Summary

Veno-venös extrakorporeal membransyresättning i en mus

Published: October 24, 2018
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll som beskriver den teknik för veno-venös extrakorporeal membransyresättning (ECMO) i en icke-intuberade, spontant andning mus. Denna murina modell av ECMO kan genomföras effektivt i experimentella studier av akut och slutstadiet lungsjukdomar.

Abstract

Användning av extrakorporeal membransyresättning (ECMO) har ökat kraftigt under de senaste åren. ECMO har blivit en pålitlig och effektiv terapi för akut samt slutstadiet lungsjukdomar. Med ökningen av kliniska efterfrågan och långvarig användning av ECMO är processuella optimering och förebyggande av skador på flera organ av avgörande betydelse. Syftet med detta protokoll är att presentera en detaljerad teknik av veno-venös ECMO i en icke-intuberade, andas spontant mus. Detta protokoll visar den tekniska utformningen av ECMO och kirurgiska åtgärder. Denna murina ECMO-modell kommer att underlätta studiet av patofysiologi relaterade till ECMO (t.ex. inflammation, blödning och tromboemboliska händelser). På grund av överflödet av genetiskt modifierade möss, kan de molekylära mekanismerna som är involverade i ECMO-relaterade komplikationer också vara dissekeras.

Introduction

Extrakorporeal membransyresättning (ECMO) är en tillfällig livsuppehållande system tar över fungerar av lungor och hjärta för att möjliggöra adekvat gasutbyte och perfusion. Hill et al1 beskrivs den första användningen av ECMO patienter 1972; men blev det bara används allmänt efter sin framgångsrika ansökan under den H1N1 influensan pandemin 20092. Idag används rutinmässigt ECMO som livräddande förfarande i slutstadiet hjärt- och lung sjukdomar3. Veno-venös ECMO är alltmer anställd som ett alternativ till invasiv mekanisk ventilation i vaken, icke-intuberade, patienter med refraktär andningssvikt4.

Trots dess utbrett införande, har olika komplikationer rapporterats för ECMO5,6,7. Komplikationer som kan upplevas av patienter på ECMO är blödning, trombos, sepsis, trombocytopeni, enhet-relaterade störningar och luftemboli. En systemisk inflammatorisk reaktion syndrom (SIRS) vilket resulterar i flera organskador är dessutom väl beskrivna både kliniskt och i experimentella studier8,9. Neurologiska komplikationer såsom hjärnan infarkt rapporteras också ofta hos patienter som genomgår långvarig ECMO behandling. För att förvirra frågor, är det ofta svårt att urskilja om komplikationer orsakade av ECMO själv eller uppkommer av underliggande sjukdomar som åtföljer akut och slutstadiet sjukdomar.

För att specifikt studera effekterna av ECMO på en frisk organism, måste en pålitlig experimentell djurmodell fastställas. Det finns mycket få rapporter på utförandet av ECMO på smådjur och alla begränsade till råttor. Hittills har har ingen musmodell av ECMO beskrivits i litteraturen. På grund av tillgången till ett stort antal genetiskt modifierade mus stammar, skulle inrättandet av en musmodell ECMO tillåta ytterligare utredning av molekylära mekanismer involverade i ECMO-relaterade komplikationer10,11.

Baserat på våra tidigare beskrivna murina modell hjärt bypass (CPB)12, har vi utvecklat en stabil metod för veno-venös ECMO i icke-intuberade, andas spontant möss. ECMO kretsen (figur 1), som innehåller utflöde och inflöde kanyler, en Peristaltisk pump, oxygenator och air-trapping reservoar, är liknar våra tidigare beskrivna modellen av murina CPB12 med undantag för att ha en mindre priming volym (0,5 mL). Detta protokoll visar den detaljerade tekniker, fysiologiska övervakning och blod gasar analys en framgångsrik ECMO-förfarande.

Protocol

Experimenten utfördes på manliga C57BL/6 möss, åldern 12 veckor. Denna studie genomfördes i enlighet med riktlinjerna i den tyska djur lagen enligt protokollet TSA 16/2250. 1. material förberedelse Obs: Alla åtgärder utförs under rena, icke-sterila förhållanden. Sterila förhållanden skulle krävas om djuret är att vara överlevde postoperativt. Införa 3 fenestrations i en 2-Fr polyuretan slang med en kirurgisk kniv under ett Mikroskop med 1…

Representative Results

Det här protokollet beskriver metoden för veno-venös ECMO i en mus. Denna modell är tillförlitliga och reproducerbara, och jämfört med våra tidigare beskrivna modell av CPB med andnings-och cirkulationsstillestånd12,13, är det mindre tekniskt krävande att upprätta. ECMO flödet i det venösa systemet bibehölls mellan 1,5 och 5 mL/min. Det genomsnittliga arte…

Discussion

Tidigare har beskrivit vi en framgångsrik modell för CPB i en mus12,13. Att genomföra en sådan modell för akut eller slutstadiet lungsjukdomar som vi utvecklat en lätt-till-använda veno-venös ECMO krets för möss. Olika till CPB modellen, veno-venös ECMO kräver inte komplicerade kirurgiska ingrepp såsom sternotomi och fastspänning av aorta, vilket minskar risken för sår blödning i ett fullt hepariniserad djur. För att undvika embolisering av oxyg…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta projekt stöds av KFO 311 Grant från Deutsche Forschungsgemeinschafts.

