Summary

Neurogenesis bruke P19 embryo kreftceller

Published: April 27, 2019
doi:

Summary

Den P19 musen embryonale kreftcelle linje (P19 cellelinje) er mye brukt for å studere den molekylære mekanismen av neurogenesis med stor forenkling i forhold til in vivo analyse. Her presenterer vi en protokoll for retinoic acid-indusert neurogenesis i P19 cellelinjen.

Abstract

Den P19 cellelinje avledet fra en mus embryo-avledet teratocarcinoma har evnen til å differensiere til tre bakterie lag. I nærvær av retinoic syre (RA), suspensjonen kultivert P19 cellelinjen er indusert å differensiere til neurons. Dette fenomenet undersøkes i stor utstrekning som en neurogenesis modell in vitro. Derfor er P19 cellelinjen svært nyttig for molekylær og cellulær studier knyttet til neurogenesis. Men protokoller for neuronal differensiering av P19 cellelinje beskrevet i litteraturen er svært komplekse. Metoden utviklet i denne studien er enkel og vil spille en rolle i Elucidating av molekylære mekanismer i neurodevelopmental unormalt og nevrodegenerative sykdommer.

Introduction

Under embryoutvikling omdannes et enkelt celle lag til tre separate bakterie lag1,2,3. For å øke forsknings mulighetene for fenomener som forekommer i Vivo, har generering av tredimensjonale aggregater (embryonale organer) blitt utviklet som en praktisk modell. Cellulære aggregater dannet på denne måten kan utsettes for ulike forhold forårsaker celle differensiering, som reflekterer utviklingen av embryo4,5. P19 murine embryonale kreftcelle linje (P19 cellelinje) brukes vanligvis som en cellulær modell for neurogenesis studier in vitro6,7,8. Den P19 cellelinjen utstillinger typiske pluripotent stilk cellen funksjoner og kan differensiere til neurons i nærvær av retinoic syre (RA) under celle aggregering etterfulgt av neurite utvekst under tilhenger forhold. Videre er udifferensierte P19 cellelinje også i stand til å forme muskel-og cardiomyocyte-lignende celler under påvirkning av dimethyl sulfoxide (DMSO)9,10,11,12.

Mange metoder13,14,15,16 har blitt rapportert for neuronal differensiering, men metodikken er noen ganger komplisert og ikke lett å forstå ved bare å lese beskrivelsene. For eksempel, protokoller noen ganger krever en kombinasjon av Dulbecco ‘ s modifisert Eagle medium (DMEM) medium supplert med en blanding av kalv serum (CS) og fosterets storfe serum (FBS)13. Videre medier brukes for neuronal utvikling er ofte sammensatt av Neurobasal og B27 kosttilskudd13,14,15,16. Som sådan, eksisterende metoder inneholder kompleksitet i forberedelsene og vårt mål her er å forenkle protokollene. I denne studien, viste vi at DMEM med FBS kan utnyttes for å opprettholde P19 cellelinjen (DMEM + 10% FBS) samt for neuronal utvikling (DMEM + 5% FBS + RA). Denne forenklede metoden for neurogenesis ved hjelp av P19 cellelinje tillater oss å studere den molekylære mekanismen av hvordan neurons utvikles. Videre er forskning på nevrodegenerative sykdommer som Alzheimers sykdom også gjennomført ved hjelp P19 cellelinje17,18, og vi tror at metoden utviklet i denne studien vil spille en rolle i Elucidating molekylære mekanismer i neurodevelopmental unormalt og nevrodegenerative sykdommer.

Protocol

1. kultur vedlikehold Kultur P19 cellelinjen i vedlikehold medium (Dulbecco ‘ s modifiserte Eagle ‘ s medium med 4 500 mg/L av glukose supplert med 10% FBS, 100 enheter/mL penicillin og 100 enheter/mL Streptomycin). Ruge ved 37 ° c og 5% CO2. 2. dyrking celler Når cellene nå ca 80% samløpet, fjerne brukt medium fra cellen kulturen kanner (areal 25 cm2). Vask cellene med 2 mL fosfat bufret saltvann (PBS) uten kalsium og magnesium.</l…

Representative Results

Den forenklede ordningen med protokollen for neurogenesis induksjon i P19 cellelinjen er presentert i figur 1. For å definere tegnet av P19 cellelinjen i en udifferensierte tilstand og under neurogenesis, RT-PCR (omvendt transkripsjon-polymerase kjedere reaksjon) metoden ble brukt. Den udifferensierte P19 cellelinje uttrykte pluripotency gener som organisk/carnitine transporter4 (Oct4) og Nanog Homeobox (Nanog). Neurogenesis indusert av cel…

Discussion

Her beskriver vi en enkel protokoll for neurogenesis ved hjelp av P19 cellelinje. Selv om mange rapporter har blitt publisert i denne forbindelse, er en detaljert metodikk for neurogenesis induksjon bruker P19 cellelinje uklart. Videre benyttet vi en enkel høy glukose (4 500 mg/L) DMEM medium med 10% FBS for hele eksperimentet. Dette tillot oss å utføre neurogenic eksperimentet på en brukervennlig måte og utvide bruken av denne metoden for fremtiden.

