Summary

Neurogenes med P19 embryonala cancerceller

Published: April 27, 2019
doi:

Summary

Den P19 mus embryonal carcinoma cellinjer (P19 cellinjer) används ofta för att studera den molekylära mekanismen för neurogenes med stor förenkling jämfört med in vivo analys. Här presenterar vi ett protokoll för retinoinsyra syra-inducerad neurogenes i P19 cell linjen.

Abstract

Den P19 cellinjer härrör från en mus embryo-derived teratocarcinom har förmågan att differentiera till de tre bakterie lagren. I närvaro av retinoinsyra syra (RA), den suspension odlade P19 cellinjer induceras för att differentiera till nervceller. Detta fenomen utreds utförligt som en neurogenes modell in vitro. Därför, den P19 cellinjer är mycket användbart för molekylära och cellulära studier i samband med neurogenes. Emellertid, protokoll för neuronala differentiering av P19 cellinjer som beskrivs i litteraturen är mycket komplexa. Den metod som utvecklats i denna studie är enkel och kommer att spela en roll i att belysa de molekylära mekanismerna i neurologiska utvecklingsstörningar och neurodegenerativa sjukdomar.

Introduction

Under embryonal utveckling, ett enda cellskikt omvandlas till tre separata bakterie skikt1,2,3. För att öka forskningsmöjligheterna för fenomen som inträffar in vivo har generering av tredimensionella aggregat (embryonala kroppar) utvecklats som en praktisk modell. Cellulära aggregat bildas på detta sätt kan utsättas för olika förhållanden som orsakar celldifferentiering, som återspeglar utvecklingen av embryot4,5. Den P19 murina embryonal carcinoma cell linje (P19 cellinjer) används ofta som en cellulär modell för neurogenes studier in vitro-6,7,8. Den P19 cellinjer uppvisar typiska pluripotenta stamceller funktioner och kan differentiera till nervceller i närvaro av retinoinsyra (RA) under cell aggregering följt av neurit utväxt under anhängare villkor. Dessutom, den odifferentierade P19 cell linjen är också kapabel att bilda muskel-och kardiomyocyte-liknande celler under påverkan av dimetylsulfoxid (DMSO)9,10,11,12.

Många metoder13,14,15,16 har rapporterats för neuronala differentiering, men metoden är ibland komplicerat och inte lätt att förstå genom att bara läsa beskrivningarna. Till exempel, protokoll kräver ibland en kombination av Dulbecco modifierade Eagle medium (DMEM) medium kompletteras med en blandning av kalv serum (CS) och foster bovint serum (FBS)13. Dessutom, medier som används för neuronala utveckling består ofta av neurobasal och B27 kosttillskott13,14,15,16. Som sådan, befintliga metoder innehåller komplexitet i deras beredning och vårt mål här är att förenkla protokollen. I denna studie, vi visade att DMEM med FBS kan utnyttjas för att upprätthålla P19 cellinjer (DMEM + 10% FBS) samt för neuronala utveckling (DMEM + 5% FBS + RA). Denna förenklade metod för neurogenes med hjälp av P19 cellinjer ger oss möjlighet att studera den molekylära mekanismen för hur neuroner utvecklas. Dessutom bedrivs även forskning om neurodegenerativa sjukdomar som Alzheimers sjukdom med hjälp av P19 cell linje17,18, och vi anser att den metod som utvecklats i denna studie kommer att spela en roll i att belysa molekylära mekanismer i neurologiska utvecklingsstörningar och neurodegenerativa sjukdomar.

Protocol

1. underhåll av kulturen Odla P19 cellinjer i underhålls medium (Dulbecco ‘ s Modified Eagle ‘ s medium med 4 500 mg/L glukos kompletterat med 10% FBS, 100 enheter/mL penicillin och 100 enheter/mL streptomycin). Inkubera vid 37 ° c och 5% CO2. 2. subculturering av celler När cellerna når cirka 80% Confluence, ta bort det förbrukade mediet från cell odlings flaskans kolvar (yta 25 cm2). Tvätta cellerna med 2 mL fosfatbuffrad salt…

Representative Results

Den förenklade systematiken i protokollet för neurogenes induktion i P19 cellinjer presenteras i figur 1. För att definiera teckenet av den P19 cellen fodrar i ett odifferentierat påstå, och under Neurogenesis användes den RT-PCR (omvänd Transkription-Polymerase kedjar reaktion) metoden. Den odifferentierade P19 cellinaden uttryckte pluripotens gener såsom organisk katjon/karnitin transporter4 (Oct4) och nanog Hedgehog (nanog). Neuro…

Discussion

Här beskriver vi ett enkelt protokoll för neurogenes med hjälp av P19-celllinjen. Även om många rapporter har publicerats i detta avseende, en detaljerad metod för neurogenes induktion med P19 cellinjer är fortfarande oklart. Dessutom utnyttjade vi en enkel hög glukos (4 500 mg/L) DMEM medium med 10% FBS för hela experimentet. Detta tillät oss att utföra det neurogena experimentet på ett användarvänligt sätt och utöka användningen av denna metod för framtiden.

