni, Jedeszko og Sloane har fokusert på tenkelig proteolytiske av celler, som er nært knyttet til invasiveness, en annen viktig egenskap svulst malignitet10,11,12. Disse modellene er avhengige av protein matriser blandet med annet fluorescens-slukket protein underlag (DQ-gelatin, DQ-kollagen I, og DQ-kollagen IV), hvilke fluorescerende signaler er indikativ av proteolytisk degradering av kollagen. 3D modeller brukes også stamcelleforskningen egenskaper av både ikke-transformert og kreftceller, i hvilken celle aggregat, også kalt spheroids, kan kultivert i suspensjon eller ECM-lignende proteiner forhører for mekanismer av celledifferensiering, asymmetrisk celledeling, overholdelse av celle til celle, og cellen motilitet13,14. Invasjonen analyser at testing av iboende aggressivitet av svulsten og identifikasjon av molekylene som tjener som chemoattractants under invasiv prosessen15. Samlet, 3D modeller representerer en rimelig diversifisering i vitro celle kultur som nærmere gjenspeile normal og kreftfremkallende vev morphogenesis.

Vi har designet en 3D celle co kultur-systemet basert på de nevnte modeller7,10,11, med både menneskelige kommersielle BrC cellelinjer med kjente aggressiv potensial (luminal og trippel-negativ typer) og primær celler explanted fra BrC pasienter. Vi utviklet en modell der ingen-aggressiv (MCF-7) eller aggressiv (MDA-MB-231) BrC celler var co kulturperler med U937 monocytter i en ekstracellulær matrix ekstrakt (ECME)-basert 3D-system som tillater direkte celle-celle interaksjoner. Disse co kulturer ble brukt til å bestemme hvordan kommunikasjonen mellom disse to cellen overleveringslinjer påvirket transkripsjon av et sett av gener som er knyttet til kreft aggressiv atferd. En betydelig økning av cyclooxygenase-2 (COX-2) avskrift ble observert som falt sammen med en økt produksjon av en av sine produkter, prostaglandin E2 (PGE2), et funn som valgte betennelse i kreft progresjon. Økt transkripsjon av MMP ble også observert som korrelert med større kollagen proteolyse når aggressiv MDA-MB-231 celler var co kultivert med U937 monocytter i DQ-kollagen IV inneholder kulturer. Av notatet støtter våre co kulturer ikke antakelsen om at celle-celle samhandling mekanismer er nødvendig til kollagen fornedrelse. Det foreslo heller at kommunikasjon mellom to cellen linjen ble formidlet av utskilles molekyler. Videre inneholdt supernatants høstet fra disse co kultur analyser løselig faktorer som uorganisert kjertel acini dannet av ikke-transformert MCF-10A celler13. Det ble funnet at aggressiv og primære BrC celler utskilles forhøyede nivåer av monocyte chemotactic molekyler MCP-1, GM-CSF og RANTES. Derfor skissert vi en 3D kultur der celler ble skilt i celle kultur setter å hindre celle-celle interaksjoner. Disse kulturene ble brukt til å løse indirekte kommunikasjonen mellom BrC celler og monocytter. For disse analyser, ingen-aggressiv og aggressiv reklamen BrC cellelinjer og primære BrC celler og tre typer menneskelig monocytter: kommersielle U937 og THP-1 celler og primære monocytter (PMs) isolert fra perifert blod sunn givere (alle monocytter ble brukt i en ingen-aktivert begrunne) ble brukt. Økte konsentrasjoner av inflammatoriske cytokiner IL 1β og IL-8 ble observert å være beriket i co kultur. På samme måte ble det funnet at MMP-1, MMP-2 og MMP-10 også økt i BrC celler-monocytt co kulturer og dermed forsterkende tidligere funn14. I dette manuskriptet er en punkt-til-punkt arbeidsflyt primære BrC celler isolasjon og testing i 3D kulturer presentert sammen med representant resultater. Dette arbeidet er et godt eksempel på det store potensialet som in vitro 3D celle-systemer for å avhøre bestemte aspekter av svulst biologi.

