Summary

जीन लक्षित यादृच्छिक Mutagenesis का चयन करने के लिए Heterochromatin-स्थिर Proteasome म्यूटेंट विखंडन खमीर में

Published: May 15, 2018
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Summary

यह लेख विखंडन खमीर में एक लक्ष्य जीन के यादृच्छिक mutagenesis के लिए एक विस्तृत पद्धति का वर्णन है । एक उदाहरण के रूप में, हम लक्ष्य rpt4 +, जो 19S proteasome के एक उपइकाई सांकेतिक शब्दों में बदलना, और स्क्रीन उत्परिवर्तनों कि heterochromatin अस्थिर करने के लिए ।

Abstract

यादृच्छिक एक लक्ष्य जीन के mutagenesis सामांयतः उत्परिवर्तनों कि वांछित phenotype उपज की पहचान करने के लिए प्रयोग किया जाता है । तरीकों कि यादृच्छिक mutagenesis, त्रुटि प्रवण पीसीआर को प्राप्त करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है की एक विविध पूल म्यूटेंट (यानी, एक उत्परिवर्ती पुस्तकालय) पैदा करने के लिए एक सुविधाजनक और कुशल रणनीति है । त्रुटि-प्रवण पीसीआर पसंद की विधि है जब एक शोधकर्ता एक पूर्व निर्धारित क्षेत्र, जैसे एक जीन की कोडिंग क्षेत्र के रूप में बदलना चाहता है, जबकि अंय जीनोमिक क्षेत्रों छोड़ने अप्रभावित । उत्परिवर्ती पुस्तकालय त्रुटि-प्रवण पीसीआर द्वारा परिलक्षित होता है के बाद, यह एक उपयुक्त प्लाज्मिड में क्लोन किया जाना चाहिए । त्रुटि प्रवण पीसीआर द्वारा उत्पन्न पुस्तकालय का आकार क्लोनिंग कदम की दक्षता से विवश है ।. हालांकि, विखंडन खमीर में, Schizosaccharomyces pombe, क्लोनिंग कदम एक अत्यधिक कुशल एक कदम फ्यूजन पीसीआर के उपयोग के लिए परिवर्तन के लिए निर्माण उत्पंन करने के द्वारा प्रतिस्थापित किया जा सकता है । वांछित phenotypes के म्यूटेंट उपयुक्त पत्रकारों का उपयोग कर चुने जा सकते हैं । यहां, हम विस्तार से इस रणनीति का वर्णन, एक उदाहरण के रूप में ले, एक संवाददाता centromeric heterochromatin में डाला ।

Introduction

आगे जेनेटिक्स एक शास्त्रीय विधि है जिसमें शोधकर्ताओं ने स्वाभाविक रूप से होने वाली म्यूटेंट की तलाश है कि एक विशेष phenotype प्रदर्शन, और आनुवंशिक विश्लेषण करते हैं । रिवर्स आनुवंशिकी में, उत्परिवर्तनों ब्याज की एक जीन में पेश कर रहे है और phenotype की जांच की है । उत्तरार्द्ध मामले में, एक लक्ष्य जीन के यादृच्छिक mutagenesis अक्सर म्यूटेंट के एक पूल है कि बाद में इस तरह के तापमान संवेदनशीलता या बदल एंजाइमी गतिविधि के रूप में वांछित phenotypes, के लिए चुना जाता है उत्पंन किया जाता है । यादृच्छिक mutagenesis प्राप्त करने के लिए विभिन्न विधियों का उपयोग किया जा सकता है, जिसमें त्रुटि-प्रवण पीसीआर1; यूवी विकिरण2; रासायनिक mutagens, जैसे एथिल methanesulfonate (ईएमएस) या नाइट्रस एसिड; ऐसे उन पर व्यक्त mutD5 4के रूप में अस्थाई रूपांतरक उपभेदों, का उपयोग करें; और डीएनए फेरबदल5.

यहां, हम एक रिवर्स आनुवंशिकी रणनीति जिसमें हम त्रुटि प्रवण पीसीआर का उपयोग करने के लिए विखंडन खमीर में एक लक्ष्य जीन के लिए उत्परिवर्ती पूल उत्पंन का वर्णन । के रूप में एक अपने नाम से लगता है कि हो सकता है, इस विधि जानबूझकर पीसीआर के दौरान त्रुटियों को शुरू करने से उत्परिवर्तनों उत्पंन करता है । अन्य mutagenesis तरीकों के विपरीत, त्रुटि प्रवण पीसीआर उपयोगकर्ता mutagenized होने के लिए क्षेत्र को परिभाषित करने के लिए अनुमति देता है । यह एक प्रोटीन के समारोह का अध्ययन करने के प्रयासों में यह विशेष रूप से उपयोगी बनाता है/

