Summary

Inducerbar og Reversible dominerende-negative (DN) Protein hæmning

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Her præsenterer vi en protokol for at udvikle en dominerende negativ inducerbar system, som kan enhver protein betinget inaktiveret ved reversibelt overekspression en dominerende negativ mutant version af det.

Abstract

Dominerende-negative (DN) protein hæmning er en kraftfuld metode til at manipulere protein funktion og tilbyder flere fordele sammenlignet med andre genom-baserede tilgange. For eksempel, selv om kimære og Cre-LoxP rettet mod strategier har været udbredt, de iboende begrænsninger af disse strategier (dvs, utætte promotor aktivitet, mosaik Cre udtryk, etc.) har betydeligt begrænset deres ansøgning. En fuldstændig sletning af mange endogene gener er desuden embryonically dødbringende, hvilket gør det umuligt at studere genfunktion i postnatal liv. For at imødegå disse udfordringer, vi har foretaget væsentlige ændringer til en tidlig genteknologi protokol og kombineret et kort (transgene) version af Rb1 gen med et lysosomale protease procathepsin B (CB), til at generere en DN musemodel af Rb1 (CBRb). På grund af tilstedeværelsen af en lysosomale protease dirigeres hele CB-RB1 fusion protein og dens interagerende komplekse til proteasom-medieret nedbrydning. Derudover muliggør tilstedeværelsen af en tetracyklin inducer (rtTA) element i den transgene konstruere en inducerbar og reversibel regulering af RB1 protein. Tilstedeværelsen af en allestedsnærværende ROSA-CAG promotor i CBRb musen model gør det et nyttigt værktøj til at udføre vandrende og reversible Rb1 gen ablation og give forskere en ressource for at forstå sin aktivitet i stort set enhver celletype hvor RB1 udtrykkes.

Introduction

De fleste tilgange med sigte på gen- og protein ablations stole på permanent processer, som generelt fører til fuldstændig fjernelse eller trunkering af genet, RNA sekvenser eller protein af interesse (POI). Det overordnede mål med denne metode er at ingeniør en rekombinant protein for at ophæve funktionen af endogent, wild-type protein. Vi har fornyet og moderniseret en alternativ strategi1,2, som giver mulighed for den midlertidige ablation af en POI gennem DN hæmning. Denne metode virker for både multimeriske og monomere peptider men er bedst egnet til proteiner, der fungerer i en multimeriske forsamling.

Metoden består af sammensmeltning den lysosomale protease CB til en underenhed af en multimeriske POI (CB fusion komplekse). Den resulterende CB fusion komplekse kan interagere med og proteolytically fordøje den endogene protein eller aflede den hele CB-POI kompleks at lysosomet at være forringet3. Desuden, en kombination af CB fusion kompleks med inducerbar arten af tetracyclin-kontrollerede transcriptional (Millie) aktiveringssystem tillader for inducerbar og kontrolleret udtryk af transgenet i en reversibel mode2. Skønt nyttig i mange situationer, kan den fuldstændig sletning af gener eller proteiner in vivo resultere i dødelighed4,5,6. Væv-specifikke, betinget sletning af nogle gener eller proteiner ved hjælp af Cre/Lox system kan ligeledes ikke være ligetil, som det vil i sidste ende føre til permanent tab af kritiske genomisk elements7. Derfor, afhængigt af genet eller POI, ingen af disse tilgange vil være effektive i at yde en nyttig model for efterfølgende undersøgelser, især gener eller proteiner funktionelle studier i sen postnatal og voksen mus.

For at omgå de problemer i forbindelse med sådanne tilgange og give proof-of-principle på effektiviteten af den foreslåede metode, har vi valgt at teste metoden præsenteret her ved at generere en betinget DN version af Retinoblastom 1 (RB1) protein. Flere muligheder har været foreslået8,9,10 at afskaffe funktionen af endogent RB1; men alle af dem står over for nogle af de samme begrænsninger diskuteret ovenfor: permanent kønscelleoverførsel sletning af RB1 er embryonically dødbringende, og i overensstemmelse med dens tumor suppressor rolle, permanent RB1 betinget sletning fører til en bred vifte af tumorer11. Selvom en DN version af RB1 ikke synes at forekomme naturligt, et bedre alternativ til de aktuelt tilgængelige strategier bør give mulighed for et tidsligt styret Inaktiveringen af den endogene RB1 og give en alternativ mekanisme til sidst gendanne dens funktion. Grundlaget for sådan en konstruktion blev beskrevet mere end to årtier siden1. Men på grund af teknologiske begrænsninger, det manglede en mekanisme til kontrol transgen aktivering, svar og væv specificitet. Denne undersøgelse er først til at kombinere elegance af doxycyclin (Dox)-afhængige transcriptional system med en manipuleret transgene konstruktion af lysosomale protease CB og Rb1 proteiner. Den resulterende CBRb musen model giver mulighed for en midlertidigt regulerede Dox-medieret RB1 forordning2. Fordelen ved at bruge sådan en proteom-baseret tilgang til at studere genfunktion er, at det kan vedtages for enhver gen af interesse, med minimal information om sin aktivitet.

