Summary

En invasiv metode for aktivering af musen Dentate Gyrus af højfrekvente Stimulation

Published: June 02, 2018
doi:

Summary

Denne protokol viser, hvordan du konfigurerer en pålidelig HFS metode i mus. Neuroner i hele den hippocampus dentate gyrus stimuleres elektrisk af HFS direkte og indirekte in vivo. Neuronal aktivitet og molekylær signalering er undersøgt af c-fos og Notch1 immunfluorescent farvning, henholdsvis; neurogenese er kvantificeret ved bromodeoxyuridine mærkning assay.

Abstract

Elektrisk højfrekvente stimulation (HFS), ved hjælp af implanterede elektroder rettet mod forskellige områder af hjernen, er blevet bevist som en effektiv behandling for forskellige neurologiske og psykiatriske lidelser. HFS i den dybe region af hjernen, også kaldet dyb brain stimulation (DBS), bliver stadig vigtigere i kliniske forsøg. De seneste fremskridt inden for høj-frekvens DBS (HF-DBS) kirurgi er begyndt at sprede mulighed for at udnytte denne invasive teknik til andre situationer, som behandling for svær depression lidelse (MDD), obsessiv-kompulsiv sygdom (OCD), og så på.

Trods disse ekspanderende indikationer stadig de underliggende mekanismer af de gavnlige virkninger af HF-DBS gådefulde. For at løse dette spørgsmål, er en metode at bruge implanterede elektroder, der sparsomt aktiverer distribuerede delpopulationer af neuroner af HFS. Det er blevet rapporteret, at HFS i forreste kernen i thalamus kunne bruges til behandling af refraktær epilepsi i klinikken. De underliggende mekanismer kan være relateret til den øgede neurogenese og ændret neuronal aktivitet. Vi er derfor interesserede i at udforske de fysiologiske ændringer ved påvisning af neuronal aktivitet samt neurogenese i mus dentate gyrus (GD) før og efter HFS behandling.

I dette manuskript beskriver vi metoder til HFS at målrette aktivering af GD i mus, direkte eller indirekte og på en måde, akut eller kronisk. Derudover beskriver vi en detaljeret protokol for forberedelse af hjernen skiver for c-fos og Notch1 immunfluorescent farvning for at overvåge den neuronal aktivitet og signalering aktivering og bromodeoxyuridine (BrdU) mærkning for at bestemme den neurogenese efter HF-DBS induktion. Aktivering af neuronal aktivitet og neurogenese efter HF-DBS behandling giver direkte neurobiologiske beviser og potentielle terapeutiske fordele. Denne metode kan især, ændres og anvendes for at målrette andre interesserede hjernen såsom de basale ganglier og subthalamic regioner for specifikke hjernen lidelser i klinikken.

Introduction

HF-DBS er en neurokirurgiske teknologi til elektrisk stimulation i hjernen, som er blevet udviklet siden 1870s1. I slutningen af 1980 ‘ erne, HFS blev først brugt som en potentiel terapeutisk intervention for Parkinsons sygdom og andre bevægelse lidelser2. I de sidste par årtier, har HF-DBS været mere udbredt i behandlingen af hjernen lidelser, der er i øjeblikket uhelbredelige af en traditionel terapeutisk strategi. Især på grund af en nøjagtighed forbedring af HFS elektrode, yderst effektive resultater og minimale bivirkninger, antallet af hjernen lidelser behandles af HF-DBS steget betydeligt i seneste årtier3,4, 5. For eksempel, er HF-DBS blevet godkendt af US Food and Drug Administration (FDA) til behandling af Parkinsons sygdom (PD), Alzheimers type demens, væsentlige tremor og andre typer af bevægelse lidelser2,6, 7. i PD patienter, Dopaminerg medicin er reduceret op til 50% i løbet af HF-DBS8. Ud over den vellykkede behandling af bevægelsesforstyrrelser, har HF-DBS også vist sin kraftfulde effekter i behandlingen af psykiatriske sygdomme i klinikken, og for kognitive augmentation som godt2,9, 10 , 11. det skal bemærkes, at forskning af HFS til behandling af andre psykiatriske lidelser er i forskellige stadier, tilbyder meget løfte om at patienter12.

