Summary

Isolatie van atriale Cardiomyocytes van een Rat Model van metabole syndroom-gerelateerde hartfalen met bewaarde ejectie Fractie

Published: July 26, 2018
doi:

Summary

Hier beschrijven we een geoptimaliseerd, Langendorff gebaseerde procedure voor de isolatie van eencellige atriale cardiomyocytes van een rat model van metabole syndroom-gerelateerde hartfalen met bewaarde ejectie Fractie. Een handmatige regulering van de intraluminale druk van cardiale Holten is geïmplementeerd om de opbrengst van functioneel intact myocytes geschikt voor excitatie-contractie-koppeling studies.

Abstract

In dit artikel beschrijven we een geoptimaliseerd, Langendorff gebaseerde procedure voor de isolatie van eencellige atriale cardiomyocytes (ACMs) van een rat model van metabool syndroom (MetS)-gerelateerde hartfalen met bewaarde ejectie fractie (HFpEF). De prevalentie van MetS-gerelateerde HFpEF stijgt en atriale hartziekten atriale remodelleren en boezemfibrilleren is gekoppeld zijn klinisch relevant als atriale remodelleren een onafhankelijke voorspeller voor mortaliteit is. Studies met geïsoleerde eencellige cardiomyocytes worden vaak gebruikt als aanvulling op de in vivo bevindingen te bevestigen. Bloedsomloop vaartuig rarefication en interstitiële weefsel fibrose vormen een potentieel beperkende factor voor de succesvolle eencellige isolatie van ACMs uit dierlijke modellen van deze ziekte.

Wij hebben deze kwestie behandeld door gebruik te maken van een apparaat staat handmatig het reguleren van de intraluminale druk van cardiale Holten tijdens de procedure van de isolatie, de opbrengst van morfologisch en functioneel intact ACMs aanzienlijk te verhogen. De verworven cellen kunnen worden gebruikt in een verscheidenheid van verschillende experimenten, zoals de celcultuur en functionele beeldvorming van de Calcium (d.w.z., excitatie-contractie-koppeling).

Wij bieden de onderzoeker met een stapsgewijze protocol, een lijst van geoptimaliseerde oplossingen, grondige instructies ter voorbereiding van de nodige apparatuur en een uitgebreide gids voor probleemoplossing. Terwijl de eerste uitvoering van de procedure zou nogal moeilijk zijn, kan een succesvolle aanpassing de lezer voor het uitvoeren van state-of-the-art ACM isolatie in een rat model van MetS-gerelateerde HFpEF voor een breed spectrum van experimenten.

Introduction

MetS b eschrijving van een cluster van risicofactoren voor diabetes mellitus type 2 en hart-en vaatziekten en een verhoogde arteriële bloeddruk, dyslipidemia (triglyceriden verhoogd en verlaagd van high-density lipoprotein cholesterol), verhoogd vasten glucose en centrale obesitas1. De wereldwijde prevalentie van MetS wordt geschat op 25-30% en de voortdurend stijgende2. HFpEF is een heterogene klinisch syndroom vaak geassocieerd met MetS. De cardiale remodelleren tijdens HFpEF en de voorafgaande fasen (d.w.z., Hypertensieve hartziekte) gaat ook gepaard met een verbouwing van de atria3. Verminderde contractiele functie en structurele veranderingen in de linkerboezem zijn geassocieerd met verhoogde mortaliteit, boezemfibrilleren en nieuwe-onset hartfalen4. Atriale remodelleren wordt gekenmerkt door veranderingen in het ion kanaal functie, Ca2 + homeostase, atriale structuur, fibroblast activering en weefsel fibrose5. Links atriale remodelleren in MetS-gerelateerde HFpEF en de bijbehorende onderliggende pathologische mechanismen zijn nog slecht begrepen en een meer diepgaand onderzoek vereist is. Dierlijke modellen hebben bewezen een waardevol instrument zijn en leiden tot vele ontwikkelingen op het gebied van atriale hartziekten6,,7,,8,9.

