Summary

글로벌 세포 매트릭스 Metalloproteinase 및 3D Hydrogels 신진 대사 활동 측정

Published: January 22, 2019
doi:

Summary

여기, 프로토콜 캡슐화 및 poly(ethylene glycol) (PEG) hydrogels fluorogenic 매트릭스 metalloproteinase (MMP)와 기능성된에 세포 배양에 대 한 제시는-분해 펩 티 드. 세포질 MMP와 대사 활동 표준 microplate 리더를 사용 하 여 하이드로 겔 문화에서 직접 측정 됩니다.

Abstract

3 차원 (3D) 세포 배양 시스템 종종 더 자세히 정리 vivo에서 세포 반응과 기능 전통적인 2 차원 (2D) 문화 시스템 보다. 그러나, 세포 기능 3D 문화에서의 측정은 종종 더 많은 도전. 많은 생물학 분석 실험 3D 문화에 어려울 수 있는 셀룰러 자료의 검색을 해야 합니다. 이 문제를 해결 하기 위해 한 가지 방법은 셀 함수는 재료 내에서 측정을 가능 하 게 새로운 자료를 개발 하는 것입니다. 여기, 96 잘 형태로 3D hydrogels에서 셀룰러 매트릭스 metalloproteinase (MMP) 활동의 측정에 대 한 메서드가 제공 됩니다. 이 시스템에서는, poly(ethylene glycol) (PEG) 하이드로 겔은 기능성 fluorogenic MMP 쪼갤 센서. 세포질 MMP 활동 형광 강도에 비례 하 고 표준 microplate 리더와 측정 될 수 있다. 소형화 96 잘 형식이 분석 결과의 분석 결과의 이전 24 잘 버전에 비해 조건 당 80 %50 %와 시 약 사용에 의해 실험 설정에 필요한 시간을 감소. 이 분석 결과 또한 세포질 기능의 다른 측정에 호환 됩니다. 예를 들어 대사 활동 분석 결과 시연입니다 여기, MMP 활동 측정 같은 히드로 내 동시에 실시 될 수 있습니다. 분석 결과 시드 밀도 분석 결과의 작업 범위에 대 한 적절 한 캡슐화 밀도 결정 하는 셀의 범위에 걸쳐 캡슐화 인간 흑색 종 세포와 함께 설명 했다. 셀 캡슐화의 24 h 후 MMP와 대사 활동 표시기 셀 시드 밀도에 비례 했다. 분석 결과 한 fluorogenic 분해성 기판으로 여기 설명 된다, 하는 동안 분석 결과 및 방법론 수 있습니다 다양 한 하이드로 겔 시스템 및 다른 형광 센서에 대 한 적응. 이러한 분석 결과 다양 한 응용 프로그램에 대 한 실용적인, 효율적이 고 쉽게 접근할 수 있는 3D 자란 플랫폼을 제공.

Introduction

3 차원 (3D) 문화 시스템 종종 더 밀접 하 게 전통적인 2 차원 (2D) 문화 시스템 보다 vivo에서 세포 응답을 정리, 여러 우수한 간행물1,2,3 참조 . 그러나, 세포 기능을 측정 하기 위해 3D 문화 시스템을 활용 하 여 셀룰러 검색의 어려움 때문에 도전 되 고 추가 처리. 이 어려움 3 차원 배양 시스템에서 많은 세포 기능 측정을 제한합니다. 이 어려움을 극복 하기 위해 새로운 기술을 쉽게 측정 3D 환경에서 셀 함수를 사용할 수 있는 필요. 이 필요 해결 하기 위해 한 가지 방법은 세포 기능을 측정 하는 센서 뿐 아니라 3D 세포 배양을 지원 뿐만 아니라 재료의 개발 이다. 예를 들어 여러 하이드로 겔 시스템 fluorogenic 효소 쪼갤 moieties 3D 환경4,5,,67프로 테아 제 활동의 시각화 수 있도록 통합 했습니다. 이러한 시스템은 원래 현미경 이미징에 대 한 활용 하 고, 하는 동안 이러한 시스템도 3D에 셀 함수의 손쉬운 측정을 사용 하면 표준 플레이트 리더를 사용 하 여 글로벌 매트릭스 metalloproteinase (MMP) 활동 분석에 사용 하기 위해 적용할 수 있습니다. 환경8.