Selv om mange undersøgelser har vist, at en fokal HFS har både lokale og eksterne virkninger i hele hjernen13, stadig de neurologiske og molekylære mekanismer af virkningerne undvigende2,14. I klinikken anvendes terapeutiske HF-DBS normalt på en langsigtet måde til behandling af Parkinsons sygdom og kroniske smerter, etc. mange udtalelser er rejst for at forklare forbedring genereret af en HF-DBS behandling, blandt hvilke en mulighed at HFS aktuelt modulerer neuronal netværksaktivitet, sandsynligvis af en gentagne depolarisering af axoner i nærheden af den implanterede HFS elektrode. Eller HF-DBS kan ændre decharge rate af output-neuroner og de planlagte mål. Også HF-DBS kan føre til langsigtede synaptic ændringer, herunder langsigtede potensering (LTP) og langvarig depression (LTD), som kan bidrage til en symptomatisk forbedring. Så langt, det er stadig uklart om HFS influences de molekylære nøglebegivenheder, der regulere cellulære processer såsom som voksen neurogenese in vivo. Flere linjer af undersøgelser har vist, at HFS i gnavere kunne efterligne lignende neurale svar af klinisk anvendt DBS15,16. For at forstå de underliggende cellulære mekanismer af HF-DBS, i denne undersøgelse, definere vi først en i vivo HFS metode i mus i en akut (én dag) eller kronisk (fem dage) måde. For det andet, vi oprette en analyse metode til at bestemme ændringen af neuronal aktivitet og neurogenese efter en HF-DBS levering.

Neuronal produktion fra neurale stamceller er rigelige i den embryonale udvikling men fortsætter gennem hele voksenlivet, er at hippocampus subgranular zone en af de vigtigste områder, hvor neurogenese opstår. Processen med neurogenese påvirkes af mange fysiologiske og patologiske faktorer. I visse epileptiske tilfælde er den hippocampus neurogenese drastisk nedsat17,18. Derudover kunne et enkelt elektrochok behandling betydeligt øge neuronal produktionen i dentate gyrus19. Disse observationer tyder på at den elektrofysiologiske aktivitet spiller en afgørende rolle i reguleringen af voksen neurogenese og synaptisk plasticitet i hippocampus neuroner. Derfor, at yderligere demonstrere virkningerne af HF-DBS neuronal aktivitet og neurogenese, vi først gennemføre en immunfarvning analyse af den umiddelbare tidlig gen (IEG) c-fos som er en velkendt markør af kortsigtede neuronal aktivitet som følge af opleve20. Notch1 signalering er også opdaget for at overvåge signaling aktivering efter HFS levering21,22. Desuden, vi opdager også neuronal produktion af en BrdU mærkning analyse efter HF-DBS induktion i forskellige manerer, selvom BrdU farvning kan også være en markør for gliogenesis.

I den foreliggende undersøgelse er to HFS metoder tilpasset til at målrette aktivisering hippocampus GD direkte og indirekte. Elektroden er implanteret i GD direkte eller implanteres i mediale perforant sti (PP), som sender projektioner til at aktivere GD neuroner. For HF-DBS induktion præsenteres en programmerbar stimulator for en kontinuerlig stimulering via den faste elektrode på musen hoved. For at fastslå virkningerne af HFS på neuronal aktivering og neurogenese, vi opdager udtryk af c-fos og Notch1 af immunfluorescent farvning og antallet af BrdU-indarbejdet positive neuroner i regionen hippocampus GD for henholdsvis efter HFS behandling. Især, sammenlignes virkningerne af HF-DBS på neurogenese i Generaldirektoratet for mellem en akut og en kronisk stimulering måde, eller mellem en direkte og en indirekte stimulering måde, henholdsvis.