Studies met geïsoleerde eencellige cardiomyocytes worden vaak gebruikt als aanvulling op de in vivo bevindingen te bevestigen. Een isolatie, en de mogelijke latere celcultuur, zorgen voor het onderzoek van signalering van trajecten, Ionische kanaal stromingen en excitatie-contractie-koppeling. Cardiomyocytes onder fysiologische omstandigheden, niet verspreiden. De fusie tussen de transcriptionele regulerende sequenties atrial natriuretic factor en een simian 40 grote T virusantigeen in transgene muizen leidde tot de oprichting van de eerste vereeuwigd ACMs, AT-110genoemd. De verdere ontwikkeling van de cellen van de AT-1 gaf aanleiding tot HL-1 cellen, die niet kunnen alleen serieel worden gepasseerd maar ook contract spontaan11. Ze vertonen echter structurele en functionele verschillen in vergelijking met vers geïsoleerde cellen, zoals een minder georganiseerde ultrastructuur, een hoge voorkomen van de ontwikkeling van myofibrils11, en een hyperpolarisatie-geactiveerde innerlijke huidige12. Het isolement van ventriculaire cardiomyocytes (VCM) bij ratten en muizen uit een verscheidenheid van modellen is goed ingeburgerd13,14,15,16,17,18 , 19. in het algemeen de verwijderde hart is gemonteerd op een Langendorff apparatuur en retrogradely met een Ca2 +geperfundeerd-gratis buffer met spijsverteringsenzymen, zoals collagenases en proteasen. Calcium is vervolgens opnieuw op een stapsgewijze manier aan de fysiologische omstandigheden. Hoewel de protocollen die zijn gewijd aan het isolement van ACMs zijn beschikbaar van20,21, als gevolg van de toegenomen fibrose en druk-gerelateerde verschillen, is hun nut in ziekte modellen met atriale remodelleren echter beperkt.

In dit artikel, hebben we een protocol voor de isolatie van atriale eencellige cardiomyocytes van dieren die atriale remodelleert (dat wil zeggen, in het bijzonder voor de ZFS1 rat model voor MetS-gerelateerde HFpEF)22 vertonenuitgevoerd. Bestaande protocollen van de isolatie waren geoptimaliseerd en aangevuld met een eenvoudige, op maat gemaakte apparaat om te controleren en wijzigen van de intraluminale druk van de cardiale Holten, wat leidt tot hogere opbrengsten van morfologisch en functioneel intact cardiomyocytes. Het volgende protocol biedt de onderzoeker met een stapsgewijze gids, een gedetailleerde beschrijving van de op maat gemaakte apparatuur, een lijst van oplossingen, evenals een uitgebreide gids voor probleemoplossing.

Protocol

Alle experimenten werden goedgekeurd door de lokale ethische Commissie (TVA T0060/15 en T0003-15) en uitgevoerd in overeenstemming met de richtsnoeren voor de zorg en het gebruik van proefdieren (National Institute of Health, U.S.A.). Opmerking: Een vereenvoudigd stroomdiagram van de procedure is afgebeeld in Figuur 1. 1. hierbij Bereiden de buffers volgens tabel 1. <table border="1" fo:keep-together…

Representative Results

Op 21 weken leeftijd, kunnen 60-90% van levensvatbare ACMs (geschat zoals beschreven in stap 6.1), na de kalk opnieuw aanpassing (stap 5.4 – 5.7), worden geïsoleerd uit ZSF-1 zwaarlijvige ratten door deze methode (figuur 4A). Bij ratten, worden ACMs gekenmerkt door een andere en meer heterogene fenotype t.o.v. VCMs24,25. Figuur 4B toont een individuele ACM met bewaarde…

Discussion

Hier, we voor het eerst beschreven een protocol voor de isolatie van eencellige ACMs van een rat model van MetS-gerelateerde HFpEF die toont atriale remodelleert22gemarkeerd. De procedure is een unieke uitdaging als overmatig vetweefsel de chirurgische voorbereiding, evenals de cannulation van de aorta, steeds moeilijker maken kan. De gids voor probleemoplossing gegeven in tabel 2 adressen de meest voorkomende problemen van de isolatie-procedure.