Den foreslåede DN transgen strategi tilbyder mange fordele i forhold til traditionelle metoder. Første, DN protein hæmning fører til kun en delvis ablation i protein aktivitet, dermed bevare en resterende endogene udtryk. Et sådant resultat er ønskeligt i situationer hvor en fuldstændig fjernelse af protein aktivitet fører til embryonale dødelighed, stærkt begrænse enhver undersøgelse for at studere genfunktion i en levende mus. Andet, tilstedeværelsen af Millie system muliggør transgen aktivisering kun ved tilstedeværelse af et antibiotikum, der muliggør en effektiv og reversible kontrol af transgenet aktivitet. Således, ved at ophøre med den antibiotikaet administration, transgene systemet kan deaktiveres, og en normal RB1 udtryk er tilbage på plads. For det tredje kan specificiteten af transgenet udtryk variere afhængigt af promotor af valg. Mens vi har valgt den allestedsnærværende ROSA-CAG promotor for proof-of-principle, er placere transgen et væv-specifikke promotor tilbøjelige til at begrænse uønskede transgen udtryk og lette undersøgelser om den terapeutiske anvendelse af denne transgen metodologi.

Protocol

Generation af transgene CBRb musen og alle dyrs pleje og eksperimenter i forbindelse med undersøgelsen blev godkendt af Creighton University institutionelle dyrs pleje og brug udvalg (IACUC) og udføres af deres retningslinjer. 1. transgene CB-Myc6-Rb1 konstruktion Bemærk: Kloning af CBRb i en pTet_Splice vektor blev gjort i en multi-step proces (figur 1A og 1B). Udføre …

Representative Results

Generelt, designe en DN mutation kræver en betydelig mængde oplysninger om struktur og funktion af POI. Derimod er DN strategien præsenteret her især nyttig, når de strukturelle og funktionelle oplysninger for POI’EN er begrænset. Hvis POI’ET er en multimeriske protein, en sammensmeltning af en underenhed til en lysosomale protease overvejende kan hæmme den forsamlede multimer og potentielt andre ligander gennem en kombination af proteolyse af de endogene underenheder og subcellul?…

Discussion

For at omgå de begrænsninger, der er forbundet med traditionelle transgene strategier, forsøgte vi at generere en musemodel, hvor kan en endogen POI betinget inaktiveret ved overekspression en DN mutant form af det på en spatiotemporelle måde. For at ophæve funktionen af endogent POI’er, har flere muligheder været foreslået15,16,17. Vi har ændret en tidligere genetiske strategi1 ved at kombinere …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

PCS2 + CB-Myc6 vektor var en gave fra Marshall Horwitz (University of Washington, Seattle, WA, USA). HEI-OC1 celler blev venligst leveret af Fedrico Kalinec (David Geffen School of Medicine, UCLA, Los Angeles, CA, USA). Teknisk støtte blev leveret fra den UNMC mus genom Engineering Core (C.B. Annis, Don Harms, Rolen Quadros) og Creighton University integreret biomedicinsk Imaging anlægget (Richard Hallworth, John Billheimer). UNMC musen genom Engineering blev støttet af en institutionel udvikling Award (idé) fra NIH/NIGMS, give nummer P20 GM103471. Den integrerede biomedicinsk Imaging facilitet blev støttet af Creighton University School of Medicine og grants GM103427 og GM110768 fra NIH/NIGMS. Anlægget blev bygget med støtte fra tilskud fra det nationale Center for forskningsressourcer (RR016469) og NIGMS (GM103427). Mus linjer oprettes i denne undersøgelse blev opretholdt på Creighton Universitys dyr ressource facilitet, hvis infrastrukturen er blevet forbedret gennem et tilskud af NIH/NCRR G20RR024001. Dette arbejde fik forbi støtte gennem en NIH/NCRR 5P20RR018788-/ NIH/NIGMS 8P20GM103471 COBRE yde (til Shelley D. Smith), NIH/ORIP R21OD019745-01A1 (S.M.R.-S.) og en spirende forskning tilskud fra Hearing Health Foundation (til S. Vagn). Indholdet af denne forskning er udelukkende ansvarlig for forfattere og repræsenterer ikke nødvendigvis de officielle synspunkter af National Institutes of Health.