De mest kritiske punktene i denne prot…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Studien ble økonomisk støttet av National Science Centre, Polen (Grant no. UMO-2017/25/N/NZ3/01886) og KNOW (ledende nasjonalt forskningssenter) vitenskapelig konsortium “sunn dyr-trygg mat”, vedtak av departementet for vitenskap og høyere utdanning no. 05-1/KNOW2/2015

Materials

6x DNA Loading Dye EURx E0260-01
Agarose Sigma- Aldrich A9539
cDNA synthesis kit EURx E0801-02
DAPI (4′,6-Diamidine-2′-phenylindole dihydrochloride) Sigma- Aldrich 10236276001 Working concentration: 1 μg/mL
DMEM high glucose (4.5 g/L) with L-glutamine Lonza BE12-604Q
Ethanol 99.8% Chempur CHEM*613964202
Fetal Bovine Serum (FBS) EURx E5050-03
MAP2 antibody Thermo Fisher Scientific PA517646 Dilution 1:100
PCR reaction kit EURx E0411-03
Penicillin/Streptomycin 10K/10K Lonza DE17-602E
Phosphate Buffered Saline (PBS), 1x concentrated without Ca2+, Mg2+ Lonza BE17- 517Q
Retinoic acid Sigma- Aldrich R2625-50MG  dissolved in 99.8% ethanol; store in -20 °C up to 6 months
Secondary Antibody (Alexa Fluor 488) Thermo Fisher Scientific A11034 Dilution 1:500
Skim milk Sigma- Aldrich 1153630500
TBE Buffer Thermo Fisher Scientific B52
Triton-X 100 Sigma- Aldrich T8787-100ML
Trypsin 0.25% – EDTA in HBSS, without  Ca2+, Mg2+,with Phenol Red biosera LM-T1720/500
Cell Culture Plastics
1 mL Serological Pipettes Profilab 515.01
10 mL Serological Pipettes Profilab 515.10
100 mm dish dedicated for suspension culture Corning C351029
15 mL centrifuge tubes Sigma- Aldrich CLS430791-500EA
5 mL Serological Pipettes Profilab 515.05
6-well plate Corning CLS3516
Cell culture flasks, surface area 25 cm2 Sigma- Aldrich CLS430639-200EA