<table border="1" fo:keep-toge…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd gesteund door de DZHK (Duitse centrum voor cardiovasculair onderzoek, DB), de EKFS (Else-Kröner-Fresenius Stiftung, F.H.), en door de goedgekeurd (Duitse ministerie van onderwijs en onderzoek), evenals de BIH-Charité klinische wetenschapper programma gefinancierd door de Charité – Universitätsmedizin Berlijn en de Berlijnse Institute of Health (F.H.).

Materials

ZSF-1 Obese rat Charles River Laboratories, Inc. 21 weeks old
Fine Iris Scissors Fine Science Tools GmbH 14094-11
Surgical Scissors Fine Science Tools GmbH 14001-18
Micro Dressing Forceps (curved, serrated) Aesculap, Inc. BD312R
Tissue Forceps (straight, 1 x 2 teeth) Aesculap, Inc. BD537R
Tying Forceps (angled) Aesculap, Inc. MA624R
Rodent and Small Animal Guillotine Kent Scientific Corp. DCAP
Low Cost Induction Chamber 3.0 L Kent Scientific Corp. SOMNO-0730 
Butterfly Winged Infusion Set 21 G Hospira, Inc. 181106101
Abbocath 16 G Hospira, Inc. 0G7149702
Microlance Hypodermic Needle Becton Dickinson GmbH 301300 modify needle to make cannula
Braun Original Perfusor Syringe 50 ml B. Braun Melsungen AG 8728810F
Braun Inject Solo Syringe 10 ml B. Braun Melsungen AG 2057926
Beaker 50ml Duran Group (DWK Life Sciences GmbH) 21 106 17
Duroplan petri dish (100 x 20 mm) Duran Group (DWK Life Sciences GmbH) 21 755 48
Seraflex Suture USP 3/0 SERAG-WIESSNER GmbH & Co. KG IC208000
VWR disposable Square Weighin Boats 100ml VWR, Inc. 10803-148
Styrofoam surface
Sodium chloride Sigma-Aldrich, Inc. 71380
Potassium chloride Sigma-Aldrich, Inc. P4504
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich, Inc. P5379
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich, Inc. S0876
Magensium sulfate heptahydrate Sigma-Aldrich, Inc. 230391
Magensium chloride Sigma-Aldrich, Inc. M8266
HEPES Sigma-Aldrich, Inc. H3375
Taurine Sigma-Aldrich, Inc. T0625
Glucose Sigma-Aldrich, Inc. G7528
2,3-Butanedione monoxime Sigma-Aldrich, Inc. B0753
Calcium chloride solution (1 M) Sigma-Aldrich, Inc. 21115
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich, Inc. A9647
Liberase Roche (Sigma-Aldrich, Inc.) LIBTM-RO
Heparin Rotexmedica GmbH 3862357
Forene (Isoflurane) Abbvie Deutschland GmbH & Co. KG 10182054
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm murine sarcoma basement membrane Sigma-Aldrich, Inc. L2020
WillCo glass-bottom dish 500µl 0.005mm WillCo Wells B.V. HBST-3522
Fluo4 AM Invitrogen (Thermo Fisher Scientific, Inc.) F14201 5µM for 20min at RT
Di-8-ANNEPS Invitrogen (Thermo Fisher Scientific, Inc.) D3167 10µM for 45 min at 37° C 
Mitotracker RED FM Invitrogen (Thermo Fisher Scientific, Inc.) M22425 20nM for 30 min at 37° C
Jacketed reaction vessel 500 ml Gebr. Rettberg GmbH 107024414
Jacketed reaction vessel 1000 ml Gebr. Rettberg GmbH 107025414
Jacketed bubble trap Gebr. Rettberg GmbH 134720001
ED heating immersion circulator Julabo GmbH 9116000
Reglo Digital MS-2/6 peristaltic pump Ismatec (Cole-Parmer Gmbh) ISM 831
Voltcraft Thermometer 302 K/J Conrad Electronic SE 030300546
Tubing
LSM 700 microscope Carl Zeiss, Inc.
ZEN 2.3 imaging software Carl Zeiss, Inc. 410135-1011-240 
Single channel heater controller TC-324B Warner Instruments, LLC 64-2400
8 channel perfusion system Warner Instruments, LLC 64-0185
8 channel Multi-Line In-Line Solution Heaters Warner Instruments, LLC 64-0105