MMPs, 아연 프로 테아 제, superfamily 정상 조직의 항상성 그리고 많은 질병에 중요 한 역할을 재생합니다. MMPs 저하와 세포 외 기질 (ECM) 개장, 세포 표면 수용 체, cytokines를 쪼개 고 다른 MMPs9,10활성화. MMPs 상처 치유 등 생리 적 과정에 고 등 관절염, 동맥 경화, Alzheimer, 암 ( 9,,1011리뷰 참조) 질병에 중요 한 역할을 재생 합니다. 암, MMP 식 상부는 암 전이 및 빈약한 예 지12와 강하게 상관 된다. 또한, MMPs 암 세포 내 습 및 마이그레이션, 본질적으로 3D 현상13,14는 세포질 과정을 홍보 하 여 종양 진행에 기여 한다. 따라서, 근본적인 생물학 연구 및 약물 분석 검사를 포함 하 여 많은 문맥에서 3 차원 문화에 MMP 활동을 측정 하는 능력에 많은 관심이 있다.

그들의 높은 함량으로 인해 3D 세포 배양, 단백질 흡착, 및 가변 자연 저항을 못 hydrogels 널리 사용 됩니다. 못 hydrogels 있다 되어 기능성 moieties 직접 세포 기능에의 번호와 같이 RGD, 같은 RLD, IKVAV 세포 접착을 촉진 또는 변형 성장 인자-β (TGF-β) 등 성장 요인의 tethering 직접 ECM 모방 펩 티 드와 15,16. 더 최근에, 말뚝 hydrogels 있다 되어 기능성 잘5,8로 세포 기능 측정을 사용할 수 있는 센서 펩 티 드와 함께. 특히, PEG 하이드로 겔 시스템의 사용 fluorogenic 표준 플레이트 리더와 3D 문화에서 셀룰러 MMP 활동의 MMP 분해 펩 티 드 활성화 측정으로 기능성 고 아니 추가 처리 하는 데 필요한. 이러한 시스템은 또한 신진 대사 활동을 포함 하 여 세포질 기능의 다른 측정에 호환 됩니다. 여기, 프로토콜은 3D 못 하이드로 겔 fluorogenic MMP 분해 펩타이드와 기능성된 및이의 사용에 필요한 초기 최적화 실험을 보여주는 제시 결과에서 경작 하는 세포의 MMP 활동의 측정에 대 한 설명 분석 결과입니다. 인간 흑색 종 세포 (A375) 시드 범위 내에 있는 작업 분석 결과의 적절 한 시드 밀도 결정 하는 밀도의 범위 fluorogenic hydrogels에 캡슐화 되었습니다. 캡슐화의 24 h 후 MMP와 대사 활동 측정 했다 표준 microplate 리더를 활용 하 여. 다음, MMP 활동 분석 결과의 선형 범위 내에서 시드 밀도 결정 하는 신진 대사 활동을 정상화 했다. 마지막으로, 내부 플레이트 계수의 편차 백분율 (%CV) 얻은 결과의 재현성을 반영 하기 위해 triplicates 사이 계산 했다. 이 메서드는 간단 하 고 빠른 3D 세포 배양, 그리고 최소한의 샘플 처리와 프로 테아 제 활동의 쉽게 측정을 수 있습니다.

