Summary

Proteomic analyse av menneskelig Macrophage polarisering Under et lavt oksygeninnhold miljø

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Vi presenterer en protokoll for å skaffe proteomic signaturer av menneskelig makrofager og dette gjelder fastsettelse av virkningen av et lavt oksygeninnhold miljø macrophage polarisering.

Abstract

Makrofager er medfødte immunceller involvert i en rekke fysiologiske funksjoner mellom Svar å smittsomme patogener vev homeostase. De forskjellige funksjonene i disse cellene er knyttet til deres aktivisering stater, som også kalles polarisering. Den presise molekylære beskrivelsen av disse ulike polarisasjonene prioriteres innen macrophage biologi. Det er nå anerkjent som en flerdimensjonal tilnærming er nødvendig å beskrive hvordan polarisering er kontrollert av Miljøsignaler. I denne rapporten beskriver vi utviklet å få proteomic signaturen av ulike polarisasjonene i menneskelig makrofager. Denne protokollen er basert på en etikett-fri kvantifisering av macrophage protein uttrykk innhentet fra in-gel fraksjonert og Lys C/trypsin-fordøyd mobilnettet lysis innhold. Vi tilbyr også en protokoll basert på-løsning fordøyelsen og isoelectric fokuserer fraksjoneres å bruke som et alternativ. Oksygen konsentrasjon er relevante miljømessige parameter i vev, vi bruk denne protokollen til å utforske hvordan atmosfærens sammensetning eller et lavt oksygeninnhold miljø påvirker klassifiseringen av macrophage polarisering.

Introduction

Makrofager er medfødte immunceller involvert i en rekke fysiologiske funksjoner mellom Svar å smittsomme patogener vev homeostase, inkludert fjerning av apoptotisk celler og ombygging av ekstracellulær matrix1. Disse cellene er preget av en sterk fenotypiske plastisitet2 som oversetter til en mange mulig aktivering stater, også kalt polarisasjonene. Den presise molekylære beskrivelsen av disse ulike polarisasjonene prioriteres innen macrophage biologi3. Det har blitt foreslått å klassifisere disse polarisasjonene bruker den såkalte M1/M2 motsetningen, der M1 representerer pro-inflammatoriske og M2 representerer anti-inflammatorisk makrofager. Denne modellen passer godt i ulike patologisk situasjoner som akutte infeksjoner, allergi og fedme4. Men i kronisk betent vev og kreft, har det vært vist at klassifiseringen er i stand til å forstå bred fenotypiske repertoaret makrofager presenterer i visse mobilnettet miljøer5,6, 7. den gjeldende konsensus er at macrophage polarisering er bedre beskrevet med en flerdimensjonal modell for å integrere microenvironmental sender8. Denne konklusjonen er bekreftet gjennom transcriptomic analyse av menneskelig makrofager viser at M1/M2 modellen er ineffektive i beskriver innhentet polarisasjonene9.

Studien presentert mål å gi en protokoll for å få proteomic signaturer av ulike polarisasjonene i menneskelig makrofager. Vi beskriver hvordan å skille menneskelig makrofager i miljøer med ulike oksygennivået og få peptider fra hele macrophage proteom til å utføre en etikett-fri kvantifisering. Denne kvantifisering tillater sammenligning av uttrykket nivåer av. Som forskning på stamceller har avdekket betydningen av oksygen som en miljømessig Nøkkelparameteren10, søker vi å forstå hvordan denne vev-parameteren kan påvirke macrophage polarisering i mennesker. Delvis trykket av oksygen har funnet å rekkevidde fra 3 til 20% (av totale lufttrykk) i menneskekroppen, der 20% tilsvarer omtrent til hva er vanligvis brukes i en celle kultur inkubator (den nøyaktige verdien er rundt 18.6% mens du tar er tilstedeværelsen av vann i betraktning).

Tidligere arbeid har vist at alveolar avvike fra interstitiell makrofager fra funksjonelle og morfologiske hensikten utsikt11 og som disse forskjellene er trolig delvis på grunn av ulike oksygen nivåer som de er utsatt12. Videre viser Ben margtransplantasjon-avledet makrofager en økt evne til å phagocytize bakterier utsettes for en oksygen miljø12. Motsatte er funnet for THP1-differensiert menneskelige makrofager13, men disse resultatene støtter ideen om at oksygen er en regulator macrophage biologi og at det er nødvendig å avklare denne rollen på molekylært nivå i menneskelig makrofager. I en tidligere studie, har vi brukt en Proteomikk tilnærming for å løse disse problemene. Ved å måle uttrykk nivåer for tusenvis av proteiner samtidig, vi fremhevet virkningen av oksygen på polarisering og laget en liste over nye molekylære markører. Vi var også i stand til å relatere disse funnene til noen makrofager funksjoner. Spesielt fant vi at frekvensen av fagocytose apoptotisk celler ble økt i IL4/IL13-polarisert makrofager, som var knyttet til oppregulering av ALOX15 som åpenbart av proteomic analyse14. I studien beskriver vi hvordan du utfører slik analyse.