De mest kritisk…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Studien stöddes ekonomiskt av National Science Centre, Polen (Grant No. UMO-2017/25/N/NZ3 nätters/01886) och KNOW (ledande nationellt forskningscentrum) vetenskapligt konsortium “hälsosamma djur säkra livsmedel”, beslut av ministeriet för vetenskap och högre utbildning nr. 05-1/KNOW2/2015

Materials

6x DNA Loading Dye EURx E0260-01
Agarose Sigma- Aldrich A9539
cDNA synthesis kit EURx E0801-02
DAPI (4′,6-Diamidine-2′-phenylindole dihydrochloride) Sigma- Aldrich 10236276001 Working concentration: 1 μg/mL
DMEM high glucose (4.5 g/L) with L-glutamine Lonza BE12-604Q
Ethanol 99.8% Chempur CHEM*613964202
Fetal Bovine Serum (FBS) EURx E5050-03
MAP2 antibody Thermo Fisher Scientific PA517646 Dilution 1:100
PCR reaction kit EURx E0411-03
Penicillin/Streptomycin 10K/10K Lonza DE17-602E
Phosphate Buffered Saline (PBS), 1x concentrated without Ca2+, Mg2+ Lonza BE17- 517Q
Retinoic acid Sigma- Aldrich R2625-50MG  dissolved in 99.8% ethanol; store in -20 °C up to 6 months
Secondary Antibody (Alexa Fluor 488) Thermo Fisher Scientific A11034 Dilution 1:500
Skim milk Sigma- Aldrich 1153630500
TBE Buffer Thermo Fisher Scientific B52
Triton-X 100 Sigma- Aldrich T8787-100ML
Trypsin 0.25% – EDTA in HBSS, without  Ca2+, Mg2+,with Phenol Red biosera LM-T1720/500
Cell Culture Plastics
1 mL Serological Pipettes Profilab 515.01
10 mL Serological Pipettes Profilab 515.10
100 mm dish dedicated for suspension culture Corning C351029
15 mL centrifuge tubes Sigma- Aldrich CLS430791-500EA
5 mL Serological Pipettes Profilab 515.05
6-well plate Corning CLS3516
Cell culture flasks, surface area 25 cm2 Sigma- Aldrich CLS430639-200EA