Materials

Sterofundin B.Braun Petzold GmbH PZN:8609189 in 1:1 with Tetraspan
Tetraspan 6% Solution B. Braun Melsungen AG PZN: 05565416 in 1:1 with Sterofundin
Heparin Natrium 25.000 Ratiopharm GmbH PZN: 3029843 2,5 IU per ml of priming
NaHCO3 8,4% Solution B. Braun Melsungen AG PZN: 1579775 3% in priming solution
Carprofen Zoetis Inc., USA PZN:00289615 5mg/kg/BW
1 Fr PU Catheter Instechlabs INC., USA C10PU-MCA1301 carotide artery
2 Fr PU Catheter Instechlabs INC., USA C20PU-MJV1302 jugular vein
8-0 Silk suture braided Ashaway Line & Twine Co., USA 75290 ligature
Isoflurane Piramal Critical Care GmbH PZN:9714675 narcosis
Spring Scissors – 6mm Blades Fine Science Tools GmbH 15020-15 instruments
Spring Scissors – 2mm Blades Fine Science Tools GmbH 15000-03 instruments
Halsted-Mosquito Hemostat Fine Science Tools GmbH 13009-12 instruments
Dumont #55 Forceps Fine Science Tools GmbH 11295-51 instruments
Castroviejo Micro Needle Holder – 9cm Fine Science Tools GmbH 12060-02 instruments
Micro Serrefines Fine Science Tools GmbH 18555-01 instruments
Bulldog Serrefine Fine Science Tools GmbH 18050-28 instruments
Isoflurane Vaporizer Drager 19.1 Drägerwerk AG & Co. KGaA anesthesia 1,3 -2,5%
Multichannel Data Aquisition Device with ISOHEART Software Hugo Sachs Elektronik GmbH, Germany invasive pressure, ECG, t °C
i-STAT portable device Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA blood gas analysis
i-STAT CG4+ and CG8+ cartridges Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA blood gas analysis
C57Bl/6 mice, male, 30 g, 14 weeks old Charles River Laboratories housed 1 week before

References

  1. Hill, J. D., et al. Prolonged Extracorporeal Oxygenation for Acute Post-Traumatic Respiratory Failure (Shock-Lung Syndrome). New England Journal of Medicine. 286 (12), 629-634 (1972).
  2. Noah, M. A., et al. Referral to an Extracorporeal Membrane Oxygenation Center and Mortality Among Patients With Severe 2009 Influenza A(H1N1). Journal of the American Medical Association. 306 (15), 1659 (2011).
  3. Maslach-Hubbard, A., Bratton, S. L. Extracorporeal membrane oxygenation for pediatric respiratory failure: History, development and current status. World Journal of Critical. Care Medicine. 2 (4), 29-39 (2013).
  4. Langer, T., et al. “Awake” extracorporeal membrane oxygenation (ECMO): pathophysiology, technical considerations, and clinical pioneering. Critical Care. 20 (1), 150 (2016).
  5. Esper, S. A. Extracorporeal Membrane Oxygenation. Advances in Anesthesia. 35 (1), 119-143 (2017).
  6. Millar, J. E., Fanning, J. P., McDonald, C. I., McAuley, D. F., Fraser, J. F. The inflammatory response to extracorporeal membrane oxygenation (ECMO): a review of the pathophysiology. Critical Care. 20 (1), 387 (2016).
  7. Lubnow, M., et al. Technical complications during veno-venous extracorporeal membrane oxygenation and their relevance predicting a system-exchange–retrospective analysis of 265 cases. Public Library of Science One. 9 (12), e112316 (2014).
  8. Passmore, M. R., et al. Inflammation and lung injury in an ovine model of extracorporeal membrane oxygenation support. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 311 (6), L1202-L1212 (2016).
  9. Vaquer, S., de Haro, C., Peruga, P., Oliva, J. C., Artigas, A. Systematic review and meta-analysis of complications and mortality of veno-venous extracorporeal membrane oxygenation for refractory acute respiratory distress syndrome. Annals of Intensive Care. 7 (1), 51 (2017).
  10. Houser, S. R., et al. Animal Models of Heart Failure A Scientific Statement From the American Heart Association. Circulation Research. 111 (1), 131-150 (2012).
  11. Russell, J. C., Proctor, S. D. Small animal models of cardiovascular disease: tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis. Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).
  12. Madrahimov, N., et al. Novel mouse model of cardiopulmonary bypass. European Journal of Cardio-thoracic Surgery. 53 (1), 186-193 (2017).
  13. Madrahimov, N., et al. Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach. J. Journal of Visualized Experiments. (127), (2017).
check_url/kr/58146?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Madrahimov, N., Khalikov, A., Boyle, E. C., Natanov, R., Knoefel, A., Siemeni, T., Hoeffler, K., Haverich, A., Maus, U., Kuehn, C. Veno-Venous Extracorporeal Membrane Oxygenation in a Mouse. J. Vis. Exp. (140), e58146, doi:10.3791/58146 (2018).

View Video