Summary

Micron-scala Phenotyping tecniche di mais fasci vascolari basato su x-Ray Microcomputed Tomography

Published: October 09, 2018
doi:

Summary

Mettiamo a disposizione un nuovo metodo per migliorare il contrasto di assorbimento di raggi x del mais tessuto adatto per l’esame di tomografia microtomografia ordinaria. Basato sulle immagini di CT, introduciamo una serie di flussi di lavoro di elaborazione delle immagini per diversi materiali mais per estrarre efficacemente microscopici fenotipi dei fasci vascolari del mais.

Abstract

È necessario quantificare con precisione le strutture anatomiche di mais materiali basati su tecniche di analisi di immagine ad alta velocità. Qui, forniamo un ‘protocollo di preparazione del campione’ per materiali mais (cioè, stelo, foglia e radice) adatti per tomografia microtomografia ordinaria (micro-CT). Basato su immagini ad alta risoluzione di CT del mais del tronco, foglia e radice, descriviamo due protocolli per l’analisi fenotipica dei fasci vascolari: (1) basato sull’immagine di CT del foglio e del gambo di mais, abbiamo sviluppato una pipeline di analisi di immagine specifica per estrarre automaticamente 31 e 33 tratti fenotipici di fasci vascolari; (2) basato sulla serie di immagine di CT di radice di mais, abbiamo istituito un regime di trattamento di immagine per la segmentazione tridimensionale (3D) dei vasi metaxylem ed estratte bidimensionali (2D) e 3-d tratti fenotipici, come il volume, superficie dei vasi metaxylem, ecc. Rispetto al tradizionale misurazione manuale di fasci vascolari di mais materiali, i protocolli proposti migliorano significativamente l’efficienza e la precisione di quantificazione fenotipica micron-scala.

Introduction

Il sistema vascolare mais attraversa l’intera pianta, dalla radice e fusto alle foglie, che forma i percorsi di trasporto chiave per la distribuzione di acqua, sostanze nutrienti minerali e sostanze organiche1. Un’altra importante funzione del sistema vascolare è di fornire supporto meccanico per la pianta di mais. Ad esempio, la morfologia, il numero e la distribuzione dei fasci vascolari nelle radici e steli sono strettamente correlati alla resistenza sistemazioni di piante di mais2,3. Attualmente, gli studi sulla struttura anatomica dei fasci vascolari principalmente utilizzano tecniche microscopiche e ultramicroscopiche per visualizzare le strutture anatomiche di una certa parte del fusto, foglia o radice e quindi misurano e contano queste strutture di interesse di indagine manuale. Indubbiamente, misurazione manuale di varie strutture microscopiche in microimages su larga scala è un lavoro molto noioso e inefficiente e limita gravemente la precisione dei tratti di microphenotypic, grazie alla sua soggettività ed incoerenza4, 5.

Mais non ha nessuna crescita secondaria, e il contenuto della cella consiste essenzialmente di acqua nel meristema primario. Senza alcun pretrattamento, freschi campioni di mais tessuti possono essere analizzati direttamente utilizzando un dispositivo di micro-CT; Tuttavia, i risultati della scansione sono probabilmente povero e grezzo. I motivi principali sono riassunti come segue: densità (1) bassa attenuazione dei tessuti vegetali, risultante in un contrasto basso di numero atomico e alto rumore nelle immagini; (2) materiali vegetali freschi sono inclini a disidratarsi e si restringono durante il normale ambiente di scansione, come riportato da Du6. I problemi di cui sopra sono diventati i principali vincoli per lo sviluppo e l’applicazione della tecnologia microphenotyping per mais, frumento, riso e altre monocotiledoni. Qui, presentiamo il ‘protocollo di preparazione del campione’ per pretrattare i campioni di mais staminali, foglia e radice. Questo protocollo consente di evitare la disidratazione e la deformazione di materiali vegetali durante la TAC; Pertanto, è utile aumentare il tempo di conservazione di campioni di piante con nondeformation. Inoltre, il passo di tintura basato solido iodio migliora anche il contrasto di materiali vegetali; così, rende i miglioramenti significativi nella qualità imaging di micro-CT. Inoltre, abbiamo sviluppato software di elaborazione immagine, denominato VesselParser, per elaborare le immagini di CT di mais steli e foglie. Questo software integra un set di pipeline di elaborazione dell’immagine per eseguire analisi phenotyping di alto-rendimento e automatica per le immagini di CT 2-D di tessuti vegetali diversi. Fasci vascolari nell’intera sezione trasversale del gambo di mais e foglia vengono rilevati, estratti e identificati utilizzando un metodo di elaborazione delle immagini automatico. Di conseguenza, otteniamo 31 fenotipi microscopici del fusto mais e 33 fenotipi microscopici di foglia di mais. Per la serie di immagini di CT della radice mais, abbiamo sviluppato uno schema di elaborazione dell’immagine per acquisire tratti fenotipici 3D dei vasi metaxylem. Questo schema è superiore in termini di efficienza di acquisizione di immagini e di ricostruzione rispetto ai metodi tradizionali.

