Summary

Isolasjon og kultur av gnager Microglia å fremme en dynamisk Ramified morfologi i Serum-free Medium

Published: March 09, 2018
doi:

Summary

Innsats for å forstå microglial funksjonen i detalj har blitt hindret av mangelen på microglial kultur modeller som recapitulate egenskapene for eldre i vivo microglia. Denne protokollen beskriver isolasjon og kultur tilnærming beregnet på vedlikeholde robuste overlevelse av svært ramified modent rotta microglia under definert mellomstore forhold.

Abstract

Microglia utgjør 5-10% av alle sentralnervesystemet (CNS) celler og økende grad trekker oppmerksomhet deres bidrag under utvikling, homeostase og sykdom. Selv om makrofager har vært studert i detalj for tiår, spesialiserte funksjoner av microglia, vev-resident makrofager av CNS, har vært i stor grad mystisk, delvis på grunn av begrensninger i kunne recapitulate moden microglial egenskaper i kultur. Her viser vi en ukomplisert prosedyre for rask isolering av ren microglia fra modne gnager hjernen. Vi beskriver også serum-free oppdrettsforholdene som støtter høye nivåer av microglial levedyktighet over tid. Microglia kultivert under disse definert mellomstore forholdene utstilling forseggjort ramified prosesser og dynamisk overvåking atferd. Vi illustrerer noen effekter av serum eksponering på kulturperler microglia og diskutere hvordan disse serum-free kulturer i forhold til både serum-eksponerte kulturer samt microglia i vivo.

Introduction

Som makrofager av CNS parenchyma, microglia samhandle med et stort utvalg av nevrale kretser og glial signalnettverk nettverk. De spiller viktige roller i utviklingen og homeostase i hjernen gjennom synaptic beskjæring, apoptotisk celle klarering og transient interaksjoner med neuronal prosesser1,2. Microglia er tidlig responders for nevrologiske skader, utvide sine lange, tynne prosesser til lesjon steder å koordinere inflammatorisk svar og begrense blødning3,4. Endringene i microglial morfologi og funksjon er allestedsnærværende i både akutte og kroniske CNS skader, og microglia utstillingen endret morfologi, lokalisering og uttrykk for inflammatoriske mediatorer i en rekke ulike sykdom stater1. Menneskelige genetiske studier indikerer at mutasjoner som endrer risiko for nevrodegenerative sykdommer er ofte overveiende eller utelukkende uttrykt av microglia i intakt CNS peker til en avgjørende rolle for microglia i patogenesen ved sykdom eller progresjon5 . Gitt deres framtredende i skader og sykdom, er fremme forståelsen av microglial biologi svært viktig for å utvikle nye terapeutiske metoder.

Mange viktige fremskritt til forståelsen av microglial biologi har oppstått ved å ekstrapolere teknikker og mekanismer i studier av andre macrophage befolkningsgrupper inkludert kultur metoder, gene uttrykket profiler og definisjoner av funksjonell / morfologiske stater. Selv om generalisert macrophage funksjoner ofte spilt på overraskende måter i CNS landskapet, microglia er selv høyt spesialiserte, viser en ramified morfologi og en unik gene expression signatur som skiller dem fra andre vev makrofager6. Microglia har en slektslinje som er forskjellig fra de fleste andre vev makrofager; de kolonisere CNS under en tidlig embryonale bølge av primitive hematopoiesis og selvstendig fornye gjennom livet, uavhengig av bidrag fra definitive hematopoiesis7. Fullt ut modne gene expression signatur voksen microglia oppnås ikke før den andre postnatal uke8. Miljømessige signaler fra de omkringliggende vev spiller en viktig rolle i dikterer vev-spesifikke macrophage funksjoner6, som i CNS inkluderer begrenset eksponering for blodbårne faktorer gitt av blod – hjerne barrieren9.

