Summary

Fluorescens molekylære tomografi for In Vivo billeddannelse af glioblastom Xenografts

Published: April 26, 2018
doi:

Summary

Orthotopic intrakraniel injektion af tumorceller har været anvendt i kræftforskning for at studere hjernen tumor biology, progression, evolution og terapeutisk respons. Her præsenterer vi fluorescens molekylære tomografi af tumor xenografts, der giver real-time intravital imaging og kvantificering af en tumor masse i prækliniske glioblastom modeller.

Abstract

Tumorigenisitetsforsøg er kræftceller evne til at danne en tumor masse. En udbredt tilgang til at afgøre, om cellerne er tumorfremkaldende er ved at indsprøjte immundefekte mus subkutant med kræftceller og måle tumor massen, når det bliver synlig og håndgribelig. Orthotopic injektioner af kræftceller har til formål at indføre xenograft i det mikromiljø, der mest ligner væv af oprindelsen af tumor undersøges. Hjernen kræftforskning kræver intrakraniel indsprøjtning af kræftceller til at tillade tumordannelse og analyse i den unikke mikromiljø i hjernen. I vivo billeddannelse af intrakranielle xenografts overvåger øjeblikkeligt tumor massen af orthotopically aflægger mus. Her rapporterer vi brugen af fluorescens molekylære tomografi (FMT) af hjernen tumor xenografts. Kræftcellerne er først transduced med nær infrarød fluorescerende proteiner og derefter injiceres i hjernen hos immunkompromitterede mus. Dyrene er derefter scannet for at få kvantitative oplysninger om tumor massen over en længere periode. Celle pre mærkning giver mulighed for omkostningseffektiv, reproducerbare og pålidelig kvantificering af tumor byrde inden for hver mus. Vi fjernede behovet for intravenøs imaging substrater, og således reduceret stress på dyrene. En begrænsning af denne tilgang er repræsenteret ved manglende evne til at detektere meget små masserne; Det har imidlertid bedre opløsning for større masse end andre teknikker. Det kan anvendes til at vurdere effekten af en behandling eller genetiske ændringer af gliom cellelinjer og patient-afledte prøver.

Introduction

Kræft er en af de førende årsager til sygdom-relaterede dødsfald blandt mennesker i den industrialiserede verden. Med en ekstremt høje dødstal er nye behandlinger tvingende nødvendigt. Glioblastom multiforme (GBM) er en ekstremt dødelige form for kræft i hjernen, sammensat af heterogene befolkninger af hjernen tumor, stromale og immun celler. Ifølge Central hjerne tumor registreringsdatabasen i USA er forekomsten af primære maligne og ikke-maligne hjernetumorer ca 22 tilfælde pr. 100.000. Ca 11.000 nye sager forventes at blive diagnosticeret i USA i 20171.

Prækliniske undersøgelser undersøge sandsynligheden for et stof, procedure eller behandling for at være effektiv inden prøvningen i mennesker. Et af de tidligste laboratorium skridt i prækliniske undersøgelser er at identificere potentielle molekylære mål for narkotikabehandling ved hjælp af kræftceller implanteret i en værtsorganisme, defineret som menneskelige xenograft modeller. I denne kontekst, har intrakraniel hjerne tumor xenograft modeller ved hjælp af patient-afledte xenografts (PDXs) været meget anvendt til at studere hjernen tumor biology, progression, evolution og terapeutiske reaktion, og for nylig for biomarkører udvikling, narkotika screening, og personlig medicin2,3,4.

En af de mest overkommelige og ikke-invasiv i vivo imaging metoder til at overvåge intrakranielle xenografts er bioluminescens imaging (BLI)5,6,7,8. Men nogle BLI begrænsninger omfatter substrat administration og tilgængelighed, enzym stabilitet, og lys dæmper og spredning under imaging erhvervelse9. Her rapporterer vi den infrarøde FMT som alternativ tænkelig metode til at overvåge prækliniske glioblastom modeller. I denne metode, signal erhvervelse og kvantificering af intracranially implanterede PDXs, udtrykker en nær-infrarødt fluorescerende protein iRFP72010,11 (herefter betegnet som FP720) eller turboFP635 (herefter benævnt som FP635), udføres med en FMT imaging system. Ved hjælp af FMT teknologi, overvåget orthotopic tumorer kan være i vivo før, under eller efter behandling, i en ikke-invasiv, substrat-fri og kvantitative måde for prækliniske observationer.