इस यादृच्छिक mutagenesis प्रक्रिया को प्रदर्शित करने के लिए, हम इस के साथ साथ rpt4 +का उपयोग करें, जो 19S proteasome उपइकाई encodes एक उदाहरण के रूप में । Rpt4 विखंडन खमीर6,7,8,9, और प्रोटियोलिसिस में एक दोष के अलावा अंय जीवों में प्रोटियोलिसिस-स्वतंत्र कार्य किया है दिखाया गया है अप्रत्यक्ष प्रभाव में फेरबदल के कारण हो सकता है प्रोटीन स्तर. हम इसलिए, म्यूटेंट के लिए जांच की है कि प्रोटियोलिसिस-स्वतंत्र परिवर्तन ट्रिगर, heterochromatin पर proteasome के समारोह की छानबीन के लक्ष्य के साथ ।

त्रुटि प्रवण पीसीआर किसी भी जीन क्षेत्र में स्थान है जिस पर प्राइमरों बांध ट्यूनिंग द्वारा लागू किया जा सकता है । म्यूटेंट कि वांछित phenotypic परिवर्तन प्रदर्शन उचित पत्रकारों के साथ पहचाना जा सकता है । यहां, हम एक ade6 + centromere 1 बाहरी दोहराने (ओटीआर) क्षेत्र10में डाला रिपोर्टर का उपयोग किया । गठित heterochromatin इस क्षेत्र में11है, तो ade6 + रिपोर्टर जंगली प्रकार की हालत में मौन है का गठन किया है; यह लाल कालोनियों से संकेत मिलता है10. एक उत्परिवर्तन है कि centromere में गठित heterochromatin को अस्थिर ade6 + रिपोर्टर, जो सफेद कालोनियों के रूप में visualized है की अभिव्यक्ति के लिए नेतृत्व करेंगे ।

Protocol

1. मीडिया की तैयारी खुराक के साथ खमीर निकालने तैयार (हां), हां बिना adenine (हां कम Ade), Pombe ग्लूटामेट मध्यम (पीएमजी12), और पीएमजी बिना adenine (पीएमजी-Ade) के घटकों को मिलाकर के रूप में 1 तालिकामें वर्णित ह?…

Representative Results

चित्रा 1 में वर्णित प्रक्रियाओं का पालन करते हुए अधिग्रहित Rpt4 म्यूटेंट को कालोनियों के रंगों का आंकलन कर विश्लेषण किया जा सकता है । कालोनियों के रंग चित्रा 2में कम सेल…

Discussion

त्रुटि-प्रवण पीसीआर के माध्यम यादृच्छिक mutagenesis एक दिए गए क्षेत्र में म्यूटेंट के एक विविध पूल पैदा करने के लिए एक शक्तिशाली उपकरण है । यह तकनीक विशेष रूप से अध्ययन के लिए उपयोगी है जो किसी विशिष्ट परिस्थ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस परियोजना के लिए फंडिंग सहायता को बेसिक साइंस रिसर्च प्रोग्राम द्वारा नेशनल रिसर्च फाउंडेशन ऑफ कोरिया (एनआरएफ) द्वारा वित्त पोषित विज्ञान एवं आईसीटी (2016R1A2B2006354) के माध्यम से प्रदान किया गया ।

Materials

1. Media
Glucose Sigma-Aldrich G8270-10KG
Yeast extract BD Biosciences 212720
L-Leucine JUNSEI 87070-0310
Adenine sulfate ACR 16363-0250
Uracil  Sigma-Aldrich U0750
L-Histidine Sigma-Aldrich H8125
KH2PO4 Sigma-Aldrich 1.05108.0050
NaCl JUNSEI 19015-0350
MgSO4•7H2O Sigma-Aldrich 63140
CaCl2 Sigma-Aldrich 12095
Potassium phthalate Sigma-Aldrich P6758-500g
Inositol Sigma-Aldrich I7508-50G
Biotin Sigma-Aldrich B4501-100MG
Boric Acid Sigma-Aldrich B6768-1KG
MnSO4 Sigma-Aldrich M7634-500G
ZnSO4•7H2 JUNSEI 83060-031
FeCl2•4H2O KANTO CB8943686
Sodium molybdate dihydrate YAKURI 31621
KI JUNSEI 80090-0301
CuSO4•5H2O YAKURI 09605
D-myo-inositol MP biomedicals 102052
Pantothenate YAKURI 26003
Nicotinic Acid Sigma-Aldrich N4126-500G
(NH4)2SO4  Sigma-Aldrich A4418-100G
Agarose Biobasic D0012
G418, geneticin LPS G41805
2. Enzyme reactions
PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase Aglient 600380 For site-directed mutagenesis
GeneMorphII Random mutagenesis Kit Aglient 200500 For error-prone PCR
Phusion High-Fidelity DNA Polymerase Thermo Fisher F-530L For fusion PCR
Ex Taq DNA Polymerase Takara RR001b For general PCR
BamH1 New England BioLabs R0136S
Xho1 New England BioLabs R0146S
Dpn1 New England BioLabs R0176S
3. Equipment
Velveteen square, black VWR 89033-116 For replica
Replica-plating tool VWR 25395-380 For replica
MicroPulser Electroporator Biorad 1652100  For fission yeast transformation
Electroporation Cuvettes, 0.2 cm gap Biorad 1652086  For fission yeast transformation
Thermal Cycler Bioer BYQ6078 For fusion PCR ramp reaction 