En helt forstå microglial bidrag til CNS homeostase og sykdom er vanskeligheten av recapitulating spesialiserte egenskapene for eldre microglia sett vivo med renset celler i vitro. Mange metoder har blitt utviklet for å isolere og kultur intakt microglia, men de fleste tilnærminger stole på serum støtte celle overlevelse. Vi har vist at tillegg av serum, som er en iboende variabel reagens som inneholder en rekke bioaktive molekyler, er særlig problematisk når arbeider med microglia fordi den fremmer en amoeboid morfologi, økt spredning, og økt fagocytose9 sett ofte i vivo når microglia er utsatt for blod båret faktorer etter avbrudd av blod – hjerne barrieren. Av disse beregningene, serum-eksponert cellene ligner microglia i skade eller sykdom stater, men slike endringer er redusert når microglia er kultivert i definerte vekstmediet som inneholder CSF-1 (eller IL-34), TGF-β, kolesterol og selenitt.

Denne protokollen gir detaljer for dyrking juvenile rotte microglia under serum-free forhold knyttet til nylig publiserte arbeider9. Denne protokollen er strømlinjeformet for rotter fra postnatal dag 21-30 (P21 – P30), men kan tilpasses å isolere microglia fra rotter og mus i alle aldre, om avkastning og totale levedyktighet vil variere avhengig av arter og alder på dyret. Maksimal gir og optimal levedyktighet oppnås ved litt umoden microglia (~ P9), gir og levedyktighet gradvis avsmalnende til noe lavere nivåer i voksen dyr. Microglia kan også være isolert fra mus, men vi har funnet at rotte celler Vis betydelig høyere avkastning levedyktighet og kompleksiteten i ramified morphologies, sammenlignet med musen celler i serum-free kulturer. Dyr alderen større enn P50 har ikke blitt evaluert med denne protokollen. Denne immunopanning isolasjon prosedyren er blitt optimert å minimere endringer i microglial transcriptional profiler under isolasjon og å maksimere nedstrøms levedyktigheten til cellene. Bruker disse teknikkene og media formuleringer, kan høy-levedyktigheten primære kulturer opprettholdes i uker. Microglia kultivert under disse forholdene viser en svært ramified morfologi med rask utvidelse og retraksjon av prosesser og lave relativt priser spredning. Vi understreke betydningen av serum-eksponering på disse egenskapene, og diskutere styrkene og svakhetene ved denne metoden i forhold til andre tilnærminger.

Protocol

Alle prosedyrer som involverer gnagere likedannet Stanford University retningslinjer, som i samsvar med nasjonale og statlige lover og retningslinjer. Alle dyr prosedyrer ble godkjent av Stanford University’s Administrative Panel på laboratoriet Animal Care. Merk: Alle løsning og buffer komposisjoner er gitt i Tabellen for materiale. 1. klargjør en Petriskål for CD11b Immunopanning (dag 0) Merk: Forberede 1 immunopannin…

Representative Results

Denne protokollen beskriver en metode å kultur høy renhetsgrad ramified microglia fra juvenile rotter. Lignende resultater kan oppnås ved hjelp av umodne, perinatal og voksen dyr, som beskrevet nedenfor. Siden cellen isolasjoner ofte inkluderer nyansene og mange muligheter for cellene å dø, brukte vi kvalitetskontroll sjekkpunkter for å finne suksess på trinnene. Vi vanligvis overvåket celle suspensjoner bruker en hemocytometer på flere trinn i isolasjon protokollen (<strong clas…

Discussion

Fordi microglia fungere som sentinel immunceller av CNS, er de svært responsive til miljøendringer; stor forsiktighet må derfor minimere inflammatorisk svar i cellene under deres isolasjon og kultur8. Dette gjøres i denne protokollen gjennom hastighets- og temperaturinnstillinger. Holde cellene på isen eller i 4 ° C når mulig reduserer aktivisering, så alle sentrifugering trinnene finner sted på 4 ° C, dyrene er parfyme med iskald perfusjon buffer, og protokollen har blitt strømlinjefor…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Christopher og Dana Reeve Foundation International forskning Consortium ryggmargsskade, Dr. Miriam og Sheldon G. Adelson Forskningsstiftelse, JPB stiftelsen, Novartis Institute av grunnleggende forskning, sjenerøse bidrag fra Vincent og Stella Coates og Damon Runyon Cancer Research Foundation (DRG-2125-12).