Protocol

Prøver fra BrC pasienter ble innhentet fra vev bank of the Unidad de Investigación no Virología y Cáncer, sykehuset Infantil de México Federico Gómez. Denne studien ble godkjent av den vitenskapelige, etiske og biosikkerhet gjennomgå styrene i sykehuset Infantil de México Federico Gómez: Comité de Investigación, Comité de Ética no Investigación og Comité de Bioseguridad. Alle pasienter prospektivt innskrevet og ble informert om innholdet av studien: de vil delta signert en skriftlig samtykke før prøvetak…

Representative Results

Morfologisk analyse av BrC celler i 3D kulturer: Morfologi av primære BrC cellene vokser i 3D kulturer på lave og høye tettheter ble studert over 5 dager. Under den første 48t, celler overholder ECME og opprettholde lav tetthet. På dette tidspunkt, kan det tydelig være verdsatt at celler presentere en langstrakt spindel-lignende figur, noen med to eller flere lenge cytoplasmatiske anslag og uten viser tyde…

Discussion

Epitelceller vokse i en 3D romlige konformasjon og deres samspill med ECM proteiner er avgjørende for vev homeostase. Mange kreft studier har vært basert på celler dyrket i monolayers (2D) og selv om de har vært avgjørende for å forstå mange aspekter av tumor formasjon og progresjon, monolayers er recapitulate ikke kjennetegnene som ECM pålegger celler, for forekomst: begrense spredning, vedheft-avhengig celle overlevelse, apikale-basolateral polaritet, ECM remodeling, celledifferensiering, osv. Viktiger…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av CONACyT FONSEC SSA/IMSS/ISSSTE prosjektet nr. 233061 til Ezequiel M. Fuentes-Pananá og Fondo de Apoyo a la Investigación, sykehuset Infantil de México Federico Gómez (prosjektnummeret HIM-2014-053). Espinoza-Sánchez NA er en doktorgrad student fra Programa de Doctorado en Ciencias Biomédicas, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM) og mottatt fellesskap 231663 fra CONACYT. E-S NA, erkjenner også økonomisk støtte fra den meksikanske Institute for Social Security (IMSS).

Materials

U937 American Type Culture Collection ATCC  CRL-1593.2 Monocytic cell line/histiocytic lymphoma 
THP-1 American Type Culture Collection ATCC  TIB-202 Monocytic cell line/acute monocytic leukemia 
MCF-10A American Type Culture Collection ATCC  CRL-10317 Non-transformed breast cell line
MCF-7 American Type Culture Collection ATCC  HTB-22 Breast Cancer Cell line
T47D American Type Culture Collection ATCC  HTB-133 Breast Cancer Cell line
HS578T American Type Culture Collection ATCC  HTB-126 Breast Cancer Cell line
MDA-MB-231 American Type Culture Collection ATCC  HTB-26 Breast Cancer Cell line
RPMI 1640 medium GIBCO BRL Life Technologies 11875-093
DMEM High Glucose  GIBCO BRL Life Technologies 11964-092 4.5 g/L glucose
DMEM/F12 GIBCO BRL Life Technologies 11039-021
Antibiotic/Antimycotic GIBCO BRL Life Technologies 15240-062 100 U/mL penicillin, 100 µg/mL streptomycin, and 0.25 µg/mL Fungizone
Fetal Bovine Serum GIBCO BRL Life Technologies 16000-044
Horse serum  GIBCO BRL Life Technologies 16050114
0.05% Trypsin-EDTA 1X GIBCO BRL Life Technologies 25300-062
PBS 1X (Phosphate Buffered Saline GIBCO BRL Life Technologies 20012-027
Epidermal Growth Factor (EGF) PeproTech AF-100-15 (1.00mg)
Insulin SIGMA-ALDRICH I1882-100MG
Hydrocortisone SIGMA-ALDRICH H088-5G
Cholera toxin Vibrio cholerae SIGMA-ALDRICH C8052-1MG
Matrigel  Corning Inc 356237 Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) mouse sarcoma, extracellular matrix extract, Store at -20°C until use at 4°C
GM-CSF PeproTech 300-03
MCP-1 PeproTech 300-04
RANTES PeproTech 300-06
IL-8 PeproTech 200-08
IL-1β PeproTech 200-01B
Crystal-violet Hycel México 541
Paraformaldehyde SIGMA-ALDRICH P6148
Transwell permeable supports (inserts) Corning Inc 3422 6.5 mm diameter, 8 µm pore size/24-well plates 
Transwell permeable supports (inserts) Thermofisher Scientific 140620 6.5 mm diameter, 0.4 µm pore size/24-well plates 
Monocyte Isolation Kit II Human  Miltenyi Biotec 130-091-153
LS Columns Miltenyi Biotec 130-042-401
Human Cytokine/Chemokine Magnetic Bead Panel Kit 96 Well Plate Assay EMD Millipore HCYTOMAG-60K
Magpix with xPonent software (laser based fluorescent analytical test instrumentation) Luminex Corporation 40-072
Lab-Tek chamber slide with cover (8 well) Nalge Nunc International 177402
Glass bottom microwell 35mm petri  dishes MatTek Corp. P35G-1.5-14-C

