Summary

Молекулярные томография флуоресценции для изображений в Vivo ксенотрасплантатов глиобластомы

Published: April 26, 2018
doi:

Summary

Внутричерепных инъекций ортотопическая опухолевых клеток был использован в исследовании рака учиться биология опухоли мозга, прогрессии, эволюция и терапевтические реакции. Здесь мы представляем флуоресценции молекулярной томография ксенотрасплантатов опухоль, которая обеспечивает реального времени прижизненной визуализации и количественная оценка опухоль массы в доклинических глиобластома модели.

Abstract

Tumorigenicity — это возможность раковых клеток сформировать опухоль массы. Широко используется подход, чтобы определить, если клетки онкогенной — путем инъекций иммунодефицитных мышей подкожно с раковые клетки и измерения массы опухоли после того, как она становится видна и ощутима. Инъекции ортотопическая раковых клеток цель представить ксенотрансплантата в микроокружения, который наиболее близко напоминает ткани происхождения опухоли изучается. Исследования рака мозга требует внутричерепных инъекции раковых клеток, чтобы позволить образования опухоли и анализа в уникальных микроокружения мозга. В естественных условиях изображений внутричерепных ксенотрасплантатов контролирует мгновенно масса опухоли orthotopically прижившимися мышей. Здесь мы приводим использование флуоресценции молекулярной томография (ДРМ) ксенотрасплантатов опухоль мозга. Раковые клетки сначала преобразованы с вблизи инфракрасного флуоресцентных белков и затем вводят в головном мозге мышей, с ослабленным иммунитетом. Животные, затем сканируются для получения количественной информации о опухоль массы течение длительного периода времени. Клетки предварительно маркировки позволяет экономически эффективной, воспроизводимые и надежной количественной оценки бремени опухоли в пределах каждой мыши. Мы устранить необходимость для инъекций изображений субстраты и таким образом сократить нагрузку на животных. Ограничение этого подхода представляет невозможность обнаружения очень малых масс; Однако она имеет лучшее разрешение для больших масс, чем другие методы. Он может применяться для оценки эффективности лечения наркомании или генетические изменения линий клеток глиомы и пациент, полученных образцов.

Introduction

Рак является одной из ведущих причин смертей, связанных с болезнью, в людей в промышленно развитых странах. С чрезвычайно высокой погибших срочно необходимы новые методы лечения. Глиобластомы мультиформной (GBM) является чрезвычайно смертоносного тип рака мозга, состоящий из разнородных популяций мозга опухоль, стромы и иммунных клеток. Согласно реестра Центральный мозг опухоль из США частота первичных злокачественных и доброкачественных опухолей головного мозга составляет около 22 случаев на 100 000 живорождений. Ожидается, что примерно 11 000 новых случаев диагностируется в США в 2017 году1.

Доклинические исследования изучить вероятность наркотиков, процедуры или лечение эффективным до начала испытаний на людях. Одним из первых шагов лаборатории в доклинических исследованиях является идентификация потенциальных молекулярных целей на лечение с помощью раковые клетки, имплантированные в организме хозяина, определяется как человека ксенотрансплантата модели. В этом контексте внутричерепной мозга опухоль ксенотрансплантата модели с помощью пациент производные ксенотрасплантатов (PDXs) широко использовались для изучения биология опухоли мозга, прогрессии, эволюция и терапевтического ответа и совсем недавно для развития биомаркеров, наркотиков скрининг и персональной медицины2,3,4.

Один из наиболее доступных и неинвазивные в vivo imaging методы мониторинга внутричерепных ксенотрасплантатов является биолюминесценции изображений (BLI)5,6,,78. Однако некоторые ограничения BLI включают субстрата администрации и доступности, стабильность фермента, закалки и рассеяния во время визуализации приобретение9. Здесь мы приводим инфракрасный ДРМ как альтернативу визуализации метод мониторинга доклинические глиобластома модели. В этот метод, приобретение сигналов и количественной оценки интракраниально имплантированных PDXs, выражая ближней ИК-области флуоресцентный белок iRFP72010,11 (отныне называются FP720) или turboFP635 (отныне называются FP635), выполняется с ДРМ изображений системы. Используя технологию FMT, ортотопическая, опухоли могут быть мониторинг в естественных условиях до, во время или после лечения, неинвазивный, субстрат бесплатно и количественные образом для доклинических наблюдений.