Protocol

1. 하이드로 겔 구성 요소 준비 음성 합성 설명으로 형광 효소 분해 펩 티 드 다른8, 형광 분자 처럼 fluorescein와 dabcyl는 끄는으로 활용. 10 m m의 농도에 DMSO에 펩 티 드와 반복된 freeze-thaw 주기를 피하기 위해 작은 (~ 30 µ L) aliquots에서-80 ° C 냉동 고에서 저장소를 분해.참고: 이러한 펩 티이 드가 상업적으로 구입할 수도 있습니다. 이 프로토콜에는 C 터미널 시스테인을 하이…

Representative Results

현재 분석 결과 fluorogenic MMP 쪼갤 센서8공업화 이전 개발 및 특징이 3D 히드로 문화 시스템에서 적응 시켰다. 여기에 사용 되는 fluorogenic MMP 센서 GPLAC (pMeOBzl) ↓WARKDDK (AdOO) C, 펩 티 드 순서의 구성 (↓ 나타냅니다 분열 사이트)는 이전 MMP-14 및 MMP 1119분열에 대 한 최적화 되었습니다. 펩 티 드 (fluorescein) 형광 분자와 분열 사이트 (<strong class="…

Discussion

3 차원 생체 외에서 세포 배양이 vivo에서 환경의 많은 중요 한 측면. 그러나, 3D 문화 또한 사정 세포 기능을 만들고 도전 신호, 많은 생물학 분석 실험 필요 셀룰러 검색 및 셀의 큰 숫자. 따라서, 개발 추가 샘플 없이 세포질 기능의 측정을 가능 하 게 간단한 3D 문화 시스템의 처리 크게 증가 시킬 것입니다 3D 문화 시스템의 유틸리티. 여기서 설명 하는 3D 시스템은 다양 한 다른 응용 프로그램에 대 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 오하이오 암 연구 (OCR), 오,이 작품을 자금에 대 한 미국 킹 사우드 대학 (KSU), 리야드, 첫 번째 작가 후원을 위한 KSA 인정 하 고 싶습니다. 매트릭스 지원, 레이저 탈 착 이온화 시간의 비행 (TOF MALDI) 캠퍼스 화학 악기 센터 질량 분석 및 단백질의 도움으로 질량 분석을 사용 하 여 형광 펩 티 드 센서의 분자량 측정 오하이오 주립 대학에서 시설입니다.

Materials

1X Phosphate Buffered Saline Fisher Scientific 10-010-049
Activated charcoal  Sigma-Aldrich C3345
Black round bottom 96-well plate Brand-Tech 89093-600
Cell adhesion peptide (CRGDS) GenScript USA Inc. custom made
Collagenase enzyme type I  Life Technologies 17100-017
Dextran Sigma-Aldrich D4876
DMEM High Glucose Media Invitrogen 11965118
Fetal bovine serum (FBS)  Seradigm 1500-500
Fluorescence microplate reader  BioTek Cytation 3
Hemocytometer Hausser Scientific Co. 3200
L-glutamine Life Technologies 25030-081
MMP-degradable peptide crosslinker (KCGPQG↓IWGQCK) GenScript USA Inc. custom made
NaOH Fisher Scientific S318500
Penicillin /streptomycin Life Technologies 15140-122
Resazurin (Alamar Blue) Life Technologies DAL1100
UV light  UVP 95-0006-02