References

  1. Rich, J. N. Cancer stem cells: understanding tumor hierarchy and heterogeneity. Medicine (Baltimore). 95 (1), 2-7 (2016).
  2. Wang, M., et al. Role of tumor microenvironment in tumorigenesis. J Cancer. 8 (5), 761-773 (2017).
  3. Quail, D. F., Joyce, J. A. Microenvironmental regulation of tumor progression and metastasis. Nat Med. 19 (11), 1423-1437 (2013).
  4. Sica, A., et al. Macrophage polarization in tumour progression. Semin Cancer Biol. 18 (5), 349-355 (2008).
  5. Mantovani, A., Marchesi, F., Malesci, A., Laghi, L., Allavena, P. Tumour-associated macrophages as treatment targets in oncology. Nat Rev Clin Oncol. , (2017).
  6. Petersen, O. W., Ronnov-Jessen, L., Howlett, A. R., Bissell, M. J. Interaction with basement membrane serves to rapidly distinguish growth and differentiation pattern of normal and malignant human breast epithelial cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 89 (19), 9064-9068 (1992).
  7. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S. Morphogenesis and oncogenesis of MCF-10A mammary epithelial acini grown in three-dimensional basement membrane cultures. Methods. 30 (3), 256-268 (2003).
  8. Debnath, J., et al. The role of apoptosis in creating and maintaining luminal space within normal and oncogene-expressing mammary acini. Cell. 111 (1), 29-40 (2002).
  9. Muthuswamy, S. K., Li, D., Lelievre, S., Bissell, M. J., Brugge, J. S. ErbB2, but not ErbB1, reinitiates proliferation and induces luminal repopulation in epithelial acini. Nat Cell Biol. 3 (9), 785-792 (2001).
  10. Sameni, M., Dosescu, J., Moin, K., Sloane, B. F. Functional imaging of proteolysis: stromal and inflammatory cells increase tumor proteolysis. Mol Imaging. 2 (3), 159-175 (2003).
  11. Sameni, M., et al. MAME models for 4D live-cell imaging of tumor: microenvironment interactions that impact malignant progression. J Vis Exp. (60), (2012).
  12. Jedeszko, C., Sameni, M., Olive, M. B., Moin, K., Sloane, B. F. Visualizing protease activity in living cells: from two dimensions to four dimensions. Curr Protoc Cell Biol. 4, 20 (2008).
  13. Chimal-Ramirez, G. K., et al. MMP1, MMP9, and COX2 expressions in promonocytes are induced by breast cancer cells and correlate with collagen degradation, transformation-like morphological changes in MCF-10A acini, and tumor aggressiveness. Biomed Res Int. 2013, 279505 (2013).
  14. Espinoza-Sanchez, N. A., Chimal-Ramirez, G. K., Mantilla, A., Fuentes-Panana, E. M. IL-1beta, IL-8, and Matrix Metalloproteinases-1, -2, and -10 Are Enriched upon Monocyte-Breast Cancer Cell Cocultivation in a Matrigel-Based Three-Dimensional System. Front Immunol. 8, 205 (2017).