Protocol

Использование экспериментальных исследований животных и инфекционных агентов, таких как человека передавать раковые клетки, требует предварительного одобрения программой институционального ухода за животными и институциональных биобезопасности Комитета. Этот протокол следует пр?…

Representative Results

Глиобластома клетки U87EGFRvIII (клетки U87 чрезмерно выражая EGF рецептор вариант III) были культивированный согласно шаг 1.2. Лентивирусы был подготовлен и очищенный согласно шагу 1.1. Вирусная концентрация определяется p24 анализа ELISA. Клетки были преобразованы с человека, перев…

Discussion

Опухоль ксенотрасплантатов широко использовались в раковых исследований и разработан ряд устоявшихся методов обработки изображений: BLI; Магнитно-резонансная томография (МРТ); Позитронно-эмиссионная томография (ПЭТ), компьютерная томография (КТ); ДРМ. Каждый из этих подходов поставляет…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим д-р Фредерик Lang, MD Anderson Cancer Center для GBM-PDX-neurospheres. Эта работа была поддержана поражение GBM исследований совместное, филиал Национального мозга опухоль общества (Frank Furnari), R01-NS080939 (Frank Furnari), Джеймс S. McDonnell фонд (Frank Furnari); Хорхе Бенитес был поддержан награду от Американской ассоциации опухоли мозга (ABTA); Ciro Zanca частично поддерживается докторантура стипендий американский-итальянский фонд рака. Фрэнк Furnari получает зарплату и дополнительную поддержку от Института Людвига для исследований рака.

Materials

DMEM/High Glucose  HyClone/GE SH30022.1
DMEM/F12 1:1  Gibco 11320-082
FBS HyClone/GE SH30071.03
Accutase Innovative cell technologies AT-104
Trypsin HyClone/GE SH30236.01
B27 supplement Gibco 17504044
human recombinant EGF  Stemcell Technologies 2633
human recombinant FGF Stemcell Technologies 2634
DPBS Corning 21-031-00
FACS tubes Falcon 352235
DAPI ThermoFisher Scientific 62248
Blasticidin ThermoFisher Scientific A1113903
p24 ELISA  Clontech 632200
Xylazine Akorn NDC 59399-110-20
Ketamine Zoetis NADA 043-403 Controlled substance
Ointment Dechron NDC 17033-211-38
Absorbable suture CpMedical VQ392
5 ul syringe Hamilton 26200-U Catalog number as sold by Sigma-Aldrich
Cell Sorter Sony SH8007
Mouse stereotaxic frame  Stoelting 51730
Motorized stereotaxic injector Stoelting 53311
Micromotor hand-held drill Foredom K1070
Mouse warming pad  Ken Scientific Corporation TP-22G
Fluorescence Tomography System  PerkinElmer FMT 2500 XL
TrueQuant Imaging Software  Perkin Elmer  7005319
Ultra-centrifuge Optima L-80 XP Beckman Coulter 392049
Tissue Culture 100mm Dishes Olympus Plastics 25-202
Tissue Culture 150mm Dishes Olympus Plastics 25-203
Tissue Culture Flasks T75 Corning 430720U
50 mL conical tubes Corning 430290
15 mL conical tubes Olympus Plastics 28-101
Centrifuge Avanti J-20 Beckman Coulter J320XP-IM-5
Tube, Polypropylene, Thinwall, 5.0 mL Beckman Coulter 326819
Tube, Thinwall, Polypropylene, 38.5 mL, 25 x 89 mm Beckman Coulter 326823
Athymic nude mice Charles River Laboratories Strain Code  490 (Homozygous) Prior approval by the Institutional Animal Care Program and by the Institutional Biosafety Committee required.   