References

  1. Baker, B. M., Chen, C. S. Deconstructing the third dimension – how 3D culture microenvironments alter cellular cues. Journal of Cell Science. 125 (13), 3015-3024 (2012).
  2. Duval, K., et al. Modeling Physiological Events in 2D vs. 3D Cell Culture. Physiology. 32 (4), 266-277 (2017).
  3. Hoarau-Véchot, J., Rafii, A., Touboul, C., Pasquier, J. Halfway between 2D and Animal Models: Are 3D Cultures the Ideal Tool to Study Cancer-Microenvironment Interactions. International Journal of Molecular Sciences. 19 (1), (2018).
  4. Lee, S. -. H., Miller, J. S., Moon, J. J., West, J. L. Proteolytically Degradable Hydrogels with a Fluorogenic Substrate for Studies of Cellular Proteolytic Activity and Migration. Biotechnology Progress. 21 (6), 1736-1741 (2005).
  5. DeForest, C. A., Polizzotti, B. D., Anseth, K. S. Sequential click reactions for synthesizing and patterning three-dimensional cell microenvironments. Nature Materials. 8 (8), 659-664 (2009).
  6. Chalasani, A., et al. Live-Cell Imaging of Protease Activity: Assays to Screen Therapeutic Approaches. Methods in Molecular Biology. 1574, 215-225 (2017).
  7. Jedeszko, C., Sameni, M., Olive, M., Moin, K., Sloane, B. F. Visualizing Protease Activity in Living Cells: From Two Dimensions to Four Dimensions. Current Protocols in Cell Biology. 04, (2008).
  8. Leight, J. L., Alge, D. L., Maier, A. J., Anseth, K. S. Direct measurement of matrix metalloproteinase activity in 3D cellular microenvironments using a fluorogenic peptide substrate. Biomaterials. 34 (30), 7344-7352 (2013).
  9. Nagase, H., Visse, R., Murphy, G. Structure and function of matrix metalloproteinases and TIMPs. Cardiovascular Research. 69 (3), 562-573 (2006).
  10. Tokito, A., Jougasaki, M., Tokito, A., Jougasaki, M. Matrix Metalloproteinases in Non-Neoplastic Disorders. International Journal of Molecular Sciences. 17 (7), 1178 (2016).
  11. Visse, R., Nagase, H. Matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases: structure, function, and biochemistry. Circulation Research. 92 (8), 827-839 (2003).
  12. Vihinen, P., Kähäri, V. -. M. Matrix metalloproteinases in cancer: Prognostic markers and therapeutic targets. International Journal of Cancer. 99 (2), 157-166 (2002).
  13. Yodkeeree, S., Garbisa, S., Limtrakul, P. Tetrahydrocurcumin inhibits HT1080 cell migration and invasion via. downregulation of MMPs and uPA1. APHS Acta Pharmacologica Sinica. 29 (7), 853-860 (2008).
  14. Yodkeeree, S., Chaiwangyen, W., Garbisa, S., Limtrakul, P. Curcumin, demethoxycurcumin and bisdemethoxycurcumin differentially inhibit cancer cell invasion through the down-regulation of MMPs and uPA. The Journal of Nutritional Biochemistry. 20 (2), 87-95 (2009).
  15. Mabry, K. M., Schroeder, M. E., Payne, S. Z., Anseth, K. S. Three-Dimensional High-Throughput Cell Encapsulation Platform to Study Changes in Cell-Matrix Interactions. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (34), 21914-21922 (2016).
  16. Sridhar, B. V., Doyle, N. R., Randolph, M. A., Anseth, K. S. Covalently tethered TGF-β1 with encapsulated chondrocytes in a PEG hydrogel system enhances extracellular matrix production. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 102 (12), 4464-4472 (2014).
  17. Sridhar, B. V., et al. Development of a cellularly degradable PEG hydrogel to promote articular cartilage extracellular matrix deposition. Advanced Healthcare Materials. 4 (5), 702-713 (2015).
  18. Fairbanks, B. D., Schwartz, M. P., Bowman, C. N., Anseth, K. S. Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility. Biomaterials. 30 (35), 6702-6707 (2009).
  19. Mucha, A., et al. Membrane Type-1 Matrix Metalloprotease and Stromelysin-3 Cleave More Efficiently Synthetic Substrates Containing Unusual Amino Acids in Their P1′ Positions. Journal of Biological Chemistry. 273 (5), 2763-2768 (1998).
  20. Chai, S. C., Goktug, A. N., Chen, T. Assay Validation in High Throughput Screening – from Concept to Application. Drug Discovery and Development. , (2015).
  21. Iversen, P. W., et al. HTS Assay Validation. Assay Guidance Manual. , (2004).
  22. Leight, J. L., Tokuda, E. Y., Jones, C. E., Lin, A. J., Anseth, K. S. Multifunctional bioscaffolds for 3D culture of melanoma cells reveal increased MMP activity and migration with BRAF kinase inhibition. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (17), 5366-5371 (2015).
  23. Patterson, J., Hubbell, J. A. Enhanced proteolytic degradation of molecularly engineered PEG hydrogels in response to MMP-1 and MMP-2. Biomaterials. 31 (30), 7836-7845 (2010).

Play Video

Cite This Article
Fakhouri, A. S., Leight, J. L. Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels. J. Vis. Exp. (143), e59123, doi:10.3791/59123 (2019).

View Video