References

  1. Ramkumar, N., Anderson, K. V. SnapShot: mouse primitive streak. Cell. 146 (3), 488 (2011).
  2. Solnica-Krezel, L., Sepich, D. S. Gastrulation: making and shaping germ layers. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 28, 687-717 (2012).
  3. Tam, P. P. L., Gad, J. M., Stern, C. D. Chapter 16: Gastrulation in the Mouse Embryo. Gastrulation: From Cells to Embryo. , 233-262 (2004).
  4. Sajini, A. A., Greder, L. V., Dutton, J. R., Slack, J. M. W. Loss of Oct4 expression during the development of murine embryoid bodies. 발생학. 371 (2), 170-179 (2012).
  5. ten Berge, D., et al. Wnt Signaling Mediates Self-Organization and Axis Formation in Embryoid Bodies. Cell Stem Cell. 3 (5), 508-518 (2008).
  6. Bain, G., Ray, W. J., Yao, M., Gottlieb, D. I. From embryonal carcinoma cells to neurons: the P19 pathway. Bioessays. 16 (5), 343-348 (1994).
  7. Lin, Y. T., et al. YAP regulates neuronal differentiation through Sonic hedgehog signaling pathway. Experimental Cell Research. 318 (15), 1877-1888 (2012).
  8. Neo, W. H., et al. MicroRNA miR-124 controls the choice between neuronal and astrocyte differentiation by fine-tuning Ezh2 expression. Journal of Biological Chemistry. 289 (30), 20788-20801 (2014).
  9. Jones-Villeneuve, E., McBurney, M. W., Rogers, K. A., Kalnins, V. I. Retinoic acid induces embryonal carcinoma cells to differentiate into neurons and glial cells. The Journal of Cell Biology. 94 (2), 253-262 (1982).
  10. McBurney, M. W., Rogers, B. J. Isolation of male embryonal carcinoma cells and their chromosome replication patterns. 발생학. 89 (2), 503-508 (1982).
  11. Jones-Villeneuve, E., Rudnicki, M. A., Harris, J. F., McBurney, M. Retinoic acid-induced neural differentiation of embryonal carcinoma cells. Molecular and Cellular Biology. 3 (12), 2271-2279 (1983).
  12. Jasmin, D. C., Spray, A. C., Campos de Carvalho, R., Mendez-Otero, Chemical induction of cardiac differentiation in P19 embryonal carcinoma stem cells. Stem Cells and Development. 19 (3), 403-412 (2010).
  13. Solari, M., Paquin, J., Ducharme, P., Boily, M. P19 neuronal differentiation and retinoic acid metabolism as criteria to investigate atrazine, nitrite, and nitrate developmental toxicity. Toxicological Sciences. 113 (1), 116-126 (2010).
  14. Babuska, V., et al. Characterization of P19 cells during retinoic acid induced differentiation. Prague Medical Report. 111 (4), 289-299 (2010).
  15. Monzo, H. J., et al. A method for generating high-yield enriched neuronal cultures from P19 embryonal carcinoma cells. Journal of Neuroscience Methods. 204 (1), 87-103 (2012).
  16. Popova, D., Karlsson, J., Jacobsson, S. O. P. Comparison of neurons derived from mouse P19, rat PC12 and human SH-SY5Y cells in the assessment of chemical- and toxin-induced neurotoxicity. BMC Pharmacology and Toxicology. 18 (1), 42 (2017).
  17. Woodgate, A., MacGibbon, G., Walton, M., Dragunow, M. The toxicity of 6-hydroxydopamine on PC12 and P19 cells. Molecular Brain Research. 69 (1), 84-92 (1999).
  18. Tsukane, M., Yamauchi, T. Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II mediates apoptosis of P19 cells expressing human tau during neural differentiation with retinoic acid treatment. Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. 24 (2), 365-371 (2009).
  19. Adler, S., Pellizzer, C., Paparella, M., Hartung, T., Bremer, S. The effects of solvents on embryonic stem cell differentiation. Toxicology in Vitro. 20 (3), 265-271 (2006).
  20. Jones-Villeneuve, E. M., McBurney, M. W., Rogers, K. A., Kalnins, V. I. Retinoic acid induces embryonal carcinoma cells to differentiate into neurons and glial cells. The Journal of Cell Biology. 94 (2), 253-262 (1982).
  21. Roy, B., Taneja, R., Chambon, P. Synergistic activation of retinoic acid (RA)-responsive genes and induction of embryonal carcinoma cell differentiation by an RA receptor alpha (RAR alpha)-, RAR beta-, or RAR gamma-selective ligand in combination with a retinoid X receptor-specific ligand. Molecular and Cellular Biology. 15 (12), 6481-6487 (1995).
  22. Hamada-Kanazawa, M., et al. Sox6 overexpression causes cellular aggregation and the neuronal differentiation of P19 embryonic carcinoma cells in the absence of retinoic acid. FEBS Letters. 560 (1-3), 192-198 (2004).
  23. Tangsaengvit, N., Kitphati, W., Tadtong, S., Bunyapraphatsara, N., Nukoolkarn, V. Neurite Outgrowth and Neuroprotective Effects of Quercetin from Caesalpinia mimosoides Lamk on Cultured P19-Derived Neurons. Evidence-Based Complementary and Alternative. , 838051 (2013).
  24. Magnuson, D. S., Morassutti, D. J., McBurney, M. W., Marshall, K. C. Neurons derived from P19 embryonal carcinoma cells develop responses to excitatory and inhibitory neurotransmitters. Developmental Brain Research. 90 (1-2), 141-150 (1995).
  25. MacPherson, P., Jones, S., Pawson, P., Marshall, K., McBurney, M. P19 cells differentiate into glutamatergic and glutamate-responsive neurons in vitro. 신경과학. 80 (2), 487-499 (1997).
  26. Hong, S., et al. Methyltransferase-inhibition interferes with neuronal differentiation of P19 embryonal carcinoma cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 377 (3), 935-940 (2008).
  27. Wenzel, M., et al. Identification of a classic nuclear localization signal at the N terminus that regulates the subcellular localization of Rbfox2 isoforms during differentiation of NMuMG and P19 cells. FEBS Letters. 590 (24), 4453-4460 (2016).
  28. Harada, Y., et al. Overexpression of Cathepsin E Interferes with Neuronal Differentiation of P19 Embryonal Teratocarcinoma Cells by Degradation of N-cadherin. Cellular and Molecular Neurobiology. 37 (3), 437-443 (2017).
  29. Morassutti, D. J., Staines, W. A., Magnuson, D. S., Marshall, K. C., McBurney, M. W. Murine embryonal carcinoma-derived neurons survive and mature following transplantation into adult rat striatum. 신경과학. 58 (4), 753-763 (1994).
  30. Magnuson, D. S., Morassutti, D. J., Staines, W. A., McBurney, M. W., Marshall, K. C. In vivo electrophysiological maturation of neurons derived from a multipotent precursor (embryonal carcinoma) cell line. Developmental Brain Research. 84 (1), 130-141 (1995).
check_url/kr/58225?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Leszczyński, P., Śmiech, M., Teeli, A. S., Zołocińska, A., Słysz, A., Pojda, Z., Pierzchała, M., Taniguchi, H. Neurogenesis Using P19 Embryonal Carcinoma Cells. J. Vis. Exp. (146), e58225, doi:10.3791/58225 (2019).

View Video