Nous présentons ici un protocole décrivant les technique d’oxygénation par membrane extracorporelle veino-veineuse (ECMO) dans un non-intubés, spontanément les souris de la respiration. Ce modèle murin d’ECMO peut être implémenté efficacement dans des études expérimentales de l’aigu et les pneumopathies terminale.
L’utilisation d’oxygénation extracorporelle (ECMO) a considérablement augmenté ces dernières années. ECMO est devenu une thérapie efficace et fiable pour les aigus ainsi que les pneumopathies terminale. Avec l’augmentation de la demande clinique et l’utilisation prolongée d’ECMO, optimisation procédurale et prévention des dommages de plusieurs organes sont d’une importance cruciale. Le but du présent protocole est de présenter une technique détaillée d’une ECMO veino-veineuse dans un non-intubés, respirant spontanément des souris. Ce protocole illustre la conception technique de l’ECMO et étapes chirurgicales. Ce modèle murin d’ECMO facilitera l’étude de la physiopathologie associé à ECMO (p. ex., inflammation, événements hémorragiques et thromboemboliques). En raison de l’abondance des souris génétiquement modifiées, les mécanismes moléculaires impliqués dans les complications liées à l’ECMO peuvent également être disséqués.
Oxygénation extracorporelle (ECMO) est un système de support de vie temporaire qui reprend les fonctions des poumons et cœur pour permettre la perfusion et échanges gazeux adéquat. Hill et al.1 décrit la première utilisation de l’ECMO chez les patients en 1972 ; Cependant, il seulement est devenu employé couramment après sa candidature est retenue au cours de la grippe H1N1 en 20092. Aujourd’hui, l’ECMO est régulièrement utilisée comme une procédure de sauvetage dans le coeur de terminale et de maladies pulmonaires3. ECMO veino-veineuse est plus en plus employée comme alternative à une ventilation mécanique invasive dans éveillé, non-intubés, respirant spontanément des patients présentant une insuffisance respiratoire réfractaire4.
Malgré son adoption généralisée, diverses complications ont été signalées pour ECMO5,6,7. Les complications qui peuvent être vécues par les patients sous ECMO incluent hémorragie, thrombose, septicémie, thrombocytopénie, dysfonctionnements liés au dispositif et embolie gazeuse. En outre, un syndrome de réponse inflammatoire systémique (SRIS) dommages multi-organes est bien décrit, tant sur le plan clinique et des études expérimentales8,9. Complications neurologiques tels qu’infarctus du cerveau sont également fréquemment rapportées chez les patients suivant une thérapie à long terme de l’ECMO. Pour compliquer les questions, il est souvent difficile de distinguer si les complications sont provoquées par ECMO lui-même ou surviennent des troubles sous-jacents accompagnant aiguë et maladies de terminale.
Etudier précisément les effets d’une ECMO sur un organisme en bonne santé, un modèle animal expérimental fiable s’impose. Il y a très peu de rapports sur le rendement d’une ECMO sur petits animaux et sont tous limités à des rats. A ce jour, aucun modèle de souris de l’ECMO n’a été décrite dans la littérature. En raison de la disponibilité d’un grand nombre de lignées de souris génétiquement modifiées, mise en place d’un modèle de souris ECMO permettrait davantage investigation des mécanismes moléculaires impliqués dans les complications liées à l’ECMO10,11.
Basés sur notre modèle murin décrite précédemment extra-corporelle (CEC)12, nous avons développé une méthode stable ECMO veino-veineuse dans non-intubés, respirant spontanément des souris. Le circuit ECMO (Figure 1), contenant les flux sortant et canules d’afflux, pompe péristaltique, oxygénateur et réservoir d’air-piégeage, est similaire à notre modèle décrit antérieurement de murin CPB12 , à l’exception d’avoir un amorçage plus petit volume (0,5 mL). Ce protocole montre les techniques détaillées, monitorage physiologique et analyse des gaz sanguins impliqué dans une procédure d’ECMO réussie.
Nous avons décrit précédemment, un modèle réussi de la DGPC dans une souris12,13. Pour mettre en œuvre un tel modèle pour aiguë ou des troubles pulmonaires de terminale nous avons développé un circuit ECMO veino-veineuse de facile à utiliser pour la souris. Différentes du modèle de la DGPC, veino-veineuse ECMO n’exige pas des interventions chirurgicales complexes comme sternotomie et clampage de l’aorte, réduisant ainsi le risque de blessure sai…
The authors have nothing to disclose.
Ce projet a été soutenu par KFO 311 subvention du Deutsche Forschungsgemeinschaft.
Sterofundin | B.Braun Petzold GmbH | PZN:8609189 | in 1:1 with Tetraspan |
Tetraspan 6% Solution | B. Braun Melsungen AG | PZN: 05565416 | in 1:1 with Sterofundin |
Heparin Natrium 25.000 | Ratiopharm GmbH | PZN: 3029843 | 2,5 IU per ml of priming |
NaHCO3 8,4% Solution | B. Braun Melsungen AG | PZN: 1579775 | 3% in priming solution |
Carprofen | Zoetis Inc., USA | PZN:00289615 | 5mg/kg/BW |
1 Fr PU Catheter | Instechlabs INC., USA | C10PU-MCA1301 | carotide artery |
2 Fr PU Catheter | Instechlabs INC., USA | C20PU-MJV1302 | jugular vein |
8-0 Silk suture braided | Ashaway Line & Twine Co., USA | 75290 | ligature |
Isoflurane | Piramal Critical Care GmbH | PZN:9714675 | narcosis |
Spring Scissors – 6mm Blades | Fine Science Tools GmbH | 15020-15 | instruments |
Spring Scissors – 2mm Blades | Fine Science Tools GmbH | 15000-03 | instruments |
Halsted-Mosquito Hemostat | Fine Science Tools GmbH | 13009-12 | instruments |
Dumont #55 Forceps | Fine Science Tools GmbH | 11295-51 | instruments |
Castroviejo Micro Needle Holder – 9cm | Fine Science Tools GmbH | 12060-02 | instruments |
Micro Serrefines | Fine Science Tools GmbH | 18555-01 | instruments |
Bulldog Serrefine | Fine Science Tools GmbH | 18050-28 | instruments |
Isoflurane Vaporizer Drager 19.1 | Drägerwerk AG & Co. KGaA | anesthesia 1,3 -2,5% | |
Multichannel Data Aquisition Device with ISOHEART Software | Hugo Sachs Elektronik GmbH, Germany | invasive pressure, ECG, t °C | |
i-STAT portable device | Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA | blood gas analysis | |
i-STAT CG4+ and CG8+ cartridges | Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA | blood gas analysis | |
C57Bl/6 mice, male, 30 g, 14 weeks old | Charles River Laboratories | housed 1 week before |