Summary

Visualisera samspelet mellan Qdot-märkt Protein och anläggningsvis modifierade λ DNA på nivån enda molekyl

Published: July 17, 2018
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att studera DNA-protein interaktioner av totalreflexion fluorescensmikroskopi (TIRFM) med hjälp av ett anläggningsvis modifierade λ DNA-substrat och en Quantum-dot märkt protein.

Abstract

Fluorescensmikroskopi har gjort stora bidrag i dissekera mekanismerna av komplexa biologiska processer på nivån enda molekyl. I enda molekyl analyser för att studera DNA-protein interaktioner, det finns två viktiga faktorer för övervägande: DNA underlaget med tillräcklig längd för enkel observation och märkning ett protein med en lämplig fluorescerande sond. 48,5 kb λ DNA är en bra kandidat för DNA substratet. Kvantprickar (Qdots), tillåta som en klass av fluorescerande sonder, long-time observation (minuter till timmar) och högkvalitativ bild förvärv. I detta papper presentera vi ett protokoll för att studera DNA-protein interaktioner på singel-molekyl nivå, vilket inkluderar förbereder en anläggningsvis modifierade λ DNA och märkning ett målprotein med streptividin-belagd Qdots. För ett proof of concept, vi väljer ORC (ursprung erkännande komplexa) i spirande jäst som ett protein av intresse och visualisera dess interaktion med en ARS (autonomt replikerande sekvens) med hjälp TIRFM. Jämfört med övriga fluorescerande sonder, Qdots har uppenbara fördelar i enda molekyl studier på grund av dess höga stabilitet mot fotoblekning, men det bör noteras att detta boende begränsar dess tillämpning i kvantitativa analyser.

Introduction

Interaktioner mellan protein och DNA är nödvändiga för många komplexa biologiska processer, såsom DNA-replikation, DNA-reparation och transkription. Även konventionella metoder har belyst egenskaperna för dessa processer, är många viktiga mekanismer fortfarande oklart. Nyligen, med de snabbt växande enda molekyl teknikerna, vissa mekanismer har varit adresserade1,2,3.

Tillämpningen av singel-molekyl fluorescensmikroskopi på visualisera protein-DNA-interaktion i realtid huvudsakligen beror på utvecklingen av fluorescens upptäckt och fluorescerande sonder. För en enda molekyl studie är det viktigt att märka proteinet av ränta med en lämplig fluorescerande sond eftersom fluorescens detektionssystem finns mestadels kommersiellt.

Fluorescerande proteiner används ofta i molekylärbiologi. Men begränsar låg fluorescerande ljusstyrka och stabilitet mot fotoblekning dess tillämpning i många enda molekyl analyser. Kvantprickar (Qdots) är små ljusavgivande nanopartiklar4. På grund av deras unika optiska egenskaper, Qdots är 10 – 20 gånger ljusare och flera tusen gånger mer stabil än den utbredda organiska färgämnen5. Dessutom har Qdots en stor Stokes Skift (skillnaden mellan excitation och utsläpp toppar ställning)5. Qdots kan således användas för lång tid observation (minuter till timmar) och förvärvet av bilder med hög signal-brus-förhållanden, medan de inte kan utnyttjas i de kvantitativa analyserna.

I dag finns det två tillvägagångssätt att märka ett målprotein med Qdots anläggningsvis: märkning med hjälp av Qdot-konjugerad primära eller sekundära antikroppar6,7,8. eller märkning målproteinet med Qdots direkt, som är baserad på den starka växelverkan mellan biotin och streptividin9,10,11,12,13. Streptividin-belagda Qdots är kommersiellt tillgängliga. I vår senaste studie, anläggningsvis biotinylerade proteiner i spirande jäst med hög verkningsgrad var renas genom co-överuttryck av BirA och Avi-märkta proteiner i vivo10. Genom följande och optimera den enda-molekyl analyser14,15,16,17, observerade vi interaktioner mellan Qdot-märkta proteiner och DNA på den enda molekyl nivå med TIRFM10.

Här kan vi välja spirande jäst ursprung-erkännande komplexa (ORC), som kan specifikt känna igen och binda till självständigt replikerande sekvensen (ARS), som våra protein av intresse. Följande protokoll presenterar ett stegvis förfarande att visualisera samspelet mellan Qdot-märkt ORC med ARS med TIRFM. Beredning av anläggningsvis modifierad DNA substratet, den DNA-biotinylation, täckglas rengöring och funktionalisering, flöde-cell församlingen och singel-molekyl bildtagning beskrivs.