Protocol

Animalske procedurer eksperimentelle institutionelle retningslinjerne i Beijing Institute of grundlæggende Medical Sciences (Beijing, Kina) og de kinesiske statslige forskrifter for pleje og anvendelse af forsøgsdyr. Mus (voksne mandlige, 26 ~ 30 g) blev opstaldet og holdes ved en konstant temperatur på 23 ° C, med vand og mad ad libitum, under en 12-h lys/12-h mørke cyklus (lys på klokken 7:00). Alle eksperimentelle procedurer blev udført i løbet af lys cyklus. 1. kirurgisk for…

Representative Results

Efter HF-DBS stimulation til hippocampus GD underregionen direkte eller PP underregionen at aktivere GD indirekte via indsat elektroder ved hjælp af de stereotactic justeringer, gnavere var anesthetized med pentobarbital og stikprøven 3 h efter den sidste HF-DBS stimulation for c-fos og Notch1 immunfarvning. For BrdU farvning, 36 timer efter den sidste BrdU injektion efter 1 dags eller 5 dage af HF-DBS stimulation, var gnavere anesthetized med pentobarbital til forbere…

Discussion

HF-DBS teknik har været meget anvendt som et kraftfuldt værktøj til behandling af mange neurologiske lidelser siden 1990s. Hidtil er den skelsættende arbejde af HF-DBS til behandling af Parkinsons sygdom og væsentlige tremor, som har tiltrukket sig megen opmærksomhed og interesse både i klinikken og videnskabelige samfund. Der er forskellige typer af igangværende HF-DBS undersøgelser af mange grupper for HF-DBS terapeutisk anvendelse i visse neurologiske og psykiatriske lidelser32,</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Støttet af National Natural Science Foundation i Kina tilskud 31522029, 31770929 og 31371149 (til Haitao Wu), programmere 973 (2014CB542203) fra den statslige centrale udviklingsprogram for grundforskning i Kina (til Haitao Wu), og Grant Z161100000216154 fra den Beijing Municipal videnskab og teknologi Kommissionen (til Haitao Wu). Forfatterne takke alle medlemmerne af Haitao Wu laboratorium for deres opmuntring og diskussioner. Forfatterne er meget taknemmelig for Zhenwei Liu for hans hjælp med fejlsøgning apparatet.

Materials

Brain stereotaxic instrument Stoelting 51730D Stereotactic intracranial implantation for mouse
Stimulator A-M systems Model 3800 MultiStim 8-Channel programmable stimulator
Dental driller Saeshin Precision Co., Ltd STRONG 90 For drilling and crainiotomy 
Burr Meisinger HM1 005# For drilling and crainiotomy 
Digidata 1550 Digitizer Molecular Devices AXON 1550 High-resolution data acquisition
Cryotome Thermo Fisher Scientific Thermo Cryotome FSE Cutting frozen sections of specimens
Confocal microscope Olympus FV-1200 Japan, with 20x Objective (NA 0.45)
Mouse surgery tools F.S.T. 14084-08,11254-20,16109-14 Scissors, forceps, bone cutter, holders etc.
Pentobarbital sodium R&D systems 4579 20-50mg/kg for i.p. injection
Penicillin G  Sigma-Aldrich P3032 75,000 U for i.m. injection
Carprofen Sigma-Aldrich SML1713 5-10mg/kg, for s.c. injection
4% Paraformaldehyde (PFA) Beijing Solarbio Sci-Tech Co.  P1110 stocking solution for tissue fixation
Phosphate buffer (PBS) Invitrogen 10010023 pH7.4, 500ml in stocking
Tissue-Tek O.C.T. compound Sakura 4583 Formulation of water-soluble glycols and resins
anti-BrdU antibody Abcam ab6326 Dilutions:1/800
anti-c-fos antibody Abcam ab209794 Dilutions:1/500
Goat Anti-Rabbit IgG (Alexa Fluor 568) Thermo Fisher Scientific A11036 Dilutions:1/500
Donkey Anti-Rat IgG (Alexa Fluor 488) Jackson ImmunoResearch 712-546-150 Dilutions:1/500
Antifade mounting medium with DAPI Vector Laboratories H-1200 Counterstaining with DAPI
anti-Notch1 antibody (C-20) Santa Cruz Biotech sc-6014 Dilutions:1/50
Donkey Anti-Goat IgG (Alexa Fluor 488) Abcam ab150073 Dilutions:1/1000