References

  1. Alberti, K. G., et al. Harmonizing the metabolic syndrome: a joint interim statement of the International Diabetes Federation Task Force on Epidemiology and Prevention; National Heart, Lung, and Blood Institute; American Heart Association; World Heart Federation; International Atherosclerosis Society; and International Association for the Study of Obesity. Circulation. 120 (16), 1640-1645 (2009).
  2. . IDF Consensus Worldwide Definition of the Metabolic Syndrome Available from: https://www.idf.org/e-library/consensus-statements/60-idfconsensus-worldwide-definitionof-the-metabolic-syndrome.html (2006)
  3. Melenovsky, V., et al. Left atrial remodeling and function in advanced heart failure with preserved or reduced ejection fraction. Circulation: Heart Failure. 8 (2), 295-303 (2015).
  4. Goette, A., et al. EHRA/HRS/APHRS/SOLAECE expert consensus on atrial cardiomyopathies: definition, characterization, and clinical implication. EP Europace. 18 (10), 1455-1490 (2016).
  5. Schotten, U., Verheule, S., Kirchhof, P., Goette, A. Pathophysiological mechanisms of atrial fibrillation: a translational appraisal. Physiological Reviews. 91 (1), 265-325 (2011).
  6. Hohendanner, F., DeSantiago, J., Heinzel, F. R., Blatter, L. A. Dyssynchronous calcium removal in heart failure-induced atrial remodeling. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 311 (6), H1352-H1359 (2016).
  7. Hohendanner, F., et al. Inositol-1,4,5-trisphosphate induced Ca2+ release and excitation-contraction coupling in atrial myocytes from normal and failing hearts. The Journal of Physiology. 593 (6), 1459-1477 (2015).
  8. Tada, Y., et al. Role of mineralocorticoid receptor on experimental cerebral aneurysms in rats. Hypertension. 54 (3), 552-557 (2009).
  9. Iwasaki, Y. K., et al. Atrial fibrillation promotion with long-term repetitive obstructive sleep apnea in a rat model. Journal of the American College of Cardiology. 64 (19), 2013-2023 (2014).
  10. Field, L. J. Atrial natriuretic factor-SV40 T antigen transgenes produce tumors and cardiac arrhythmias in mice. Science. 239 (4843), 1029-1033 (1988).
  11. Claycomb, W. C., et al. HL-1 cells: a cardiac muscle cell line that contracts and retains phenotypic characteristics of the adult cardiomyocyte. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (6), 2979-2984 (1998).
  12. Sartiani, L., Bochet, P., Cerbai, E., Mugelli, A., Fischmeister, R. Functional expression of the hyperpolarization-activated, non-selective cation current I(f) in immortalized HL-1 cardiomyocytes. The Journal of Physiology. 545 (Pt 1), 81-92 (2002).
  13. Louch, W. E., Sheehan, K. A., Wolska, B. M. Methods in cardiomyocyte isolation, culture, and gene transfer. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 51 (3), 288-298 (2011).
  14. Gunduz, D., Hamm, C. W., Aslam, M. Simultaneous Isolation of High Quality Cardiomyocytes, Endothelial Cells, and Fibroblasts from an Adult Rat Heart. Journal of Visualized Experiments. (123), e55601 (2017).
  15. Li, D., Wu, J., Bai, Y., Zhao, X., Liu, L. Isolation and culture of adult mouse cardiomyocytes for cell signaling and in vitro cardiac hypertrophy. Journal of Visualized Experiments. (87), e51357 (2014).
  16. Graham, E. L., et al. Isolation, culture, and functional characterization of adult mouse cardiomyoctyes. Journal of Visualized Experiments. (79), e50289 (2013).
  17. Roth, G. M., Bader, D. M., Pfaltzgraff, E. R. Isolation and physiological analysis of mouse cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments. (91), e51109 (2014).
