Summary

Veno-venøs ekstrakorporal membran oksygenering i en mus

Published: October 24, 2018
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll som beskriver teknikken veno-venøs ekstrakorporal membran oxygenation (ECMO) i en ikke-intubated, spontan pusting mus. Denne murine modellen av ECMO kan bli effektivt implementert i eksperimentelle studier av akutt og sluttstadiet lungesykdommer.

Abstract

Bruk ekstrakorporal membran oxygenation (ECMO) har økt betydelig de siste årene. ECMO har blitt en pålitelig og effektiv behandling for akutt samt sluttstadiet lungesykdommer. Med økningen i klinisk etterspørsel og langvarig bruk av ECMO er fremgangsmåter for optimalisering og forebygging av flere organskade av avgjørende betydning. Målet med denne protokollen er å presentere en detaljert teknikk for veno-venøs ECMO i en ikke-intubated, spontan pusting musen. Denne protokollen demonstrerer den tekniske utformingen av ECMO og kirurgisk trinnene. Denne murine ECMO modellen vil lette studiet av patofysiologi relatert til ECMO (f.eks betennelse, blødning og thromboembolic hendelser). På grunn av overflod av genmodifiserte mus, kan det også være dissekert molekylære mekanismer involvert i ECMO-relaterte komplikasjoner.

Introduction

Ekstrakorporal membran oksygenering (ECMO) er en midlertidig liv støttesystem som tar over funksjonene til lungene og hjertet å tillate tilstrekkelig gassutveksling og perfusjon. Hill et al1 beskrevet den første bruken av ECMO hos pasienter i 1972; Imidlertid ble det bare utbredt etter vellykket programmet under H1N1 influensa pandemi i 20092. I dag brukes rutinemessig ECMO som en livreddende prosedyre i sluttstadiet hjerte og lunge sykdommer3. Veno-venøs ECMO er stadig ansatt som et alternativ til invasiv mekanisk ventilasjon i våken, ikke-intubated, spontan pusting pasienter med ildfaste respirasjonssvikt4.

Til tross for utbredt wireheading, er mangfoldig komplikasjoner rapportert for ECMO5,6,7. Komplikasjoner som kan oppleves av pasienter på ECMO inkluderer blødning, blodpropp, sepsis, trombocytopeni, enhetsrelaterte feil og air embolism. Videre er en systemisk inflammatorisk respons syndrom (herrer) resulterer i flere organskade godt beskrevet både klinisk og eksperimentelle studier8,9. Nevrologiske komplikasjoner som hjernen hjerteinfarkt rapportert også ofte hos pasienter gjennomgår langsiktige ECMO terapi. For å forvirre saker, er det ofte vanskelig å skille komplikasjoner forårsaket av ECMO selv eller oppstår fra underliggende lidelser følger akutt og sluttstadiet sykdommer.

Å spesielt studere effekter av ECMO på en sunn organisme, må en pålitelig eksperimentelle dyr modell opprettes. Det er svært få rapporter på ytelsen til ECMO på små dyr og er alle begrenset til rotter. Hittil har har ingen musemodell av ECMO blitt beskrevet i litteraturen. Grunn av tilgjengelighet av et stort antall genmodifiserte musen stammer, ville etablering av en mus ECMO modell tillate ytterligere undersøkelse av molekylære mekanismer involvert i ECMO-relaterte komplikasjoner10,11.

Basert på vår beskrevet tidligere murine modell hjerte bypass (CPB)12, har vi utviklet en stabil metode for veno-venøs ECMO i ikke-intubated, spontan pusting mus. ECMO kretsen (figur 1), som inneholder utløp og tilsig cannulas, peristaltiske pumpe, oxygenator og luft-fangst reservoaret, ligner vår beskrevet tidligere modell murine CPB12 med unntak av å ha en mindre grunning volum (0,5 mL). Denne protokollen viser detaljert teknikker, fysiologiske overvåking, og blod gass analyse involvert i en vellykket ECMO-prosedyre.

Protocol

Eksperimenter ble utført på mannlige C57BL/6 mus, alderen 12 uker. Denne studien ble utført i samsvar med retningslinjene i tysk dyr loven protokollen TSA 16/2250. 1. materialet forberedelse Merk: Alle trinnene utføres under ren, ikke-steril forhold. Sterile forhold vil være nødvendig dersom dyret er å være overlevd postoperatively. Innføre 3 fenestrations i en 2-Fr polyuretan rør med et kirurgisk blad under et mikroskop med 16 X forstørrelse.<…

Representative Results

Denne protokollen beskriver metoden for veno-venøs ECMO i en mus. Denne modellen er pålitelig og reproduserbar og forhold til vår beskrevet tidligere modell av CPB med respiratory og sirkulasjons arrestasjonen12,13, er det mindre teknisk krevende å etablere. ECMO flyt i det venøse systemet ble opprettholdt mellom 1,5 og 5 mL/min. Mener arteriell trykket ble holdt me…

Discussion

Vi beskrevet tidligere, en vellykket modell av CPB i en mus12,13. Implementere slik modell for akutt eller sluttstadiet lunge lidelser vi utviklet en lett-å-bruke veno-venøs ECMO krets for mus. Forskjellige CPB modellen veno-venøs ECMO krever ikke komplisert kirurgiske prosedyrer som sternotomy og clamping aortabuen, dermed redusere risikoen for såret blødning i en fullt heparinized dyr. For å unngå embolisering av oxygenator med blodpropp, er 2,5 IE hepar…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette prosjektet ble støttet av KFO 311 stipend fra Deutsche Forschungsgemeinschaft.