References

  1. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep brain stimulation. Annual Review of Neuroscience. 29, 229-257 (2006).
  2. Lozano, A. M., Lipsman, N. Probing and regulating dysfunctional circuits using deep brain stimulation. Neuron. 77 (3), 406-424 (2013).
  3. Kohl, S., et al. Deep brain stimulation for treatment-refractory obsessive compulsive disorder: a systematic review. BMC Psychiatry. 14, 214 (2014).
  4. Schlaepfer, T. E., Bewernick, B. H., Kayser, S., Madler, B., Coenen, V. A. Rapid effects of deep brain stimulation for treatment-resistant major depression. Biological Psychiatry. 73 (12), 1204-1212 (2013).
  5. Fisher, R., et al. Electrical stimulation of the anterior nucleus of thalamus for treatment of refractory epilepsy. Epilepsia. 51 (5), 899-908 (2010).
  6. Greenberg, B. D., et al. Deep brain stimulation of the ventral internal capsule/ventral striatum for obsessive-compulsive disorder: worldwide experience. Molecular Psychiatry. 15 (1), 64-79 (2010).
  7. Kalia, S. K., Sankar, T., Lozano, A. M. Deep brain stimulation for Parkinson’s disease and other movement disorders. Current Opinion in Neurology. 26 (4), 374-380 (2013).
  8. Garcia, L., D’Alessandro, G., Bioulac, B., Hammond, C. High-frequency stimulation in Parkinson’s disease: more or less. Trends in Neurosciences. 28 (4), 209-216 (2005).
  9. Guercio, L. A., Schmidt, H. D., Pierce, R. C. Deep brain stimulation of the nucleus accumbens shell attenuates cue-induced reinstatement of both cocaine and sucrose seeking in rats. Behavioural Brain Research. 281, 125-130 (2015).
  10. Bossert, J. M., Marchant, N. J., Calu, D. J., Shaham, Y. The reinstatement model of drug relapse: recent neurobiological findings, emerging research topics, and translational research. Psychopharmacology (Berlin). 229 (3), 453-476 (2013).
  11. Grubert, C., et al. Neuropsychological safety of nucleus accumbens deep brain stimulation for major depression: effects of 12-month stimulation. The World Journal of Biological Psychiatry. 12 (7), 516-527 (2011).
  12. Lyons, M. K. Deep brain stimulation: current and future clinical applications. Mayo Clinic Proceedings. 86 (7), 662-672 (2011).
  13. McIntyre, C. C., Hahn, P. J. Network perspectives on the mechanisms of deep brain stimulation. Neurobiology of Disease. 38 (3), 329-337 (2010).
  14. Kringelbach, M. L., Green, A. L., Owen, S. L., Schweder, P. M., Aziz, T. Z. Sing the mind electric – principles of deep brain stimulation. European Journal of Neuroscience. 32 (7), 1070-1079 (2010).
  15. Toda, H., Hamani, C., Fawcett, A. P., Hutchison, W. D., Lozano, A. M. The regulation of adult rodent hippocampal neurogenesis by deep brain stimulation. Journal of Neurosurgery. 108 (1), 132-138 (2008).
  16. Selvakumar, T., Alavian, K. N., Tierney, T. Analysis of gene expression changes in the rat hippocampus after deep brain stimulation of the anterior thalamic nucleus. Journal of Visualized Experiments. (97), e52457 (2015).
  17. Hattiangady, B., Shetty, A. K. Implications of decreased hippocampal neurogenesis in chronic temporal lobe epilepsy. Epilepsia. 49, 26-41 (2008).
  18. Hattiangady, B., Rao, M. S., Shetty, A. K. Chronic temporal lobe epilepsy is associated with severely declined dentate neurogenesis in the adult hippocampus. Neurobiology of Disease. 17 (3), 473-490 (2004).
  19. Madsen, T. M., et al. Increased neurogenesis in a model of electroconvulsive therapy. Biological Psychiatry. 47 (12), 1043-1049 (2000).
  20. Feldman, L. A., Shapiro, M. L., Nalbantoglu, J. A novel, rapidly acquired and persistent spatial memory task that induces immediate early gene expression. Behavioral and Brain Functions. 6, 35 (2010).