Questi risultati indicano che l’immagine elaborazione pipeline considerando che le caratteristiche di formazione immagine dei raggi x normali micro-CT forniscono un metodo efficace per la fenotipizzazione microscopica di fasci vascolari; Questo estremamente allarga le applicazioni delle tecniche di CT in scienze vegetali e migliora la fenotipizzazione automatica di materiali vegetali a risoluzione cellulare6,7.

Protocol

1. protocollo di preparazione del campione Per il campionamento, raccogliere il fusto, foglia, radice da piante di mais fresche e li dividono in tre tipi di gruppi di campioni (ogni gruppo con quattro repliche). Quindi, tagliarle in piccoli segmenti usando una lama chirurgica nel modo seguente: (1) tagliare un segmento di mezzo gambo internodo 1-1,5 cm di lunghezza; (2) tagliare un segmento della larghezza massima dell’anta 0,5 – 3 cm di lunghezza lungo la direzione verticale con la vena principale; (3) tagliar…

Representative Results

Il protocollo di preparazione del campione adatto per esame ordinario di micro-CT non solo previene la deformazione dei tessuti vegetali, ma anche migliora il contrasto di assorbimento di raggi x. Materiali vegetali pretrattati vengono scansionati usando un sistema di micro-CT in immagini di alta qualità fetta, e la risoluzione massima può raggiungere 2 µm/pixel. La figura 4 Mostra le immagini scansionate di micro-CT di fusto, foglia e radice, e il contras…

Discussion

Con la riuscita applicazione di tecnologia di CT nei campi della biomedicina e scienze dei materiali, questa tecnologia è stata introdotta gradualmente nei campi della botanica e dell’agricoltura, promuovendo ricerche nelle scienze della vita di pianta come un promettente strumento tecnico . Nel tardo 1990, tecnologia CT in primo luogo è stata utilizzata per studiare le strutture morfologiche e sviluppo di sistemi di radice di pianta. Nell’ultimo decennio, Sincrotrone HRCT è diventato un potente strumento non distrutt…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questa ricerca è stata sostenuta dal National natura Science Foundation of China (No.31671577), la scienza e tecnologia innovazione speciale costruzione finanziato programma di Pechino Accademia di agricoltura e silvicoltura Sciences(KJCX20180423), la ricerca Programma di sviluppo della Cina (2016YFD0300605-01), la Fondazione di scienze naturali di Beijing (5174033), il Beijing Postdoctoral Research Foundation (2016 ZZ-66) e il Beijing Academy of agricoli e forestali Scienze Grant (KJCX20170404) ( JNKYT201604).

Materials

Skyscan 1172 X-ray computed tomography system Bruker Corporation, Belgium NA For CT scanning
CO2 critical point drying system (Leica CPD300) Leica Corporation, Germany NA For sample drying
Ethanol Any NA For FAA fixation
Formaldehyde Any NA For FAA fixation
Acetic acid Any NA For FAA fixation
Surgical blade Any NA For cutting the sample sgements
3D printer Makerbot replicator 2, MakerBot Industries, USA NA For printing the sample baskets of maize root, stem, and leaf
Centrifuge tube Corning, USA NA Place the root, stem, or leaf materials
Solid iodine Any NA For sample dyeing
SkyScan Nrecon software SkyScan NRecon, Version: 1.6.9.4, Bruker Corporation, Belgium NA For image reconstruction
VesselParser software VesselParser, Version: 3.0, National Engineering Research Center for Information Technology in Agriculture (NERCITA), Beijing, China NA Image analysis protocol for single CT image of maize stem or leaf
ScanIP ScanIP, Version: 7.0; Simpleware, Exeter, UK NA 3D image processing software
Latex gloves Any NA
Tweezers Any NA