  15. Li, Y., Wang, L., Pappan, L., Galliher-Beckley, A., Shi, J. IL-1beta promotes stemness and invasiveness of colon cancer cells through Zeb1 activation. Mol Cancer. 11, 87 (2012).
  16. Gallagher, S., Winston, S. E., Fuller, S. A., Hurrell, J. G. Immunoblotting and immunodetection. Curr Protoc Mol Biol. 10, 18 (2008).
  17. Troeberg, L., Nagase, H. Zymography of metalloproteinases. Curr Protoc Protein Sci. 21, 15 (2004).
  18. Arevalo-Romero, H., Meza, I., Vallejo-Flores, G., Fuentes-Panana, E. M. Helicobacter pylori CagA and IL-1beta Promote the Epithelial-to-Mesenchymal Transition in a Nontransformed Epithelial Cell Model. Gastroenterol Res Pract. 2016, 4969163 (2016).
  19. Reed, J. R., Leon, R. P., Hall, M. K., Schwertfeger, K. L. Interleukin-1beta and fibroblast growth factor receptor 1 cooperate to induce cyclooxygenase-2 during early mammary tumourigenesis. Breast Cancer Res. 11 (2), 21 (2009).
  20. Ma, L., et al. Epidermal growth factor (EGF) and interleukin (IL)-1beta synergistically promote ERK1/2-mediated invasive breast ductal cancer cell migration and invasion. Mol Cancer. 11, 79 (2012).
  21. Grande, S. M., Bannish, G., Fuentes-Panana, E. M., Katz, E., Monroe, J. G. Tonic B-cell and viral ITAM signaling: context is everything. Immunol Rev. 218, 214-234 (2007).
  22. Benton, G., Arnaoutova, I., George, J., Kleinman, H. K., Koblinski, J. Matrigel: from discovery and ECM mimicry to assays and models for cancer research. Adv Drug Deliv Rev. 79-80, 3-18 (2014).
  23. Worthington, P., Pochan, D. J., Langhans, S. A. Peptide Hydrogels – Versatile Matrices for 3D Cell Culture in Cancer Medicine. Front Oncol. 5, 92 (2015).
  24. Tibbitt, M. W., Anseth, K. S. Hydrogels as extracellular matrix mimics for 3D cell culture. Biotechnol Bioeng. 103 (4), 655-663 (2009).
  25. Schlaermann, P., et al. A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro. Gut. 65 (2), 202-213 (2016).
  26. Pompaiah, M., Bartfeld, S. Gastric Organoids: An Emerging Model System to Study Helicobacter pylori Pathogenesis. Curr Top Microbiol Immunol. 400, 149-168 (2017).
  27. Takebe, T., et al. Vascularized and functional human liver from an iPSC-derived organ bud transplant. Nature. 499 (7459), 481-484 (2013).
  28. Takasato, M., et al. Directing human embryonic stem cell differentiation towards a renal lineage generates a self-organizing kidney. Nat Cell Biol. 16 (1), 118-126 (2014).
check_url/kr/56589?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Espinoza-Sánchez, N. A., Chimal-Ramírez, G. K., Fuentes-Pananá, E. M. Analyzing the Communication Between Monocytes and Primary Breast Cancer Cells in an Extracellular Matrix Extract (ECME)-based Three-dimensional System. J. Vis. Exp. (131), e56589, doi:10.3791/56589 (2018).

View Video