Summary

Anesthetized चूहों में केंद्रीय तंत्रिका तंत्र जोड़तोड़ के जवाब में गुर्दे सहानुभूति तंत्रिका गतिविधि में तीव्र परिवर्तन को बढ़ाता है

Published: September 11, 2018
doi:

Summary

केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) जोड़तोड़ करने के लिए सहानुभूति और हृदय प्रतिक्रियाओं को मापने के लिए तरीके तंत्रिका विज्ञान को आगे बढ़ाने के लिए महत्वपूर्ण हैं । इस प्रोटोकॉल को मापने और anesthetized चूहों (गैर अस्तित्व) में गुर्दे सहानुभूति तंत्रिका गतिविधि (RSNA) में तीव्र परिवर्तन को बढ़ाता है के साथ वैज्ञानिकों की सहायता के लिए विकसित किया गया था ।

Abstract

गुर्दे सहानुभूति तंत्रिका गतिविधि (RSNA) और मतलब धमनी दबाव हृदय और स्वायत्त अनुसंधान में महत्वपूर्ण मापदंडों रहे हैं; हालांकि, वहां सीमित संसाधनों को मापने और इन चर विश्लेषण के लिए तकनीकों में वैज्ञानिकों को निर्देशित कर रहे हैं । इस प्रोटोकॉल RSNA मापने के लिए तरीकों का वर्णन और anesthetized चूहों में धमनी का दबाव मतलब है । प्रोटोकॉल भी केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) जोड़तोड़ के लिए RSNA रिकॉर्डिंग के दौरान मस्तिष्क तक पहुंचने के लिए दृष्टिकोण शामिल हैं । RSNA रिकॉर्डिंग तकनीक औषधीय, optogenetic, या सीएनएस के विद्युत उत्तेजना के साथ संगत है । दृष्टिकोण उपयोगी है जब एक अन्वेषक अल्पकालिक (h करने के लिए एच) स्वायत्त प्रतिक्रियाओं में गैर-अस्तित्व प्रयोगों के लिए anatomically सीएनएस नाभिक के साथ सहसंबंधित करने के लिए उपाय करेगा । दृष्टिकोण को चूहों में RSNA के जीर्ण (अस्तित्व) रिकॉर्डिंग प्राप्त करने के लिए इस्तेमाल किया जा करने के लिए इरादा नहीं है । RSNA में निर्वहन, औसत सुधारा RSNA, और मतलब धमनी दबाव quantified जा सकता है और आगे पैरामीट्रिक सांख्यिकीय परीक्षणों का उपयोग विश्लेषण । शिरापरक पहुंच प्राप्त करने के लिए तरीके, रिकॉर्डिंग मतलब धमनी दबाव telemetrically, और भविष्य ऊतकवैज्ञानिक विश्लेषण के लिए मस्तिष्क निर्धारण भी लेख में वर्णित हैं ।

Introduction

पूर्व नैदानिक हृदय प्रणाली के स्वायत्त नियंत्रण के बारे में खोजों ऐसे उच्च रक्तचाप, दिल की विफलता, और क्रोनिक गुर्दे की बीमारी के रूप में विकारों के प्रबंधन के लिए रणनीतियों को सूचित । सहानुभूति तंत्रिका तंत्र और कम वागल हृदय टोन की गतिविधि पर उच्च रक्तचाप (बीपी)1के लिए योगदान । क्रोनिक ऊंचा गुर्दे सहानुभूति बहिर्वाह catecholamine स्राव को बढ़ाता है और गुर्दे की रक्त प्रवाह घटाता है, बचके परिणामों के साथ हृदय/गुर्दे सिस्टम2,3. neurobiological स्वायत्तता के लिए अग्रणी रास्ते को परिभाषित करने के लिए, कुतर में अध्ययन कैसे केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) न्यूरॉन्स सहानुभूति मापदंडों को विनियमित निर्धारित करने के लिए महत्वपूर्ण हैं । इस प्रोटोकॉल का उद्देश्य गुर्दे सहानुभूति तंत्रिका गतिविधि (RSNA) और बीपी को मापने के बारे में तकनीकी जानकारी प्रदान करने के लिए और anesthetized चूहों में सीएनएस जोड़तोड़ के जवाब में तीव्र सहानुभूति परिवर्तन को बढ़ाता है के लिए तकनीक की रूपरेखा है ।