References

  1. Lucas, W. J., et al. The plant vascular system: evolution, development and functions. Journal of Integrative Plant Biology. 55, 294-388 (2013).
  2. Gou, L., et al. Effect of population density on stalk lodging resistant mechanism and agronomic characteristics of maize. Acta Agronomica Sinia. 33, 1688-1695 (2007).
  3. Hu, H., et al. QTL mapping of stalk bending strength in a recombinant inbred line maize population. Theoretical and Applied Genetics. 126, 2257-2266 (2013).
  4. Wilson, J. R., Mertens, D. R., Hatfield, R. D. Isolates of cell types from sorghum stems: Digestion, cell wall and anatomical characteristics. Journal of the Science of Food and Agriculture. 63, 407-417 (1993).
  5. Hatfield, R., Wilson, J., Mertens, D. Composition of cell walls isolated from cell types of grain sorghum stems. Journal of the Science of Food and Agriculture. 79, 891-899 (1999).
  6. Du, J., et al. Micron-scale phenotyping quantification and three-dimensional microstructure reconstruction of vascular bundles within maize stems based on micro-CT scanning. Functional Plant Biology. 44 (1), 10-22 (2016).
  7. Pan, X., et al. Reconstruction of Maize Roots and Quantitative Analysis of Metaxylem Vessels based on X-ray Micro-Computed Tomography. Canadian Journal of Plant Science. 98 (2), 457-466 (2018).
  8. McElrone, A. J., Choat, B., Parkinson, D. Y., MacDowell, A. A., Brodersen, C. R. Using high resolution computed tomography to visualize the three dimensional structure and function of plant vasculature. Journal of Visualized Experiments. (74), e50162 (2013).
  9. Cloetens, P., Mache, R., Schlenker, M., Lerbs-Mache, S. Quantitative phase tomography of Arabidopsis seeds reveals intercellular void network. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unites States of America. 103, 14626-14630 (2006).
  10. Dorca-Fornell, C., et al. Increased leaf mesophyll porosity following transient retinoblastoma-related protein silencing is revealed by microcomputed tomography imaging and leads to a system-level physiological response to the altered cell division pattern. Plant Journal. 76 (6), 914-929 (2013).
  11. Verboven, P., et al. Void space inside the developing seed of Brassica napus and the modelling of its function. New Phytologist. 199, 936-947 (2013).
  12. Brodersen, C. R., Roark, L. C., Pittermann, J. The physiological implications of primary xylem organization in two ferns. Plant, Cell & Environment. 35, 1898-1911 (2012).
  13. Choat, B., Brodersen, C. R., McElrone, A. J. Synchrotron X-ray microtomography of xylem embolism in Sequoia sempervirens saplings during cycles of drought and recovery. New Phytologist. 205, 1095-1105 (2015).
  14. Torres-Ruiz, J. M., et al. Direct x-ray microtomography observation confirms the induction of embolism upon xylem cutting under tension. Plant Physiology. 167, 40-43 (2015).
  15. Staedler, Y. M., Masson, D., Schönenberger, J. Plant tissues in 3D via. x-ray tomography: simple contrasting methods allow high resolution imaging. PLoS One. 8, 75295 (2013).
  16. Zhang, Y., Legay, S., Barrière, Y., Méchin, V., Legland, D. Color quantification of stained maize stem section describes lignin spatial distribution within the whole stem. Journal of the Science of Food and Agriculture. 61, 3186-3192 (2013).
  17. Legland, D., Devaux, M. F., Guillon, F. Statistical mapping of maize bundle intensity at the stem scale using spatial normalisation of replicated images. PLoS One. 9 (3), 90673 (2014).
  18. Heckwolf, S., Heckwolf, M., Kaeppler, S. M., de Leon, N., Spalding, E. P. Image analysis of anatomical traits in stem transections of maize and other grasses. Plant Methods. 11, 26 (2015).
  19. Wu, H., Jaeger, M., Wang, M., Li, B., Zhang, B. G. Three-dimensional distribution of vessels, passage cells and lateral roots along the root axis of winter wheat (Triticum aestivum). Annals of Botany. 107, 843-853 (2011).
  20. Chopin, J., Laga, H., Huang, C. Y., Heuer, S., Miklavcic, S. J. RootAnalyzer: A Cross-Section Image Analysis Tool for Automated Characterization of Root Cells and Tissues. PLoS One. 10, 0137655 (2015).
  21. Passot, S., et al. Characterization of pearl millet root architecture and anatomy reveals three types of lateral roots. Frontiers in Plant Science. 7, 829 (2016).
check_url/kr/58501?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhang, Y., Ma, L., Pan, X., Wang, J., Guo, X., Du, J. Micron-scale Phenotyping Techniques of Maize Vascular Bundles Based on X-ray Microcomputed Tomography. J. Vis. Exp. (140), e58501, doi:10.3791/58501 (2018).

View Video