Materials

Dulbecco's Modified Eagle's Medium, DMEM GIBCO-BRL 11965-084
Minimum Essential Medium Eagle, MEME  Sigma  M8042
Fetal bovine serum Sigma  F2442 
Lipofectamine  DharmaFECT T-2010-03
Sal I Roche 11745622
EcoRV-HF New England BioLabs R3195S
NotI Roche 13090730
CaspaTag  Millipore APT523
DAPI Sigma  D9542
Staurosporine Sigma  S4400
CyQuant NF cell proliferation kit  Invitrogen C35007
Retinoblastoma 1 antibody Abcam Ab6075
c-Myc antibody Sigma  M5546
b-actin Sigma  A5316
Ki-67  Thermofisher scientific MA5-14520
Phallodin Thermofisher scientific A12379
Fluorescence microplate reader FLUOstar OPTIMA, BMG Labtech
Epifluorescence microscope  NikonEclipse80i
The TetO-DN-CB-myc6-Rb1 (DN-CBRb) mouse line is available from the Jackson Laboratory as JAX#032011. 

References

  1. Li, F. Q., et al. Preferential MyoD homodimer formation demonstrated by a general method of dominant negative mutation employing fusion with a lysosomal protease. Journal of Cell Biology. 135 (4), 1043-1057 (1996).
  2. Tarang, S., et al. Generation of a retinoblastoma (rb)1-inducible dominant-negative (DN) mouse model. Frontiers Cellular Neuroscience. 9 (52), (2015).
  3. Kominami, E., et al. The selective role of cathepsins B and D in the lysosomal degradation of endogenous and exogenous proteins. FEBS Letters. 287 (1-2), 189-192 (1991).
  4. Cortellino, S., et al. Defective ciliogenesis, embryonic lethality and severe impairment of the sonic hedgehog pathway caused by inactivation of the mouse complex A intraflagellar transport gene Ift122/Wdr10, partially overlapping with the DNA repair gene Med1/Mbd4. 발생학. 325 (1), 225-237 (2009).
  5. Ferreira, C., et al. Early embryonic lethality of H ferritin gene deletion in mice. Journal of Biological Chemistry. 275 (5), 3021-3024 (2000).
  6. Lee, E. Y., et al. Mice deficient for rb are nonviable and show defects in neurogenesis and haematopoiesis. Nature. 359 (6393), 288-294 (1992).
  7. Turlo, K. A., et al. When cre-mediated recombination in mice does not result in protein loss. 유전학. 186 (3), 959-967 (2010).
  8. Weber, T., et al. Rapid cell-cycle reentry and cell death after acute inactivation of the retinoblastoma gene product in postnatal cochlear hair cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (2), 781-785 (2008).
  9. Zhang, J., et al. The first knockout mouse model of retinoblastoma. Cell Cycle. 3 (7), 952-959 (2004).
  10. Zhao, H., et al. Deletions of retinoblastoma 1 (Rb1) and its repressing target S phase kinase-associated protein 2 (Skp2) are synthetic lethal in mouse embryogenesis. Journal of Biological Chemistry. 291 (19), 10201-10209 (2016).
  11. Yamasaki, L., et al. Loss of E2F-1 reduces tumorigenesis and extends the lifespan of Rb1(+/-) mice. Nature Genetics. 18 (4), 360-364 (1998).
  12. Li, F. Q., et al. Selection of a dominant negative retinoblastoma protein (RB) inhibiting satellite myoblast differentiation implies an indirect interaction between MyoD and RB. Molecular and Cellular Biology. 20 (14), 5129-5139 (2000).
  13. Pitkanen, K., et al. Expression of the human retinoblastoma gene product in mouse fibroblasts: Effects on cell proliferation and susceptibility to transformation. Experimental Cell Research. 207 (1), 99-106 (1993).
  14. Chano, T., et al. Neuromuscular abundance of RB1CC1 contributes to the non-proliferating enlarged cell phenotype through both RB1 maintenance and TSC1 degradation. International Journal of Molecular Medicine. 18 (3), 425-432 (2006).
  15. Kole, R., et al. RNA therapeutics: Beyond RNA interference and antisense oligonucleotides. Nature Reviews Drug Discovery. 11 (2), 125-140 (2012).
  16. Yamamoto, A., et al. The ons and offs of inducible transgenic technology: A review. Neurobiology of Disease. 8 (6), 923-932 (2001).
  17. Houdebine, L. M., et al. Transgenic animal models in biomedical research. Methods in Molecular Biology. 360, 163-202 (2007).
  18. Brehm, A., et al. Retinoblastoma protein recruits histone deacetylase to repress transcription. Nature. 391 (6667), 597-601 (1998).
  19. Lu, Z., et al. E2F-HDAC complexes negatively regulate the tumor suppressor gene ARHI in breast cancer. Oncogene. 25 (2), 230-239 (2006).
  20. Magnaghi-Jaulin, L., et al. Retinoblastoma protein represses transcription by recruiting a histone deacetylase. Nature. 391 (6667), 601-605 (1998).
check_url/kr/58419?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tarang, S., Pyakurel, U., Doi, S. M., Weston, M. D., Rocha-Sanchez, S. M. Inducible and Reversible Dominant-negative (DN) Protein Inhibition. J. Vis. Exp. (143), e58419, doi:10.3791/58419 (2019).

View Video