एक्यूट (गैर उत्तरजीविता) RSNA मापन (h करने के लिए स्थाई) उपयोगी होते है जब वैज्ञानिकों ने सीएनएस की जांच करेंगे, तो बिजली, या anesthetized चूहों में optogenetically विशिष्ट नाभिक के कार्यों का निर्धारण करने के लिए । इन तरीकों का उपयोग करना, इस तरह के एकांत नाभिक के रूप में संरचनाओं, periaqueductal ग्रे, pedunculopontine tegmentum, और rostral ventrolateral मज्जा सहानुभूति मानकों को विनियमित करने neurobiological रास्ते को परिभाषित करने के लिए जांच की गई है4, 5,6,7. इस दृष्टिकोण सीएनएस लक्ष्यों की पहचान के लिए महत्वपूर्ण स्वायत्तता8,9के पुराने मॉडलों में आगे की जांच की है । इन प्रयोगों को पूरा करने के लिए प्रयोगशाला में एक टांका लोहे, सर्जिकल माइक्रोस्कोप, stereotaxic फ्रेम, microelectrode एम्पलीफायर, और ऑडियो मॉनिटर की आवश्यकता है । प्रयोगशाला में मौजूद कारकों पर निर्भर करता है कि विद्युत शोर में योगदान, शल्य/रिकॉर्डिंग क्षेत्र RSNA रिकॉर्डिंग में बिजली के शोर को कम करने के लिए एक फैराडे पिंजरे/ यदि मस्तिष्क विश्लेषण ऊतक निर्धारण की आवश्यकता होगी, एक छिड़काव पंप और धुएं डाकू की आवश्यकता है । डेटा डिजीटल और एकाधिक शारीरिक सॉफ्टवेयर का उपयोग कर दर्ज किया जा सकता है/डाटा अधिग्रहण (एनालॉग डिजिटल कनवर्टर) इकाइयों4,5, विभिंन विश्लेषण विकल्प और telemetric संकेतों को शामिल करने के लिए compatibilities के साथ .

Protocol

सभी वर्णित तरीकों शिकागो में इलिनोइस विश्वविद्यालय में संस्थागत पशु देखभाल समिति द्वारा अनुमोदित किया गया । 1. द्विध्रुवी RSNA इलेक्ट्रोड बनाएं इलेक्ट्रोड बनाने के लिए, प्रत्येक लगभग 18 मि…

Representative Results

चित्रा 1 एक Nembutal-anesthetized चूहा से एक नमूना RSNA और बीपी रिकॉर्डिंग दिखाता है । phenylephrine के एक नसों में इंजेक्शन का मतलब है धमनी दबाव में वृद्धि पैदा करने के लिए और baroreflex और क्षणिक sympathoinhibition4</…

Discussion

RSNA को मापने के लिए महत्वपूर्ण कदम शामिल हैं: (1) गुर्दे की धमनी और नसों की खींच से बचने जब paraspinal मांसपेशी से गुर्दे को अलग करने और जब रिकॉर्डिंग इलेक्ट्रोड पर तंत्रिका खंड रखने, (2) सावधानी से गुर्दे तंत्रिका ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस अध्ययन को नेशनल इंस्टिट्यूट फॉर नर्सिंग रिसर्च (K99/R00NR014369) ने सपोर्ट किया था ।