Materials

Rat: Sprague-Dawley Charles River Cat# 400
mouse anti-rat CD11b monoclonal (clone OX42) Bio-Rad Cat# MCA275R Panning: 1:1,000; Staining: 1:500
Goat polycolonal anti-Iba1  Abcam Cat# AB5076 Staining: 1:500
Rabbit polyclonal anti-Ki67  Abcam  Cat# AB15580 Staining: 1:500
Alexa Fluor Donkey anti-mouse 594 Invitrogen Cat# 11055 Staining: 1:500
Alexa Fluor Donkey anti-goat 488 Invitrogen Cat# A-21203 Staining: 1:500
Alexa Fluor Donkey anti-Rabbit 647 Invitrogen Cat# A-31573 Staining: 1:500
Triton-X (detergent in ICC staining) Thermo Fisher Cat# 28313
Heparan sulfate Galen Laboratory Supplies Cat# GAG-HS01
Heparin Sigma  Cat# M3149
Peptone from milk solids Sigma Cat# P6838
TGF-β2 Peprotech Cat# 100-35B
Murine IL-34 R&D Systems Cat# 5195-ML/CF
Ovine wool cholesterol Avanti Polar Lipids Cat# 700000P
Collagen IV Corning  Cat# 354233
Oleic acid Cayman Chemicals  Cat# 90260
11(Z)Eicosadienoic (Gondoic) Acid Cayman Chemicals  Cat# 20606
Calcein AM dye Invitrogen Cat# C3100MP
Ethidium homodimer-1 Invitrogen Cat# E1169
DNaseI Worthington Cat# DPRFS
Percoll PLUS GE Healthcare Cat# 17-5445-02
Trypsin  Sigma Cat# T9935
DMEM/F12 Gibco Cat# 21041-02
Penicillin/ Streptomycin Gibco Cat# 15140-122
Glutamine Gibco Cat# 25030-081
N-acetyl cysteine  Sigma Cat# A9165
Insulin Sigma Cat# 16634
Apo-transferrin  Sigma Cat# T1147
Sodium selenite Sigma Cat# S-5261
DMEM (high glucose) Gibco Cat# 11960-044
Dapi Fluoromount-G Southern Biotech Cat# 0100-20 
Poly-D-Lysine  Sigma Cat# A-003-E
Primaria Plates  VWR Cat# 62406-456
Name Company Catalog Number Comments
Stock reagents 
Apo-transferrin Reconstitution: 10 mg/mL in PBS
Concentration used: 1:100
Storage: -20°C
N-acetyl cysteine Reconstitution: 5 mg/mL in H2O
Concentration used: 1:1,000
Storage: -20°C
Sodium selenite Reconstitution: 2.5 mg/mL in H2O
Concentration used: 1:25,000
Storage: -20°C
Collagen IV Reconstitution: 200 μg/mL in PBS
Concentration used: 1:100
Storage: -80°C
TGF-b2 Reconstitution: 2 mg/mL in PBS
Concentration used: 1:1,000
Storage: -20°C
IL-34 Reconstitution: 200 μg/mL in PBS
Concentration used: 1:1,000
Storage: -80°C
Ovine wool cholesterol Reconstitution: 1.5 mg/mL in 100% ethanol
Concentration used: 1:1,000
Storage: -20°C
Heparan sulfate Reconstitution: 1 mg/mL in H2O
Concentration used: 1:1,000
Storage: -20°C
Oleic acid/Gondoic acid Reconstitution: Gondoic: 0.001 mg/mL; Oleic: 0.1 mg/mL in 100% ethanol
Concentration used: 1:1,000
Storage: -20°C
Heparin Reconstitution: 50 mg/mL in PBS
Concentration used: 1:100
Storage: -20°C
Name Company Catalog Number Comments
Solutions 
Perfusion Buffer Recipe: 50 μg/mL heparin in DPBS++ (PBS with Ca++ and Mg+ +)
Comments: Use when ice-cold
Douncing Buffer Recipe: 200 μL of 0.4% DNaseI in 50 mL of DPBS++
Comments: Use when ice-cold
Panning Buffer Recipe: 2 mg/mL of peptone from milk solids in DPBS++
Microglia Growth Medium (MGM) Recipe: DMEM/F12 containing 100 units/mL penicillin, 100 μg/mL streptomycin, 2 mM glutamine, 5 μg/mL N-acetyl cysteine, 5 μg/mL insulin, 100 μg/mL apo-transferrin, and 100 ng/mL sodium selenite
Comments: Use ice-cold MGM to pan microglia off of immnopanning dish.
Collagen IV Coating Recipe: MGM containing 2 μg/mL collagen IV
Myelin Seperation Buffer Recipe: 9 mL Percoll PLUS, 1 mL 10x PBS without Ca++ and Mg++, 9 μL 1 M CaCl2, 5 μL 1 M MgCl2
Comments: Mix well after the addition of  CaCl2 and MgCl2
TGF-b2/IL-34/Cholesterol containing growth media (TIC)  Recipe: MGM containing human 2 ng/mL TGF-b2, 100 ng/mL murine IL-34, 1.5 μg/mL ovine wool cholesterol, 10 μg/mL heparan sulfate, 0.1 μg/ml oleic acid, and 0.001 μg/ml gondoic acid
Comments: Make sure to add cholesterol to media warmed to 37 °C and do not add more than 1.5 μg/mL or it will precipitate out. Do not filter cholesterol-containing media. Equilibrate TIC media with 10% CO2 for 30 min- 1 hr before adding to cells to insure optimal pH.