Materials

Sterofundin B.Braun Petzold GmbH PZN:8609189 in 1:1 with Tetraspan
Tetraspan 6% Solution B. Braun Melsungen AG PZN: 05565416 in 1:1 with Sterofundin
Heparin Natrium 25.000 Ratiopharm GmbH PZN: 3029843 2,5 IU per ml of priming
NaHCO3 8,4% Solution B. Braun Melsungen AG PZN: 1579775 3% in priming solution
Carprofen Zoetis Inc., USA PZN:00289615 5mg/kg/BW
1 Fr PU Catheter Instechlabs INC., USA C10PU-MCA1301 carotide artery
2 Fr PU Catheter Instechlabs INC., USA C20PU-MJV1302 jugular vein
8-0 Silk suture braided Ashaway Line & Twine Co., USA 75290 ligature
Isoflurane Piramal Critical Care GmbH PZN:9714675 narcosis
Spring Scissors – 6mm Blades Fine Science Tools GmbH 15020-15 instruments
Spring Scissors – 2mm Blades Fine Science Tools GmbH 15000-03 instruments
Halsted-Mosquito Hemostat Fine Science Tools GmbH 13009-12 instruments
Dumont #55 Forceps Fine Science Tools GmbH 11295-51 instruments
Castroviejo Micro Needle Holder – 9cm Fine Science Tools GmbH 12060-02 instruments
Micro Serrefines Fine Science Tools GmbH 18555-01 instruments
Bulldog Serrefine Fine Science Tools GmbH 18050-28 instruments
Isoflurane Vaporizer Drager 19.1 Drägerwerk AG & Co. KGaA anesthesia 1,3 -2,5%
Multichannel Data Aquisition Device with ISOHEART Software Hugo Sachs Elektronik GmbH, Germany invasive pressure, ECG, t °C
i-STAT portable device Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA blood gas analysis
i-STAT CG4+ and CG8+ cartridges Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA blood gas analysis
C57Bl/6 mice, male, 30 g, 14 weeks old Charles River Laboratories housed 1 week before

References

  1. Hill, J. D., et al. Prolonged Extracorporeal Oxygenation for Acute Post-Traumatic Respiratory Failure (Shock-Lung Syndrome). New England Journal of Medicine. 286 (12), 629-634 (1972).
  2. Noah, M. A., et al. Referral to an Extracorporeal Membrane Oxygenation Center and Mortality Among Patients With Severe 2009 Influenza A(H1N1). Journal of the American Medical Association. 306 (15), 1659 (2011).
  3. Maslach-Hubbard, A., Bratton, S. L. Extracorporeal membrane oxygenation for pediatric respiratory failure: History, development and current status. World Journal of Critical. Care Medicine. 2 (4), 29-39 (2013).
  4. Langer, T., et al. “Awake” extracorporeal membrane oxygenation (ECMO): pathophysiology, technical considerations, and clinical pioneering. Critical Care. 20 (1), 150 (2016).
  5. Esper, S. A. Extracorporeal Membrane Oxygenation. Advances in Anesthesia. 35 (1), 119-143 (2017).
  6. Millar, J. E., Fanning, J. P., McDonald, C. I., McAuley, D. F., Fraser, J. F. The inflammatory response to extracorporeal membrane oxygenation (ECMO): a review of the pathophysiology. Critical Care. 20 (1), 387 (2016).
  7. Lubnow, M., et al. Technical complications during veno-venous extracorporeal membrane oxygenation and their relevance predicting a system-exchange–retrospective analysis of 265 cases. Public Library of Science One. 9 (12), e112316 (2014).
  8. Passmore, M. R., et al. Inflammation and lung injury in an ovine model of extracorporeal membrane oxygenation support. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 311 (6), L1202-L1212 (2016).
  9. Vaquer, S., de Haro, C., Peruga, P., Oliva, J. C., Artigas, A. Systematic review and meta-analysis of complications and mortality of veno-venous extracorporeal membrane oxygenation for refractory acute respiratory distress syndrome. Annals of Intensive Care. 7 (1), 51 (2017).
  10. Houser, S. R., et al. Animal Models of Heart Failure A Scientific Statement From the American Heart Association. Circulation Research. 111 (1), 131-150 (2012).
  11. Russell, J. C., Proctor, S. D. Small animal models of cardiovascular disease: tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis. Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).
  12. Madrahimov, N., et al. Novel mouse model of cardiopulmonary bypass. European Journal of Cardio-thoracic Surgery. 53 (1), 186-193 (2017).
  13. Madrahimov, N., et al. Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach. J. Journal of Visualized Experiments. (127), (2017).

Play Video

Cite This Article
Madrahimov, N., Khalikov, A., Boyle, E. C., Natanov, R., Knoefel, A., Siemeni, T., Hoeffler, K., Haverich, A., Maus, U., Kuehn, C. Veno-Venous Extracorporeal Membrane Oxygenation in a Mouse. J. Vis. Exp. (140), e58146, doi:10.3791/58146 (2018).

View Video