Protocol

1. beredning av λ-ARS317 DNA substrat DNA substrat konstruktion och förpackning Smälta infödda λ DNA med hjälp Xhojag enzym; förstärka 543 bp DNA fragment bäring ARS317 genomisk DNA från spirande jäst med primers som innehåller 20 bp homologa sekvenser av uppströms och nedströms Xhojag enzym webbplats på lambda DNA. Tillsätt 100 ng av Xhojag smält λ DNA och 10 ng DNA fragment till 10 µL av homolog rekombination reaktion system och inkubera reaktionen vid 37 …

Representative Results

För att visualisera samspelet mellan Qdot-märkt ORC och ARS, konstruerade vi först λ-ARS317 DNA substratet. En DNA-fragment som innehåller ARS317 integrerades in i Xhosite jag (33,5 kb) av infödda λ DNA av homolog rekombination (figur 1A). Rekombination produkten levererades med extrakt och paketerade phage partiklarna odlades på LB tallrikar (figur 1B). Den positiva phage placken visades med PCR och bekräftas a…

Discussion

Här presenterar vi ett protokoll för att observera samspelet mellan Qdot-märkt proteinet och anläggningsvis modifierade λ DNA med TIRFM i ett flöde-cell. Nödvändiga åtgärder inkluderar platsspecifika modifiering av DNA substrat, DNA biotinylation, täckglas rengöring och funktionalisering, flöde-cell förberedelse och singel-molekyl imaging. Det finns två viktiga punkter som bör noteras. Först, alla de olika stegen med λ DNA bör manipuleras försiktigt för att minska eventuella skador, t.ex., a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Dr. Hasan Yardimci och Dr.Sevim Yardimci av Francis Crick Institute for typ hjälpa i singel-molekyl experiment, Dr. Daniel Duzdevich från Dr. Eric C. Greenes lab av Columbia University, Dr Yujie Sun av Pekings universitet och Dr. Chunlai Chen av Tsinghua University för nyttig diskussion. Denna studie stöddes av den naturliga vetenskapen Foundation Kinas nationella 31371264, 31401059, CAS tvärvetenskapliga Innovation Team och Newton avancerade gemenskap (NA140085) från Royal Society.

Materials

Lambda DNA New England Biolabs N3011 Store 25 μL aliquots at -20 ºC.
XhoI enzyme Thermo Fisher Scientific FD0694
Quick-fusion cloning kit Biotool B22611
MaxPlax Lambda
Packaging Extracts
Epicentre MP5110 Bacterial strain LE392MP
is included in this package.
MgSO4 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10013092 Any brand is acceptable.
Tris Amresco 0497-5KG
NaCl Beijing Chemical works N/A Any brand is acceptable.
MgCl2 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10012818
Chloroform Beijing Chemical works N/A Any brand is acceptable.
NZ-amine Amresco J853-250G
Casamino acids Sigma-Aldrich 22090-500G
PEG8000 Beyotime ST483
Magnetic stirring apparatus IKA KMO2 basic
15 mL Eppendorf tube Eppendorf 30122151 15 mL, sterile, bulk, 500pcs
Rnase SIGMA R4875-100MG
Dnase SIGMA D5319-500UG
Proteinase K Amresco 0706-100MG
Biotinylated primers Thermo Fisher Scientific N/A
T4 DNA ligase, T4 DNA Ligase, Reaction Buffer (10x) New England Biolabs M0202
Coverslip Thermo Fisher Scientific 22266882
Ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10009259
Potassium hydroxide (KOH) Sigma-Aldrich 306568-100G
Acetone Thermo Fisher Scientific A949-4
H2SO4 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 80120891 sulfuric acid
H2O2 Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd 10011218 30% Hydrogen peroxide
Methanol Sigma-Aldrich 322415-2L
Acetic acid Sigma-Aldrich V900798
APTES Sigma-Aldrich A3648
mPEG
(methoxy-polyethylene glycol)
Lysan mPEG-SVA-5000
biotin-PEG
(biotin-polyethylene glycol)
Lysan Biotin-PEG-SVA-5000
NaHCO3 Sigma-Aldrich 31437-500G
Vacuum desiccator Tianjin Branch Billion Lung Experimental Equipment Co., Ltd. IPC250-1
Vacuum sealer MAGIC SEAL WP300
Diamond-tipped glass scribe ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES 70036
Glass slide Sail Brand 7101
Inlet tubing SCI (Scientific Commodties INC.) BB31695-PE/2 inner diameter 0.38 mm; outer diameter 1.09 mm.
Outlet tubing SCI (Scientific Commodties INC.) BB31695-PE/4 inner diameter 0.76 mm; outer diameter 1.22 mm.
Double-sided tape Sigma-Aldrich GBL620001-1EA
Epoxy LEAFTOP 9005 five minutes epoxy
Streptavidin Sigma-Aldrich S4762
Fluorescence Microscope Olympus IX71
Infusion/withdrawal
programmable pump
Harvard apparatus 70-4504
532 nm laser Coherent Sapphire-532-50
640 nm laser Coherent OBIS-640-100
EMCCD Camera Andor DU-897E-CS0-BV
W-View Gemini Imaging
splitting optics
Hamamatsu photonics K.K. A12801-01
TIRF illumination system Olympus IX2-RFAEVA2
60×TIRF objective Olympus APON60XOTIRF
Quad-edge laser dichroic
beamsplitter
Semrock Di01-R405/488/
532/635-25×36
Quad-band bandpass filter Semrock FF01-446/510/
581/703-25
Dichroic beamsplitter Semrock FF649-Di01-25×36
Emission filter Chroma Technology Corp ET585/65m
Emission filter Chroma Technology Corp ET665lp
FocalCheck fluorescence, microscope test slide #1 Thermo Fisher Scientific F36909
SYTOX Orange Thermo Fisher Scientific S11368
Qdot705 Streptavidin Conjugate Thermo Fisher Scientific Q10163MP Store at 4 ºC, do not freeze.
ATP Amresco 0220-25G Prepare 200 mM ATP solution, using ddH2O, adjust pH to 7.0, and store 10 μL aliquots at -20 ºC.
DTT Amresco M109-5G Prepare 1 M solution using ddH2O, and store 10 μl aliquots at -20 ºC.