  18. Thum, T., Borlak, J. Isolation and cultivation of Ca2+ tolerant cardiomyocytes from the adult rat: improvements and applications. Xenobiotica. 30 (11), 1063-1077 (2000).
  19. Egorova, M. V., Afanas’ev, S. A., Popov, S. V. A simple method for isolation of cardiomyocytes from adult rat heart. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 140 (3), 370-373 (2005).
  20. Kohncke, C., et al. Isolation and Kv channel recordings in murine atrial and ventricular cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments. (73), e50145 (2013).
  21. Wagner, E., Brandenburg, S., Kohl, T., Lehnart, S. E. Analysis of tubular membrane networks in cardiac myocytes from atria and ventricles. Journal of Visualized Experiments. (92), e51823 (2014).
  22. Hohendanner, F., et al. Cellular mechanisms of metabolic syndrome-related atrial decompensation in a rat model of HFpEF. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 115, 10-19 (2017).
  23. Seluanov, A., Vaidya, A., Gorbunova, V. Establishing primary adult fibroblast cultures from rodents. Journal of Visualized Experiments. (44), e2033 (2010).
  24. Bootman, M. D., Higazi, D. R., Coombes, S., Roderick, H. L. Calcium signalling during excitation-contraction coupling in mammalian atrial myocytes. Journal of Cell Science. 119 (Pt 19), 3915-3925 (2006).
  25. Smyrnias, I., et al. Comparison of the T-tubule system in adult rat ventricular and atrial myocytes, and its role in excitation-contraction coupling and inotropic stimulation. Cell Calcium. 47 (3), 210-223 (2010).
  26. Pritchett, A. M., et al. Diastolic dysfunction and left atrial volume: a population-based study. Journal of the American College of Cardiology. 45 (1), 87-92 (2005).
  27. Linz, D., et al. Cathepsin A mediates susceptibility to atrial tachyarrhythmia and impairment of atrial emptying function in Zucker diabetic fatty rats. Cardiovascular Research. 110 (3), 371-380 (2016).
  28. Ackers-Johnson, M., et al. A Simplified, Langendorff-Free Method for Concomitant Isolation of Viable Cardiac Myocytes and Nonmyocytes From the Adult Mouse Heart. Circulation Research. 119 (8), 909-920 (2016).
  29. Ramanathan, T., Skinner, H. Coronary blood flow. Continuing Education in Anaesthesia Critical Care & Pain. 5 (2), 61-64 (2005).
  30. Bond, M. D., Van Wart, H. E. Characterization of the individual collagenases from Clostridium histolyticum. 생화학. 23 (13), 3085-3091 (1984).
  31. Deel, E. D., et al. In vitro model to study the effects of matrix stiffening on Ca(2+) handling and myofilament function in isolated adult rat cardiomyocytes. The Journal of Physiology. 595 (14), 4597-4610 (2017).
  32. Wuensch, E., Heidrich, H. G. [On the Quantitative Determination of Collagenase]. Hoppe-Seyler’s Zeitschrift für physiologische Chemie. 333, 149-151 (1963).
  33. Conceicao, G., Heinonen, I., Lourenco, A. P., Duncker, D. J., Falcao-Pires, I. Animal models of heart failure with preserved ejection fraction. Netherlands Heart Journal. 24 (4), 275-286 (2016).
  34. Horgan, S., Watson, C., Glezeva, N., Baugh, J. Murine models of diastolic dysfunction and heart failure with preserved ejection fraction. Journal of Cardiac Failure. 20 (12), 984-995 (2014).
check_url/kr/57953?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bode, D., Guthof, T., Pieske, B. M., Heinzel, F. R., Hohendanner, F. Isolation of Atrial Cardiomyocytes from a Rat Model of Metabolic Syndrome-related Heart Failure with Preserved Ejection Fraction. J. Vis. Exp. (137), e57953, doi:10.3791/57953 (2018).

View Video