Protocol

Anvendelsen af eksperimentel forskning dyr og smitsomme agenser, såsom lentivirus at transduce kræftceller, kræver forudgående godkendelse af programmet institutionelle dyrs pleje og institutionelle biosikkerhed udvalget. Denne protokol følger retningslinjerne dyrs pleje af University of California San Diego (UCSD). 1. mærkning af glioblastom celler med FP635 eller FP720 konstruktion Producere og rense lentivirus i henhold til protokollen, beskrevet af Tiscornia et al….

Representative Results

Glioblastom celler U87EGFRvIII (U87 celler over udtrykker EGF receptoren variant III) blev kulturperler ifølge trin 1.2. Lentivirus blev produceret og renset ifølge trin 1.1. Viral koncentrationen var bestemt af p24 ELISA analyse. Celler var transduced med lentivirus transporterer infrarød fluorescerende proteiner ifølge trin 1.8. Plasmid kodning FP72010,11 blev venligst leveret af Dr. V.V. Verkhusha og FP635 vektor blev købt…

Discussion

Tumor xenografts har været flittigt brugt i kræftforskning og har udviklet en række veletablerede Billeddannende teknikker: BLI; magnetisk resonans imaging (MR); Positron emissions tomografi (PET), beregnet tomografi (CT); FMT. Hver af disse tilgange kommer med fordele og ulemper, men i sidste ende supplerer hinanden med typen af oplysningerne. En af de mest almindeligt anvendte i vivo imaging-teknologi er BLI5,6,7<s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Frederick Lang, MD Anderson Cancer Center for GBM-PDX neurospheres. Dette arbejde blev støttet af nederlag GBM forskning Collaborative, et datterselskab af National hjerne Tumor Society (Frank Furnari), R01-NS080939 (Frank Furnari), James S. McDonnell Foundation (Frank Furnari); Jorge Benitez blev støttet af en award fra den amerikanske hjerne Tumor Association (ABTA); Ciro Zanca blev delvist støttet af en amerikansk-italienske Cancer Foundation postdoc research fellowship. Frank Furnari modtager løn og supplerende støtte fra Ludwig Institut for kræftforskning.

Materials

DMEM/High Glucose  HyClone/GE SH30022.1
DMEM/F12 1:1  Gibco 11320-082
FBS HyClone/GE SH30071.03
Accutase Innovative cell technologies AT-104
Trypsin HyClone/GE SH30236.01
B27 supplement Gibco 17504044
human recombinant EGF  Stemcell Technologies 2633
human recombinant FGF Stemcell Technologies 2634
DPBS Corning 21-031-00
FACS tubes Falcon 352235
DAPI ThermoFisher Scientific 62248
Blasticidin ThermoFisher Scientific A1113903
p24 ELISA  Clontech 632200
Xylazine Akorn NDC 59399-110-20
Ketamine Zoetis NADA 043-403 Controlled substance
Ointment Dechron NDC 17033-211-38
Absorbable suture CpMedical VQ392
5 ul syringe Hamilton 26200-U Catalog number as sold by Sigma-Aldrich
Cell Sorter Sony SH8007
Mouse stereotaxic frame  Stoelting 51730
Motorized stereotaxic injector Stoelting 53311
Micromotor hand-held drill Foredom K1070
Mouse warming pad  Ken Scientific Corporation TP-22G
Fluorescence Tomography System  PerkinElmer FMT 2500 XL
TrueQuant Imaging Software  Perkin Elmer  7005319
Ultra-centrifuge Optima L-80 XP Beckman Coulter 392049
Tissue Culture 100mm Dishes Olympus Plastics 25-202
Tissue Culture 150mm Dishes Olympus Plastics 25-203
Tissue Culture Flasks T75 Corning 430720U
50 mL conical tubes Corning 430290
15 mL conical tubes Olympus Plastics 28-101
Centrifuge Avanti J-20 Beckman Coulter J320XP-IM-5
Tube, Polypropylene, Thinwall, 5.0 mL Beckman Coulter 326819
Tube, Thinwall, Polypropylene, 38.5 mL, 25 x 89 mm Beckman Coulter 326823
Athymic nude mice Charles River Laboratories Strain Code  490 (Homozygous) Prior approval by the Institutional Animal Care Program and by the Institutional Biosafety Committee required.   