References

  1. Pritchard, L., Corne, D., Kell, D., Rowland, J., Winson, M. A general model of error-prone PCR. J Theor Biol. 234 (4), 497-509 (2005).
  2. Pfeifer, G. P., You, Y. H., Besaratinia, A. Mutations induced by ultraviolet light. Mutat Res. 571 (1-2), 19-31 (2005).
  3. Moreno, S., Klar, A., Nurse, P. Molecular genetic analysis of fission yeast Schizosaccharomyces pombe. Methods Enzymol. 194, 795-823 (1991).
  4. Selifonova, O., Valle, F., Schellenberger, V. Rapid evolution of novel traits in microorganisms. Appl Environ Microbiol. 67 (8), 3645-3649 (2001).
  5. Cohen, J. How DNA shuffling works. Science. 293 (5528), 237 (2001).
  6. Sahu, P. P., Sharma, N., Puranik, S., Chakraborty, S., Prasad, M. Tomato 26S Proteasome subunit RPT4a regulates ToLCNDV transcription and activates hypersensitive response in tomato. Sci Rep. 6, 27078 (2016).
  7. Xu, Q., Singer, R. A., Johnston, G. C. Sug1 modulates yeast transcription activation by Cdc68. Mol Cell Biol. 15 (11), 6025-6035 (1995).
  8. Bhat, K. P., et al. The 19S proteasome ATPase Sug1 plays a critical role in regulating MHC class II transcription. Mol Immunol. 45 (8), 2214-2224 (2008).
  9. Chang, C., et al. The Gal4 activation domain binds Sug2 protein, a proteasome component, in vivo and in vitro. J Biol Chem. 276 (33), 30956-30963 (2001).
  10. Ekwall, K., Cranston, G., Allshire, R. C. Fission yeast mutants that alleviate transcriptional silencing in centromeric flanking repeats and disrupt chromosome segregation. 유전학. 153 (3), 1153-1169 (1999).
  11. Grewal, S. I., Jia, S. Heterochromatin revisited. Nat Rev Genet. 8 (1), 35-46 (2007).
  12. Forsburg, S. L. . Forsburg Lab Recipes: Fission Yeast Media. , (2011).
  13. . . QIAquick PCR Purification Kit. , (2013).
  14. . . pBlueScript II Vector. , (2005).
  15. . . QIAquick Gel Extraction Kit. , (2013).
  16. . . QuickGene SP Kit Plasmid Kit II (SP-PL2). , (2016).
  17. . . PfuUltra High-fidelity DNA Polymerase. , (2004).
  18. . . Gibson Assembly Master Mix. , (2017).
  19. . . GeneMorph II Random Mutagenesis Kits. , (2012).
  20. . . Plasmid Plus Midi Kit. , (1999).
  21. Bahler, J., et al. Heterologous modules for efficient and versatile PCR-based gene targeting in Schizosaccharomyces pombe. Yeast. 14 (10), 943-951 (1998).
  22. Szewczyk, E., et al. Fusion PCR and gene targeting in Aspergillus nidulans. Nat Protoc. 1 (6), 3111-3120 (2006).
  23. Nurse, P. . Fission Yeast Handbook. , (2000).
  24. Seo, H. D., et al. The 19S proteasome is directly involved in the regulation of heterochromatin spreading in fission yeast. J Biol Chem. , (2017).
  25. Tang, N. H., et al. Generation and characterisation of temperature sensitive mutants of genes encoding the fission yeast spindle pole body. PeerJ Preprints. 5, e3377v3371 (2017).
  26. Rasooly, A., Weisz, A. In vitro antibacterial activities of phloxine B and other halogenated fluoresceins against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother. 46 (11), 3650-3653 (2002).
  27. Wilson, D. S., Keefe, A. D. Random mutagenesis by PCR. Curr Protoc Mol Biol. , (2001).
check_url/kr/57499?article_type=t

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Cite This Article
Seo, H. D., Lee, D. Gene-targeted Random Mutagenesis to Select Heterochromatin-destabilizing Proteasome Mutants in Fission Yeast. J. Vis. Exp. (135), e57499, doi:10.3791/57499 (2018).

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