ثقب الوريد Subclavian كطريقة بديلة لجمع عينات الدم في الفئران
Summary
نقدم هنا، بروتوكولا لجمع عينات دم من الوريد subclavian الفئران.
Abstract
ومن الضروري جمع الدم بما فيه الكفاية حجم الدم في التجارب على الحيوانات. مقارنة بأساليب أكثر عدوانية أخرى مثل عينة الضفيرة الرجعية-المداري جمع جمع الدم من هذا السياق ذيل من الفئران شعبية وأقل إرهاقاً. ومع ذلك، يقتصر هذا الأسلوب جمع الدم في بعض الأحيان معدل نجاح غير مرضية. وهنا نقدم طريقة لجمع الدم من خلال ثقب الوريد subclavian. يقع في الاتجاه subclavian فقط تحت الترقوة وكبيرة بما يكفي للوفاء بمتطلبات التخزين لجمع الدم ومن هذا المنطلق. وتظهر النتائج التي توصلنا إليها أن هذا الأسلوب آمنة وقابلة للتطبيق للدم جمع العينات مع حجم الدم المطلوب. ويمكن جمع الدم من خلال ثقب الوريد subclavian كأسلوب لجمع دم بديلة في حالة الذيل الفاشلة المنطلق أخذ عينات الدم في الفئران.
Introduction
من الضروري جمع الدم في الأبحاث الحيوانية. وتشمل الأوردة المستهدفة لجمع الدم الضفيرة الرجعية-المداري وحبل الوريد والوريد الصافن، والأوعية الدموية الذيل والشريان السباتي1،2،،من34. في بعض الأحيان، يمكن الحصول على الدم من الشريان الاورطي البطني، أو الوريد الأجوف، أو حتى في قلب5،،من67. في مثل هذه المناسبات، يجب التضحية بالحيوانات ولا يمكن استخدامه للمراقبة اللاحقة؛ وبالتالي، يتم استخدام هذه الأساليب أقل في العمل التجريبي اليومي. يتم جمع الدم من الوريد ذيل الفئران شعبية وأقل إرهاقاً بالمقارنة مع8من الأساليب المذكورة أعلاه.
ومع ذلك، يقتصر جمع الدم من الوريد الذيل أحياناً معدل نجاح غير مرضية. في بعض الأحيان، من الصعب أيضا الحصول على ما يكفي من حجم الدم بهذه الطريقة. كبير بما فيه الكفاية على المنوال subclavian ويقع فقط تحت عظم الترقوة، ثقب الوريد سوبكلافيان يمكن أن تكون طريقة بديلة لأخذ عينات من الدم إذا كانت أساليب جمع الدم الروتينية غير ناجحة. هنا، نحن نقدم وسيلة لجمع الدم عن طريق الوريد subclavian ثقب في الفئران.
Protocol
Representative Results
Discussion
هنا، نحن نقدم طريقة بديلة لاستخراج الدم من الوريد subclavian ونظهر أن هذا الأسلوب مجدية وآمنة، والمطبقة لأخذ عينات من الدم في الفئران. هذا الأسلوب مشتق من ثقب الوريد subclavian في زرع منظم ضربات القلب يؤدي للمرضى11. يقع الخلفي فقط ووالذيليه الترقوة على المنوال subclavian وهو استمرار الوريد ا…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
لم يصرح بشيء.
Materials
| rats | Hunan SJA Laboratory Animal Co., Ltd (Changsha, Hunan Province, China) | ||
| stastical software | SPSS Statistics 17 | ||
| epilating agent | France Yi Sha Cosmetics Co.,Ltd(Guangzhou, Guangdong Province ,China) | ||
| 2.5 mL syringe | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co.,Ltd(Weihai,Shandong Province ,China) | ||
| hair shaver | Shanghai FLYCO Electric Co., Ltd(Shanghai,China) | ||
| adhesive tape | 3M Deutschland GmbH(EdisonstraBe 6,59157 Kamen, Germany) | ||
| Pentobarbital sodium | Merck | ||
| 75% ethanol | Department of Pharmacy,The Second Xiangya Hospital of Central South Univesity | ||
| blood collection tube | Hubei Jinxing Technology&Development Co.,Ltd (Wuhan Hubei Province,China) (2ml) | ||
| electronic scale | Dongguan Shengheng Electronics Co.,Ltd (Dongguan,Guangdng Province,China) | ||
| canvas gloves | for anethesia | ||
| hepain | Nanjing Xinbai Pharmaceutical Co.,Limited (Nanjing, Jiangsu Province, China) (2mL, 12500 IU) | ||
| physical saline | Hunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd(Yueyang ,Hunan Province,China) (100ml) |
References
- Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).
- Korfmacher, W., et al. Utility of capillary microsampling for rat pharmacokinetic studies: Comparison of tail-vein bleed to jugular vein cannula sampling. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 76, 7-14 (2015).
- Feng, J., et al. Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model. Journal of Visualized Experiments. (95), (2015).
- Wickremsinhe, E. R., Renninger, M., Paulman, A., Pritt, M., Schultze, A. E. Impact of Repeated Tail Clip and Saphenous Vein Phlebotomy on Rats Used in Toxicology Studies. Toxicologic Pathology. 44 (7), 1013-1020 (2016).
- Takahashi, M., Makino, S., Kikkawa, T., Osumi, N. Preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture. Journal of Visualized Experiments. (90), e51969 (2014).
- Cochran, B. J., et al. Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT. Journal of Visualized Experiments. (123), (2017).
- Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Drawing blood from rats through the saphenous vein and by cardiac puncture. Journal of Visualized Experiments. (7), 266 (2007).
- Zou, W., et al. Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System. Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).
- Kilkenny, C., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution. Lab Animal. 44 (4), 377-378 (2010).
- National Institute of Health. . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , (2011).
- Antonelli, D., Feldman, A., Freedberg, N. A., Turgeman, Y. Axillary vein puncture without contrast venography for pacemaker and defibrillator leads implantation. Pacing and Clinical Electrophysiology. 36 (9), 1107-1110 (2013).
- Luis, A. L., et al. Microscopic magnetic resonance imaging of the thoracic venous system in rats with congenital diaphragmatic hernia. Pediatric Surgery International. 27 (2), 175-180 (2011).
- Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice. Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).