References

  1. Ostrom, Q. T., et al. CBTRUS Statistical Report: Primary Brain and Other Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United States in 2009-2013. Neuro-Oncology. 18 (suppl_5), v1-v75 (2016).
  2. Pauli, C., et al. Personalized In Vitro and In Vivo Cancer Models to Guide Precision Medicine. Cancer Discovery. 7 (5), 462-477 (2017).
  3. Stewart, E. L., et al. Clinical Utility of Patient-Derived Xenografts to Determine Biomarkers of Prognosis and Map Resistance Pathways in EGFR-Mutant Lung Adenocarcinoma. Journal of Clinical Oncology. 33 (22), 2472-2480 (2015).
  4. Gao, H., et al. High-throughput screening using patient-derived tumor xenografts to predict clinical trial drug response. Nat Med. 21 (11), 1318-1325 (2015).
  5. Ozawa, T., James, C. D. Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (41), e1986 (2010).
  6. Kondo, A., et al. An experimental brainstem tumor model using in vivo bioluminescence imaging in rat. Child’s Nervous System. 25 (5), 527-533 (2009).
  7. Nyati, S., Young, G., Ross, B. D., Rehemtulla, A., Kozlov, S. V. . ATM Kinase: Methods and Protocols. , 97-111 (2017).
  8. Kondo, A., et al. Longitudinal assessment of regional directed delivery in a rodent malignant glioma model. J Neurosurg Pediatr. 4 (6), 592-598 (2009).
  9. Badr, C. E., Badr, C. E. . Bioluminescent Imaging: Methods and Protocols. , 1-18 (2014).
  10. Shcherbakova, D. M., Verkhusha, V. V. Near-infrared fluorescent proteins for multicolor in vivo imaging. Nat Meth. 10 (8), 751-754 (2013).
  11. Filonov, G. S., et al. Bright and stable near-infrared fluorescent protein for in vivo imaging. Nat Biotech. 29 (8), 757-761 (2011).
  12. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat. Protocols. 1 (1), 241-245 (2006).
  13. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of Specific Cell Population by Fluorescence Activated Cell Sorting (FACS). J. Vis. Exp. (41), e1546 (2010).
  14. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J Vis Exp. (47), (2011).
  15. Cetin, A., Komai, S., Eliava, M., Seeburg, P. H., Osten, P. Stereotaxic gene delivery in the rodent brain. Nat. Protocols. 1 (6), 3166-3173 (2007).
  16. Benitez, J. A., et al. PTEN regulates glioblastoma oncogenesis through chromatin-associated complexes of DAXX and histone H3.3. Nature Communications. 8, 15223 (2017).
  17. Kirschner, S., et al. Imaging of Orthotopic Glioblastoma Xenografts in Mice Using a Clinical CT Scanner: Comparison with Micro-CT and Histology. PLOS ONE. 11 (11), e0165994 (2016).
  18. Mannheim, J. G., et al. Standardization of Small Animal Imaging-Current Status and Future Prospects. Molecular Imaging and Biology. , (2017).
  19. Engblom, C., et al. Osteoblasts remotely supply lung tumors with cancer-promoting SiglecFhigh neutrophils. Science. 358 (6367), (2017).
  20. Lauber, D. T., et al. State of the art in vivo imaging techniques for laboratory animals. Laboratory Animals. 51 (5), 465-478 (2017).
  21. Zanca, C., et al. Glioblastoma cellular cross-talk converges on NF-κB to attenuate EGFR inhibitor sensitivity. Genes & Development. 31 (12), 1212-1227 (2017).
  22. Villa, G. R., et al. An LXR-Cholesterol Axis Creates a Metabolic Co-Dependency for Brain Cancers. Cancer Cell. 30 (5), 683-693 (2016).
  23. Liu, F., et al. EGFR Mutation Promotes Glioblastoma through Epigenome and Transcription Factor Network Remodeling. Molecular Cell. 60 (2), 307-318 (2015).
check_url/kr/57448?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Benitez, J. A., Zanca, C., Ma, J., Cavenee, W. K., Furnari, F. B. Fluorescence Molecular Tomography for In Vivo Imaging of Glioblastoma Xenografts. J. Vis. Exp. (134), e57448, doi:10.3791/57448 (2018).

View Video