Materials

Stainless steel wire A-M Systems; Sequim, WA 791000 RSNA electrode
Polyethylene (PE-50) tubing VWR; Radnor, PA 63019-048 RSNA electrode; vessel cannulation
Miniature pin connector A-M Systems; Sequim, WA 520200 RSNA electrode
Crimping tool Daniels Manufacturing Corp.; Orlando, FL M22520 RSNA electrode
Connector strip Amphenol; Clinton Township, MI 221-2653 RSNA electrode
J-B Kwik Epoxy J-B Weld, Sulphur Springs, TX 8270 RSNA electrode
Silicone Permatex; Hartford, CT 2222 RSNA electrode
Heparin sodium; Injectable (10 mL vial, 1000 U/mL) KV Veterinary Supply; David City, NE P03466 Venous line patency
Phenylephrine HCl; Injectable (1 mL vial; 10 mg/mL) ACE Surgical Supply; Brockton, MA 950-6312 Testing renal sympathoinhibition
Single-hook elastic surgical stays Harvard Apparatus; Holliston, MA 72-2595 Incision
Silk surgical tape 3M, Minneapolis, MN 1538-0 Secure surgical stays
Needles, 20 G Sigma-Aldrich; St. Louis, MO Z192554-100EA Vessel cannulation
Dumont #7 curved forceps Fine Science Tools; Foster City, CA 11274-20 Vessel cannulation
5-0 silk suture ties Braintree Scientific; Braintree, MA SUT-S 106 Vessel cannulation
Delicate hemostatic forceps Roboz Surgical Instrument Co.; Gaithersburg, MD RS-7117 Vessel cannulation and RSNA surgery
Crile Hemostatic forceps Fine Science Tools; Foster City, CA 13004-14 Needle bending
Telemetry transmitter Data Sciences International; Minneapolis, MN PA-10 Mean arterial pressure monitoring (telemetry)
Re-gel syringe Data Sciences International; Minneapolis, MN 276-0038-001 Transmitter reuse (telemetry)
Disposable pressure transducer Transpac; San Clemente, CA MI-1224 Mean arterial pressure monitoring
Clear-Cuff pressure infuser MILA International Inc.; Florence, KY 2281339 Mean arterial pressure monitoring
Vessel cannulation forceps Fine Science Tools; Foster City, CA 00574-11 Catheter insertion
Black monofilament nylon 4-0 suture on reverse cutting needle McKesson Medical-Surgical; San Francisco, CA S661GX Secure telemetry transmitter
Telemetry receiver Data Sciences International; Minneapolis, MN RPC-1 Mean arterial pressure monitoring (telemetry)
LabChart Pro (software), PowerLab (acquisition hardware) AD Instruments; Colorado Springs, CO ML846, MX2 matrix 2.0 (Compatible with Data Science International telemetry) 3 options for software/acquisition hardware
SciWorks (software), DataWave (acquisition hardware) DataWave Technologies, Loveland, CO N/A
Spike 2 (software), Micro1401-3 Cambridge Electronic Design Ltd., London UK 1401-3
Micro-drill Roboz Surgical Instrument Co.; Gaithersburg, MD RS-6300 CNS surgery
Stereotaxic surgery frame Stoelting; Wood Dale, IL 51600 CNS surgery
Microelectrode amplifier with 10X pre-amplifier A-M Systems; Sequim, WA 1800-2 RSNA recording
Retractors Fine Science Tools; Foster City, CA 17009-07 RSNA surgery
Micro-dissecting tweezers Fine Science Tools; Foster City, CA 11251-10 RSNA surgery
Micro-hook Fine Science Tools; Foster City, CA 10064-14 RSNA surgery
Mineral oil Fisher Scientific; Waltham, MA 8042-47-5 RSNA surgery
Audio monitor A-M Systems; Sequim, WA 3300 RSNA surgery
Silica gel Wacker, Munchen; Germany RT601A-B RSNA surgery
Electrical clips Tyco Electronics; Schaffhausen, Switzerland EB0283-000 Grounding or securing perfusion needle
Bonn scissors, straight/sharp points Roboz Surgical Instrument Co; Gaithersburg, MD RS-5840 Perfusion
Gavage needle Harvard Apparatus; Holliston, MA 75-0286 Perfusion
Masterflex perfusion pump Cole-Parmer; Vernon Hills, IL 7524-10 Perfusion
Masterflex platinum-cured silicone tubing Cole-Parmer; Vernon Hills, IL 96410-15 Perfusion
Formalin (10% buffered solution; 4 L) Sigma-Aldrich; St. Louis, MO HT501128 Perfusion
Sucrose Sigma-Aldrich; St. Louis, MO S0389 Cryoprotection