References

  1. Fu, Y. V., et al. Selective Bypass of a Lagging Strand Roadblock by the Eukaryotic Replicative DNA Helicase. Cell. 146 (6), 930-940 (2011).
  2. Qi, Z., et al. DNA sequence alignment by microhomology sampling during homologous recombination. Cell. 160 (5), 856-869 (2015).
  3. Chong, S., Chen, C., Ge, H., Xie, X. S. Mechanism of transcriptional bursting in bacteria. Cell. 158 (2), 314-326 (2014).
  4. Wegner, K. D., Hildebrandt, N. Quantum dots: bright and versatile in vitro and in vivo fluorescence imaging biosensors. Chemical Society Reviews. 44 (14), 4792-4834 (2015).
  5. Gao, X., et al. In vivo molecular and cellular imaging with quantum dots. Current opinion in biotechnology. 16 (1), 63-72 (2005).
  6. Sternberg, S. H., Redding, S., Jinek, M., Greene, E. C., Doudna, J. A. DNA interrogation by the CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9. Nature. 507 (7490), 62 (2014).
  7. Lee, J. Y., Finkelstein, I. J., Arciszewska, L. K., Sherratt, D. J., Greene, E. C. Single-molecule imaging of FtsK translocation reveals mechanistic features of protein-protein collisions on DNA. Molecular cell. 54 (5), 832-843 (2014).
  8. Wang, H., Tessmer, I., Croteau, D. L., Erie, D. A., Van Houten, B. Functional characterization and atomic force microscopy of a DNA repair protein conjugated to a quantum dot. Nano letters. 8 (6), 1631-1637 (2008).
  9. Redding, S., et al. Surveillance and processing of foreign DNA by the Escherichia coli CRISPR-Cas system. Cell. 163 (4), 854-865 (2015).
  10. Xue, H., et al. Utilizing Biotinylated Proteins Expressed in Yeast to Visualize DNA-Protein Interactions at the Single-Molecule Level. Frontiers in microbiology. 8, 2062 (2017).
  11. Duzdevich, D., et al. The dynamics of eukaryotic replication initiation: origin specificity, licensing, and firing at the single-molecule level. Molecular cell. 58 (3), 483-494 (2015).
  12. Hughes, C. D., et al. Real-time single-molecule imaging reveals a direct interaction between UvrC and UvrB on DNA tightropes. Nucleic acids research. 41 (9), 4901-4912 (2013).
  13. Kad, N. M., Wang, H., Kennedy, G. G., Warshaw, D. M., Van Houten, B. Collaborative dynamic DNA scanning by nucleotide excision repair proteins investigated by single-molecule imaging of quantum-dot-labeled proteins. Molecular cell. 37 (5), 702-713 (2010).
  14. Chandradoss, S. D., et al. Surface Passivation for Single-molecule Protein Studies. Jove-Journal of Visualized Experiments. (86), (2014).
  15. Chen, X. Q., Zhao, E. S., Fu, Y. V. Using single-molecule approach to visualize the nucleosome assembly in yeast nucleoplasmic extracts. Science Bulletin. 62 (6), 399-404 (2017).
  16. Yardimci, H., Loveland, A. B., van Oijen, A. M., Walter, J. C. Single-molecule analysis of DNA replication in Xenopus egg extracts. Methods. 57 (2), 179-186 (2012).
  17. Tanner, N. A., Loparo, J. J., van Oijen, A. M. Visualizing single-molecule DNA replication with fluorescence microscopy. Journal of visualized experiments: JoVE. (32), (2009).
  18. Lockett, T. J. A bacteriophage λ DNA purification procedure suitable for the analysis of DNA from either large or multiple small lysates. Analytical biochemistry. 185 (2), 230-234 (1990).
  19. Smith, E. A., Chen, W. How to prevent the loss of surface functionality derived from aminosilanes. Langmuir. 24 (21), 12405-12409 (2008).
  20. Kim, Y., Torre, A., Leal, A. A., Finkelstein, I. J. Efficient modification of λ-DNA substrates for single-molecule studies. Scientific reports. 7 (1), 2071 (2017).

Play Video

Cite This Article
Xue, H., Zhan, Z., Zhang, K., Fu, Y. V. Visualizing the Interaction Between the Qdot-labeled Protein and Site-specifically Modified λ DNA at the Single Molecule Level. J. Vis. Exp. (137), e57967, doi:10.3791/57967 (2018).

View Video