References

  1. Ramkumar, N., Anderson, K. V. SnapShot: mouse primitive streak. Cell. 146 (3), 488 (2011).
  2. Solnica-Krezel, L., Sepich, D. S. Gastrulation: making and shaping germ layers. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 28, 687-717 (2012).
  3. Tam, P. P. L., Gad, J. M., Stern, C. D. Chapter 16: Gastrulation in the Mouse Embryo. Gastrulation: From Cells to Embryo. , 233-262 (2004).
  4. Sajini, A. A., Greder, L. V., Dutton, J. R., Slack, J. M. W. Loss of Oct4 expression during the development of murine embryoid bodies. 발생학. 371 (2), 170-179 (2012).
  5. ten Berge, D., et al. Wnt Signaling Mediates Self-Organization and Axis Formation in Embryoid Bodies. Cell Stem Cell. 3 (5), 508-518 (2008).
  6. Bain, G., Ray, W. J., Yao, M., Gottlieb, D. I. From embryonal carcinoma cells to neurons: the P19 pathway. Bioessays. 16 (5), 343-348 (1994).
  7. Lin, Y. T., et al. YAP regulates neuronal differentiation through Sonic hedgehog signaling pathway. Experimental Cell Research. 318 (15), 1877-1888 (2012).
  8. Neo, W. H., et al. MicroRNA miR-124 controls the choice between neuronal and astrocyte differentiation by fine-tuning Ezh2 expression. Journal of Biological Chemistry. 289 (30), 20788-20801 (2014).
  9. Jones-Villeneuve, E., McBurney, M. W., Rogers, K. A., Kalnins, V. I. Retinoic acid induces embryonal carcinoma cells to differentiate into neurons and glial cells. The Journal of Cell Biology. 94 (2), 253-262 (1982).
  10. McBurney, M. W., Rogers, B. J. Isolation of male embryonal carcinoma cells and their chromosome replication patterns. 발생학. 89 (2), 503-508 (1982).
  11. Jones-Villeneuve, E., Rudnicki, M. A., Harris, J. F., McBurney, M. Retinoic acid-induced neural differentiation of embryonal carcinoma cells. Molecular and Cellular Biology. 3 (12), 2271-2279 (1983).
  12. Jasmin, D. C., Spray, A. C., Campos de Carvalho, R., Mendez-Otero, Chemical induction of cardiac differentiation in P19 embryonal carcinoma stem cells. Stem Cells and Development. 19 (3), 403-412 (2010).
  13. Solari, M., Paquin, J., Ducharme, P., Boily, M. P19 neuronal differentiation and retinoic acid metabolism as criteria to investigate atrazine, nitrite, and nitrate developmental toxicity. Toxicological Sciences. 113 (1), 116-126 (2010).
  14. Babuska, V., et al. Characterization of P19 cells during retinoic acid induced differentiation. Prague Medical Report. 111 (4), 289-299 (2010).
  15. Monzo, H. J., et al. A method for generating high-yield enriched neuronal cultures from P19 embryonal carcinoma cells. Journal of Neuroscience Methods. 204 (1), 87-103 (2012).
  16. Popova, D., Karlsson, J., Jacobsson, S. O. P. Comparison of neurons derived from mouse P19, rat PC12 and human SH-SY5Y cells in the assessment of chemical- and toxin-induced neurotoxicity. BMC Pharmacology and Toxicology. 18 (1), 42 (2017).
  17. Woodgate, A., MacGibbon, G., Walton, M., Dragunow, M. The toxicity of 6-hydroxydopamine on PC12 and P19 cells. Molecular Brain Research. 69 (1), 84-92 (1999).
  18. Tsukane, M., Yamauchi, T. Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II mediates apoptosis of P19 cells expressing human tau during neural differentiation with retinoic acid treatment. Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. 24 (2), 365-371 (2009).
  19. Adler, S., Pellizzer, C., Paparella, M., Hartung, T., Bremer, S. The effects of solvents on embryonic stem cell differentiation. Toxicology in Vitro. 20 (3), 265-271 (2006).
  20. Jones-Villeneuve, E. M., McBurney, M. W., Rogers, K. A., Kalnins, V. I. Retinoic acid induces embryonal carcinoma cells to differentiate into neurons and glial cells. The Journal of Cell Biology. 94 (2), 253-262 (1982).
  21. Roy, B., Taneja, R., Chambon, P. Synergistic activation of retinoic acid (RA)-responsive genes and induction of embryonal carcinoma cell differentiation by an RA receptor alpha (RAR alpha)-, RAR beta-, or RAR gamma-selective ligand in combination with a retinoid X receptor-specific ligand. Molecular and Cellular Biology. 15 (12), 6481-6487 (1995).
  22. Hamada-Kanazawa, M., et al. Sox6 overexpression causes cellular aggregation and the neuronal differentiation of P19 embryonic carcinoma cells in the absence of retinoic acid. FEBS Letters. 560 (1-3), 192-198 (2004).
  23. Tangsaengvit, N., Kitphati, W., Tadtong, S., Bunyapraphatsara, N., Nukoolkarn, V. Neurite Outgrowth and Neuroprotective Effects of Quercetin from Caesalpinia mimosoides Lamk on Cultured P19-Derived Neurons. Evidence-Based Complementary and Alternative. , 838051 (2013).
  24. Magnuson, D. S., Morassutti, D. J., McBurney, M. W., Marshall, K. C. Neurons derived from P19 embryonal carcinoma cells develop responses to excitatory and inhibitory neurotransmitters. Developmental Brain Research. 90 (1-2), 141-150 (1995).
  25. MacPherson, P., Jones, S., Pawson, P., Marshall, K., McBurney, M. P19 cells differentiate into glutamatergic and glutamate-responsive neurons in vitro. 신경과학. 80 (2), 487-499 (1997).
  26. Hong, S., et al. Methyltransferase-inhibition interferes with neuronal differentiation of P19 embryonal carcinoma cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 377 (3), 935-940 (2008).
  27. Wenzel, M., et al. Identification of a classic nuclear localization signal at the N terminus that regulates the subcellular localization of Rbfox2 isoforms during differentiation of NMuMG and P19 cells. FEBS Letters. 590 (24), 4453-4460 (2016).
  28. Harada, Y., et al. Overexpression of Cathepsin E Interferes with Neuronal Differentiation of P19 Embryonal Teratocarcinoma Cells by Degradation of N-cadherin. Cellular and Molecular Neurobiology. 37 (3), 437-443 (2017).
  29. Morassutti, D. J., Staines, W. A., Magnuson, D. S., Marshall, K. C., McBurney, M. W. Murine embryonal carcinoma-derived neurons survive and mature following transplantation into adult rat striatum. 신경과학. 58 (4), 753-763 (1994).
  30. Magnuson, D. S., Morassutti, D. J., Staines, W. A., McBurney, M. W., Marshall, K. C. In vivo electrophysiological maturation of neurons derived from a multipotent precursor (embryonal carcinoma) cell line. Developmental Brain Research. 84 (1), 130-141 (1995).
check_url/kr/58225?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Leszczyński, P., Śmiech, M., Teeli, A. S., Zołocińska, A., Słysz, A., Pojda, Z., Pierzchała, M., Taniguchi, H. Neurogenesis Using P19 Embryonal Carcinoma Cells. J. Vis. Exp. (146), e58225, doi:10.3791/58225 (2019).

View Video