References

  1. Mancia, G., Grassi, G. The autonomic nervous system and hypertension. Circulation Research. 114 (11), 1804-1814 (2014).
  2. Kannan, A., Medina, R. I., Nagajothi, N., Balamuthusamy, S. Renal sympathetic nervous system and the effects of denervation on renal arteries. World Journal of Cardiology. 6 (8), 814-823 (2014).
  3. Johns, E. J., Kopp, U. C., DiBona, G. F. Neural control of renal function. Comprehensive Physiology. 1 (2), 767 (2011).
  4. Fink, A. M., Dean, C., Piano, M. R., Carley, D. W. The pedunculopontine tegmentum controls renal sympathetic nerve activity and cardiorespiratory activities in Nembutal-anesthetized rats. PLoS One. 12 (11), e0187956 (2017).
  5. Dean, C. Endocannabinoid modulation of sympathetic and cardiovascular responses to acute stress in the periaqueductal gray of the rat. American Journal of Physiology, Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 300 (3), R771-R779 (2011).
  6. Seagard, J. L., et al. Anandamide content and interaction of endocannabinoid/GABA modulatory effects in the NTS on baroreflex-evoked sympathoinhibition. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 286 (3), H992-H1000 (2004).
  7. Ferreira, C. B., Cravo, S. L., Stocker, S. D. Airway obstruction produces widespread sympathoexcitation: Role of hypoxia, carotid chemoreceptors, and NTS neurotransmission. Physiological Reports. 6 (3), (2018).
  8. Stocker, S. D., Muntzel, M. S. Recording sympathetic nerve activity chronically in rats: Surgery techniques, assessment of nerve activity, and quantification. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 305 (10), H1407-H1416 (2013).
  9. Miki, K., Kosho, A., Hayashida, Y. Method for continuous measurements of renal sympathetic nerve activity and cardiovascular function during exercise in rats. Experimental Physiology. 87 (1), 33-39 (2002).
  10. Huetteman, D. A., Bogie, H. Direct blood pressure monitoring in laboratory rodents via implantable radio telemetry. Methods in Molecular Biology. 573, 57-73 (2009).
  11. Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements. Journal of Visualized Experiments. (59), 3496 (2012).
  12. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (2014).
  13. Scislo, T. J., Augustyniak, R. A., O’Leary, D. S. Differential arterial baroreflex regulation of renal, lumbar, and adrenal sympathetic nerve activity in the rat. American Journal of Physiology. 275, R995-R1002 (1998).
  14. Kopp, U. C., Jones, S. Y., DiBona, G. F. Afferent renal denervation impairs baroreflex control of efferent renal sympathetic nerve activity. American Journal of Physiology, Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (6), R1882-R1890 (2008).
  15. Guild, S. J., et al. Quantifying sympathetic nerve activity: problems, pitfalls and the need for standardization. Experimental Physiology. 95 (1), 41-50 (2010).
  16. Stocker, S. D., Hunwick, K. J., Toney, G. M. Hypothalamic paraventricular nucleus differentially supports lumbar and renal sympathetic outflow in water-deprived rats. Journal of Physiology. 15 (563 Pt 1), 249-263 (2005).
  17. Stocker, S. D., Gordon, K. W. J. Glutamate receptors in the hypothalamic paraventricular nucleus contribute to insulin-induced sympathoexcitation. Neurophysiology. 113 (5), 1302-1309 (2015).
  18. Saponjic, J., Radulovacki, M., Carley, D. W. Injection of glutamate into the pedunculopontine tegmental nuclei of anesthetized rat causes respiratory dysrhythmia and alters EEG and EMG power. Sleep and Breathing. 9 (2), 82-91 (2005).
  19. DiBona, G. F., Jones, S. Y. Dynamic analysis of renal nerve activity responses to baroreceptor denervation in hypertensive rats. Hypertension. 37 (4), 1153-1163 (2001).
  20. Kunitake, T., Kannan, H. Discharge pattern of renal sympathetic nerve activity in the conscious rat: spectral analysis of integrated activity. Journal of Neurophysiology. 84 (6), 2859-2867 (2000).
  21. Machado, B. H., Bonagamba, L. G. Microinjection of L-glutamate into the nucleus tractus solitarii increases arterial pressure in conscious rats. Brain Research. 576 (1), 131-138 (1992).
  22. Murakami, M., et al. Inhalation anesthesia is preferable for recording rat cardiac function using an electrocardiogram. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 37 (5), 834-839 (2014).
  23. Nakamura, T., Tanida, M., Niijima, A., Hibino, H., Shen, J., Nagai, K. Auditory stimulation affects renal sympathetic nerve activity and blood pressure in rats. Neuroscience Letters. 416 (2), 107-112 (2007).
  24. Bardgett, M. E., McCarthy, J. J., Stocker, S. D. Glutamatergic receptor activation in the rostral ventrolateral medulla mediates the sympathoexcitatory response to hyperinsulinemia. Hypertension. 55 (2), 284-290 (2010).
  25. Brozoski, D. T., Dean, C., Hopp, F. A., Seagard, J. L. Uptake blockade of endocannabinoids in the NTS modulates baroreflex-evoked sympathoinhibition. Brain Research. 1059 (2), 197-202 (2005).
  26. Barman, S. M. What can we learn about neural control of the cardiovascular system by studying rhythms in sympathetic nerve activity?. International Journal of Psychophysiology. 103, 69-78 (2016).
  27. Charkoudian, N., Wallin, B. G. Sympathetic neural activity to the cardiovascular system: integrator of systemic physiology and interindividual characteristics. Comprehensive Physiology. 4 (2), 825-850 (2014).
  28. Malpas, S. C. Sympathetic nervous system overactivity and its role in the development of cardiovascular disease. Physiological Reviews. 90 (2), 513-557 (2010).
  29. Chen, W. W., Xiong, X. Q., Chen, Q., Li, Y. H., Kang, Y. M., Zhu, G. Q. Cardiac sympathetic afferent reflex and its implications for sympathetic activation in chronic heart failure and hypertension. Acta Physiologica. 213 (4), 778-794 (2015).
  30. Linz, D., et al. Modulation of renal sympathetic innervation: Recent insights beyond blood pressure control. Clinical Autonomic Research. , (2018).
check_url/kr/58205?article_type=t

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Cite This Article
Fink, A. M., Dean, C. Quantifying Acute Changes in Renal Sympathetic Nerve Activity in Response to Central Nervous System Manipulations in Anesthetized Rats. J. Vis. Exp. (139), e58205, doi:10.3791/58205 (2018).

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