References

  1. Ostrom, Q. T., et al. CBTRUS Statistical Report: Primary Brain and Other Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United States in 2009-2013. Neuro-Oncology. 18 (suppl_5), v1-v75 (2016).
  2. Pauli, C., et al. Personalized In Vitro and In Vivo Cancer Models to Guide Precision Medicine. Cancer Discovery. 7 (5), 462-477 (2017).
  3. Stewart, E. L., et al. Clinical Utility of Patient-Derived Xenografts to Determine Biomarkers of Prognosis and Map Resistance Pathways in EGFR-Mutant Lung Adenocarcinoma. Journal of Clinical Oncology. 33 (22), 2472-2480 (2015).
  4. Gao, H., et al. High-throughput screening using patient-derived tumor xenografts to predict clinical trial drug response. Nat Med. 21 (11), 1318-1325 (2015).
  5. Ozawa, T., James, C. D. Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (41), e1986 (2010).
  6. Kondo, A., et al. An experimental brainstem tumor model using in vivo bioluminescence imaging in rat. Child’s Nervous System. 25 (5), 527-533 (2009).
  7. Nyati, S., Young, G., Ross, B. D., Rehemtulla, A., Kozlov, S. V. . ATM Kinase: Methods and Protocols. , 97-111 (2017).
  8. Kondo, A., et al. Longitudinal assessment of regional directed delivery in a rodent malignant glioma model. J Neurosurg Pediatr. 4 (6), 592-598 (2009).
  9. Badr, C. E., Badr, C. E. . Bioluminescent Imaging: Methods and Protocols. , 1-18 (2014).
  10. Shcherbakova, D. M., Verkhusha, V. V. Near-infrared fluorescent proteins for multicolor in vivo imaging. Nat Meth. 10 (8), 751-754 (2013).
  11. Filonov, G. S., et al. Bright and stable near-infrared fluorescent protein for in vivo imaging. Nat Biotech. 29 (8), 757-761 (2011).
  12. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat. Protocols. 1 (1), 241-245 (2006).
  13. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of Specific Cell Population by Fluorescence Activated Cell Sorting (FACS). J. Vis. Exp. (41), e1546 (2010).
  14. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J Vis Exp. (47), (2011).
  15. Cetin, A., Komai, S., Eliava, M., Seeburg, P. H., Osten, P. Stereotaxic gene delivery in the rodent brain. Nat. Protocols. 1 (6), 3166-3173 (2007).
  16. Benitez, J. A., et al. PTEN regulates glioblastoma oncogenesis through chromatin-associated complexes of DAXX and histone H3.3. Nature Communications. 8, 15223 (2017).
  17. Kirschner, S., et al. Imaging of Orthotopic Glioblastoma Xenografts in Mice Using a Clinical CT Scanner: Comparison with Micro-CT and Histology. PLOS ONE. 11 (11), e0165994 (2016).
  18. Mannheim, J. G., et al. Standardization of Small Animal Imaging-Current Status and Future Prospects. Molecular Imaging and Biology. , (2017).
  19. Engblom, C., et al. Osteoblasts remotely supply lung tumors with cancer-promoting SiglecFhigh neutrophils. Science. 358 (6367), (2017).
  20. Lauber, D. T., et al. State of the art in vivo imaging techniques for laboratory animals. Laboratory Animals. 51 (5), 465-478 (2017).
  21. Zanca, C., et al. Glioblastoma cellular cross-talk converges on NF-κB to attenuate EGFR inhibitor sensitivity. Genes & Development. 31 (12), 1212-1227 (2017).
  22. Villa, G. R., et al. An LXR-Cholesterol Axis Creates a Metabolic Co-Dependency for Brain Cancers. Cancer Cell. 30 (5), 683-693 (2016).
  23. Liu, F., et al. EGFR Mutation Promotes Glioblastoma through Epigenome and Transcription Factor Network Remodeling. Molecular Cell. 60 (2), 307-318 (2015).
check_url/kr/57448?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Benitez, J. A., Zanca, C., Ma, J., Cavenee, W. K., Furnari, F. B. Fluorescence Molecular Tomography for In Vivo Imaging of Glioblastoma Xenografts. J. Vis. Exp. (134), e57448, doi:10.3791/57448 (2018).

View Video