Protocol

Menneskelig blodprøver (LRSC) fra sunne, de identifiserte givere var oppnådd fra EFS (fransk nasjonale blod Service) som en del av en autorisert protokoll (CODECOH DC-2018-3114). Givere ga signert samtykke for bruk av blod. 1. Media og Buffer forberedelse Forberede macrophage mediet [RPMI glutamax + 10 mM HEPES + 1 x ikke-essensielle aminosyrer (NEAA)] og varme den til 37 ° C. Forberede macrophage medium + 10% humant serum fra AB plasma (SAB), filtrere den (0.22 µm filt…

Representative Results

Utgangspunkt i perifert blod mononukleære celler (PBMCs) ved differensial sentrifugering, protokollen tillater å oppnå en befolkning på CD14+ monocytter med en vurdert renhet på mer enn 98% av flowcytometri (figur 1). Disse monocytter skilles sekundært mot ulike polarisasjonene (figur 2). Når en fraksjoneres på gel er valgt, overføringen på SDS side gels er tilpasset å få antall ønskede felt, og feltene er…

Discussion

Proteomikk er et kraftig verktøy for å studere uttrykk for ulike proteiner fra en hel celle eller subcellular rom, er optimalisering av cellen lysis protokollen og fordøyelse av proteiner rettet av en rekke studier. Det er tre hovedgrupper av metoder, inkluderer i-gel fordøyelse (fordøyelsen av proteiner i polyakrylamid gel matrix)17, fordøyelsen løsning18 og filter-hjulpet eksempel forberedelse19. Denne siste metoden, først beskrevet som uni…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

AM er finansiert av unge gruppen leder Program (ATIP/Avenir Inserm-CNRS), av la Ligue Nationale contre le kreft og la ARC Fondation pour la recherche sur le kreft. Vi takker Mariette Matondo fra massespektrometri for biologi plattformen (UTECHS MSBIO, Pasteur Institute, Paris). Vi takker Lauren Anderson for hennes av manuskriptet.

Materials

Hypoxia Working Station Oxford Optronix Hypoxylab
C6 Flow cytometer BD Accuri C6
Urea Agilent Technologies 5188-6435
Formic acid (FA) ARISTAR 450122M
R-250 Coomassie blue Biorad 1,610,436
Lipopolysaccharide, E.Coli (LPS) Calbiochem 437627
2D clean-up kit GE Healthcare 80-6484-51
RPMI 1640 medium, glutamax supplement Gibco 61870044
HEPES 1 M Gibco 15630-080
MEM Non-Essential Amino Acids (NEAA) Solution 100X Gibco 11140-035
Phosphate Buffered Saline (PBS) 1X Gibco 14190-094
Harvard Apparatus column Reverse C18 micro spin column Harvard Apparatus 74-4601
EDTA 0.5 M, pH 8.0 Invitrogen AM9260G
NuPAGE Bis-Tris 4-12% Life Technologies SAS NP0321 BOX
CD14 Microbeads human Miltenyi Biotec 130-050-201
MACS separation column LS Miltenyi Biotec 130-042-401
Macrophage colony-stimulating factor (M-CSF) Miltenyi Biotec 130-096-485
Interleukin 4 (IL4) Miltenyi Biotec 130-093-917
Interleukin 13 (IL13) Miltenyi Biotec 130-112-410
Interferon gamma (INFγ) Miltenyi Biotec 130-096-482
CD14-FITC (clone TÜK4) Miltenyi Biotec 130-080-701
MACSmix Tube Rotator Miltenyi Biotec 130-090-753
Trifluoroacetic Acid (TFA) Pierce 28904
Trypsin/Lys-C Mix PROMEGA V5073
Complete Mini, EDTA-free Protease Inhibitor cocktail Roche 11836170001
Density Gradient Solution (Histopaque 1077) Sigma Aldrich 10771-100ML
Accumax Sigma Aldrich A7089-100ML
Human Serum from human male AB plasma (SAB) Sigma Aldrich H4522-100ML
Bovine Serum Albumin (BSA) solution 30% Sigma Aldrich A9576-50ML
Trisma-base Sigma Aldrich T1503
Glycerol Sigma Aldrich 49767
β-Mercaptoethanol Sigma Aldrich M3148
Bromophenol blue Sigma Aldrich 114405
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) 20% Sigma Aldrich 5030
Ammonium bicarbonate Sigma Aldrich 9830
Acetonitrile Sigma Aldrich 34888
Dithiothreitol Sigma Aldrich 43819
Iodoacetamide Sigma Aldrich 57670
Thiourea Sigma Aldrich T8656
CHAPS Sigma Aldrich C9426
Micro BCA Assay Kit ThermoFisher 23235
5 mL sterile plastic pipette VWR 612-1685
Thermomixer C Eppendorf VWR 460-0223
Sep-Pak tC18 reverse phase cartridges, 100 mg Waters WAT036820