References

  1. Colonna, M., Butovsky, O. Microglia Function in the Central Nervous System During Health and Neurodegeneration. Annu Rev Immunol. 35, 441-468 (2017).
  2. Wu, Y., Dissing-Olesen, L., MacVicar, B. A., Stevens, B. Microglia: Dynamic Mediators of Synapse Development and Plasticity. Trends Immunol. 36 (10), 605-613 (2015).
  3. Lou, N., et al. Purinergic receptor P2RY12-dependent microglial closure of the injured blood-brain barrier. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (4), 1074-1079 (2016).
  4. Haynes, S. E., et al. The P2Y12 receptor regulates microglial activation by extracellular nucleotides. Nat Neurosci. 9 (12), 1512-1519 (2006).
  5. Gosselin, D., et al. An environment-dependent transcriptional network specifies human microglia identity. Science. 356 (6344), (2017).
  6. Lavin, Y., et al. Tissue-resident macrophage enhancer landscapes are shaped by the local microenvironment. Cell. 159 (6), 1312-1326 (2014).
  7. Hoeffel, G., Ginhoux, F. Ontogeny of Tissue-Resident Macrophages. Front Immunol. 6, 486 (2015).
  8. Bennett, M. L., et al. New tools for studying microglia in the mouse and human CNS. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (12), E1738-E1746 (2016).
  9. Bohlen, C. J., et al. Diverse Requirements for Microglial Survival, Specification, and Function Revealed by Defined-Medium Cultures. Neuron. 94 (4), 759-773 (2017).
  10. Herz, J., Filiano, A. J., Smith, A., Yogev, N., Kipnis, J. Myeloid Cells in the Central Nervous System. Immunity. 46 (6), 943-956 (2017).
check_url/kr/57122?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Collins, H. Y., Bohlen, C. J. Isolation and Culture of Rodent Microglia to Promote a Dynamic Ramified Morphology in Serum-free Medium. J. Vis. Exp. (133), e57122, doi:10.3791/57122 (2018).

View Video