  21. Feng, S., et al. Notch1 deficiency in postnatal neural progenitor cells in the dentate gyrus leads to emotional and cognitive impairment. The FASEB Journal. 31 (10), 4347-4358 (2017).
  22. Alberi, L., et al. Activity-induced Notch signaling in neurons requires Arc/Arg3.1 and is essential for synaptic plasticity in hippocampal networks. Neuron. 69 (3), 437-444 (2011).
  23. Halpern, C. H., Attiah, M. A., Tekriwal, A., Baltuch, G. H. A step-wise approach to deep brain stimulation in mice. Acta Neurochirurgica.(Wien). 156 (8), 1515-1521 (2014).
  24. Batra, V., Guerin, G. F., Goeders, N. E., Wilden, J. A. A General method for evaluating deep brain stimulation effects on intravenous methamphetamine self-administration. Journal of Visualized Experiments. (107), e53266 (2016).
  25. Fluri, F., Bieber, M., Volkmann, J., Kleinschnitz, C. Microelectrode guided implantation of electrodes into the subthalamic nucleus of rats for long-term deep brain stimulation. Journal of Visualized Experiments. (104), e53066 (2015).
  26. Resendez, S. L., et al. Visualization of cortical, subcortical and deep brain neural circuit dynamics during naturalistic mammalian behavior with head-mounted microscopes and chronically implanted lenses. Nature Protocols. 11 (3), 566-597 (2016).
  27. Paxinos, G., Franklin, K. The mouse brain in stereotaxic coordinates. The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates, 3rd edition. 28 (03), 6 (2007).
  28. McHugh, T. J., et al. Dentate gyrus NMDA receptors mediate rapid pattern separation in the hippocampal network. Science. 317 (5834), 94-99 (2007).
  29. Gonzalez, C., et al. Medial prefrontal cortex is a crucial node of a rapid learning system that retrieves recent and remote memories. Neurobiology of Learning and Memory. 103, 19-25 (2013).
  30. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).
  31. Tse, N., et al. The neuromuscular junction: measuring synapse size, fragmentation and changes in synaptic protein density using confocal fluorescence microscopy. Journal of Visualized Experiments. (94), e52220 (2014).
  32. Pizzolato, G., Mandat, T. Deep brain stimulation for movement disorders. Frontiers in Integrative Neuroscience. 6, 2 (2012).
  33. Tierney, T. S., Sankar, T., Lozano, A. M. Some recent trends and further promising directions in functional neurosurgery. Acta Neurochirurgica Supplement. 117 (117), 87-92 (2013).
  34. Laxton, A. W., et al. A phase I trial of deep brain stimulation of memory circuits in Alzheimer’s disease. Annals of Neurology. 68 (4), 521-534 (2010).
  35. Min, H. K., et al. Deep brain stimulation induces BOLD activation in motor and non-motor networks: an fMRI comparison study of STN and EN/GPi DBS in large animals. NeuroImage. 63 (3), 1408-1420 (2012).
  36. Kukurba, K. R., Montgomery, S. B. . RNA sequencing and analysis. 2015 (11), 951-969 (2015).
  37. Kawashima, T., Okuno, H., Bito, H. A new era for functional labeling of neurons: activity-dependent promoters have come of age. Frontiers in Neural Circuits. 8, 37 (2014).
  38. Liu, J., Solway, K., Messing, R. O., Sharp, F. R. Increased neurogenesis in the dentate gyrus after transient global ischemia in gerbils. Journal of Neuroscience. 18 (19), 7768-7778 (1998).
  39. Kuhn, H. G., Dickinson-Anson, H., Gage, F. H. Neurogenesis in the dentate gyrus of the adult rat: age-related decrease of neuronal progenitor proliferation. Journal of Neuroscience. 16 (6), 2027-2033 (1996).
check_url/kr/57857?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhao, Z., Wu, H. An Invasive Method for the Activation of the Mouse Dentate Gyrus by High-frequency Stimulation. J. Vis. Exp. (136), e57857, doi:10.3791/57857 (2018).

View Video