References

  1. Okabe, Y., Medzhitov, R. Tissue biology perspective on macrophages. Nature Immunology. 17 (1), 9-17 (2016).
  2. Sica, A., Mantovani, A. Macrophage plasticity and polarization: in vivo veritas. The Journal of Clinical Investigation. 122 (3), 787-795 (2012).
  3. Murray, P. J. Macrophage Polarization. Annual Review of Physiology. 79, 541-566 (2017).
  4. Chinetti-Gbaguidi, G., Staels, B. Macrophage polarization in metabolic disorders: functions and regulation. Current Opinion in Lipidology. 22 (5), 365-372 (2011).
  5. Chow, A., Brown, B. D., Merad, M. Studying the mononuclear phagocyte system in the molecular age. Nature Reviews Immunology. 11 (11), 788-798 (2011).
  6. Mosser, D. M., Edwards, J. P. Exploring the full spectrum of macrophage activation. Nature Reviews Immunology. 8 (12), 958-969 (2008).
  7. Murray, P. J., Wynn, T. A. Protective and pathogenic functions of macrophage subsets. Nature Reviews Immunology. 11 (11), 723-737 (2011).
  8. Ginhoux, F., Schultze, J. L., Murray, P. J., Ochando, J., Biswas, S. K. New insights into the multidimensional concept of macrophage ontogeny, activation and function. Nature Immunology. 17 (1), 34-40 (2016).
  9. Xue, J., et al. Transcriptome-based network analysis reveals a spectrum model of human macrophage activation. Immunity. 40 (2), 274-288 (2014).
  10. Csete, M. Oxygen in the cultivation of stem cells. Annals of the New York Academy of Sciences. 1049, 1-8 (2005).
  11. Johansson, A., et al. Functional, morphological, and phenotypical differences between rat alveolar and interstitial macrophages. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 16 (5), 582-588 (1997).
  12. Pfau, J. C., Schneider, J. C., Archer, A. J., Sentissi, J., Leyva, F. J., Cramton, J. Environmental oxygen tension affects phenotype in cultured bone marrow-derived macrophages. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 286 (2), L354-L362 (2004).
  13. Grodzki, A. C. G., Giulivi, C., Lein, P. J. Oxygen tension modulates differentiation and primary macrophage functions in the human monocytic THP-1 cell line. PLoS One. 8 (1), e54926 (2013).
  14. Court, M., Petre, G., Atifi, M. E., Millet, A. Proteomic Signature Reveals Modulation of Human Macrophage Polarization and Functions Under Differing Environmental Oxygen Conditions. Molecular & Cellular Proteomics. 16 (12), 2153-2168 (2017).
  15. Cox, J., et al. Accurate proteome-wide label-free quantification by delayed normalization and maximal peptide ratio extraction, termed MaxLFQ. Molecular & Cellular Proteomics. 13 (9), 2513-2526 (2014).
  16. Cox, J., Neuhauser, N., Michalski, A., Scheltema, R. A., Olsen, J. V., Mann, M. Andromeda: a peptide search engine integrated into the MaxQuant environment. Journal of Proteome Research. 10 (4), 1794-1805 (2011).
  17. Shevchenko, A., Tomas, H., Havlis, J., Olsen, J. V., Mann, M. In-gel digestion for mass spectrometric characterization of proteins and proteomes. Nature Protocols. 1 (6), 2856-2860 (2006).
  18. Court, M., et al. Toward a standardized urine proteome analysis methodology. Proteomics. 11 (6), 1160-1171 (2011).
  19. Wiśniewski, J. R., Zougman, A., Nagaraj, N., Mann, M. Universal sample preparation method for proteome analysis. Nature Methods. 6 (5), 359-362 (2009).
  20. Liebler, D. C., Ham, A. -. J. L. Spin filter-based sample preparation for shotgun proteomics. Nature Methods. 6 (11), 785-786 (2009).
  21. Hubner, N. C., Ren, S., Mann, M. Peptide separation with immobilized pI strips is an attractive alternative to in-gel protein digestion for proteome analysis. Proteomics. 8 (23-24), 4862-4872 (2008).
  22. Park, J., et al. Informed-Proteomics: open-source software package for top-down proteomics. Nature Methods. 14 (9), 909-914 (2017).
  23. Richter, A., Sanford, K. K., Evans, V. J. Influence of oxygen and culture media on plating efficiency of some mammalian tissue cells. Journal of the National Cancer Institute. 49 (6), 1705-1712 (1972).
  24. Packer, L., Fuehr, K. Low oxygen concentration extends the lifespan of cultured human diploid cells. Nature. 267 (5610), 423-425 (1977).
  25. Lengner, C. J., et al. Derivation of pre-X inactivation human embryonic stem cells under physiological oxygen concentrations. Cell. 141 (5), 872-883 (2010).
  26. Sidoli, S., Kulej, K., Garcia, B. A. Why proteomics is not the new genomics and the future of mass spectrometry in cell biology. Journal of Cell Biology. 216 (1), 21-24 (2017).
check_url/kr/58727?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Court, M., Malier, M., Millet, A. Proteomic Analysis of Human Macrophage Polarization Under a Low Oxygen Environment. J. Vis. Exp. (143), e58727, doi:10.3791/58727 (2019).

View Video