Summary

Puntos finales importantes y marcadores proliferativos para evaluar lesiones intestinales pequeñas y adaptación utilizando un modelo de ratón de mucositis inducida por quimioterapia

Published: May 12, 2019
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Summary

Aquí, presentamos un protocolo para establecer puntos finales importantes y marcadores proliferativos de pequeña lesión intestinal e hiperproliferación compensatoria utilizando un modelo de mucositis inducida por quimioterapia. Demostramos la detección de células que proliferan utilizando un marcador específico de ciclo celular y utilizando el peso intestinal pequeño, la profundidad de la cripta y la altura de las vellosidades como puntos finales.

Abstract

La adaptación intestinal es el mecanismo compensatorio natural que se produce cuando el intestino se pierde debido a un trauma. Las respuestas adaptativas, como la proliferación de células de cripta y el aumento de la absorción de nutrientes, son fundamentales en la recuperación, pero mal entendidas. Comprender el mecanismo molecular detrás de las respuestas adaptativas es crucial para facilitar la identificación de nutrientes o fármacos para mejorar la adaptación. A lo largo de la literatura se han descrito diferentes enfoques y modelos, pero se necesita una forma descriptiva detallada de realizar esencialmente los procedimientos para obtener datos reproducibles. Aquí, describimos un método para estimar puntos finales importantes y marcadores proliferativos de pequeñalesión intestinal e hiperproliferación compensatoria utilizando un modelo de mucositis inducida por quimioterapia en ratones. Demostramos la detección de células que proliferan utilizando un marcador específico de ciclo celular, así como el uso de peso intestinal pequeño, profundidad de la cripta y altura de vellosidad como puntos finales. Algunos de los pasos críticos dentro del método descrito son la extracción y el pesaje del intestino delgado y el sistema de software bastante complejo sugerido para la medición de esta técnica. Estos métodos tienen las ventajas de que no consumen mucho tiempo y que son rentables y fáciles de llevar a cabo y medir.

Introduction

La adaptación intestinal es el mecanismo compensatorio natural quese produce cuando el intestino se pierde debido a una enfermedad o cirugía 1,2. Después del trauma, el intestino se somete a una respuesta adaptativamorfométrica y funcional, caracterizada por la proliferación celular de la cripta y el aumento de la absorción de nutrientes 3. Este paso es fundamental en la recuperación, pero mal entendido. Los estudios experimentales de la respuesta adaptativa intestinal se han centrado en los cambios que se producen después de la resección del intestino delgado en ratones, ratas y cerdos, pero la comprensión del mecanismo molecular detrás de la respuesta adaptativa en otros tipos de lesiones (por ejemplo, química o bacteriano) es crucial para facilitar la identificación de nutrientes o medicamentos para mejorar la adaptación. Experimentalmente, se han utilizado diferentes enfoques para describir el complejo índice molecular y celular de la pequeña patología intestinal, incluyendo la puntuación histopatológica y la medición del resultado de la lesión. A pesar de esto, lo que está ausente de la literatura es una descripción detallada de cómo realizar los procedimientos que se necesitan para obtener datos reproducibles. Al identificar los factores involucrados en la adaptación, como las hormonas intestinales, se justifica un modelo animal fácil, de bajo costo y reproducible, y aquí sugerimos usar un modelo de mucositis intestinal inducida por quimioterapia (CIM).

Uno de los puntos finales más simples y muy informativos tanto de lesión como de adaptación es medir la masa del intestino delgado (SI). Sabemos que un sello distintivo de la mucositis es la apoptosis de los enterocitos, la atrofia de vellosidades dependiente del tiempo y la reducción de la mitosis. Por lo tanto, el examen de lamorfología intestinal es muy relevante en los modelos preclínicos 4,5. En los seres humanos, una disminución de la citrulina plasmática, un marcador de enterocitos en funcionamiento, se correlaciona con las puntuaciones de toxicidad y los marcadores inflamatorios6 además de la capacidad de absorción7, lo que sugiere que este aminoácido es un excelente biomarcador de Mucositis. La citrulina se puede medir tanto en ratones comoen ratas, y ha demostrado excelentes correlaciones con la longitud de vellosidades 8, la supervivencia de la cripta9y la mucositis inducida por radiación10.

Una de las principales ventajas de medir la citrulina plasmática es la capacidad de recoger mediciones repetidas de un animal. Sin embargo, el muestreo de sangre múltiple en ratones está restringido a un volumen total de sangre de 6 l/g/semana y requiere anestesia general. Esto por desgracia también limita el uso de mediciones de citrulina en ratones. Además, la medición de la citrulina requiere cromatografía líquida de alto rendimiento11,12, que es costosa y requiere mucho tiempo. Recientemente, mostramos que los niveles de citrulina en ratones se correlacionan significativamente con el peso de SI (p < 0.001) (datos no publicados), haciendo de la citrulina una medida directa que refleja la masa de enterocitos. Una limitación a la medición del peso SI es la necesidad de sacrificar los ratones y, por lo tanto, no es posible realizar mediciones repetidas dentro del mismo ratón. Aun así, el método ofrece la posibilidad de realizar una variedad de otros análisis de tejidodirigidos a la pregunta de investigación, y estos hechos pueden compensar el uso adicional de animales. Por lo tanto, sugerimos el uso del peso SI como un biomarcador fácil, de bajo costo y rápido de lesiones y adaptación en ratones. Para garantizar la reproducibilidad y la variación analítica aceptable, los intestinos deben ser cuidadosamente retirados del animal, lavados con salina, vaciados y secados antes de pesar. En este artículo, mostramos exactamente cómo se realiza este procedimiento.

Otro sello distintivo de la mucositis es la pérdida de las células proliferantesen las criptas y una hiperproliferación compensatoria durante el período regenerativo 3. El marcador celular Ki67 se ha utilizado con frecuencia para determinar células proliferativas rápidas por medio de inmunohistoquímica13. A pesar de que Ki67 es un simple marcador de proliferación, tiene una tendencia a la imprecisión ya que Ki67 está presente durante todas las fases activas del ciclo celular (G1, S, G2 y M)14. El etiquetado específico es esencial para detectar células replicantes, por lo que sugerimos la incorporación in situ de 5-bromo-2′-desoxiuridina (BrdU), un análogo sintético de la timidina, ya que se limita en gran medida a la replicación de células en la fase S15. BrdU se inyecta en los animales 150 minutos antes del sacrificio y las células se pueden detectar posteriormente con inmunohistoquímica utilizando anticuerpos específicos de BrdU. En este artículo de método, mostramos exactamente cómo medir el área de las células inmunopositivas De dUu dentro de una cripta utilizando un software de imagen libre.

Los cambios morfológicos y funcionales a menudo se estudian en modelos de mucositis inducida por 5-FU, donde la adaptación intestinal se evalúa por altura de vellosidad y profundidad de la cripta. Durante este estudio, encontramos que durante la fase aguda de la mucositis, que es igual a la fase de lesión, la proliferación medida por la incorporación de BrdU no está correlacionada con la profundidad de la cripta. En contraste con esto, la profundidad de la cripta se correlaciona significativamente con la proliferación vista en la fase de reparación de la mucositis, 3 a 5 días después de la inducción. Esto sugiere que la fase aguda de la mucositis no se puede medir solo por la profundidad de la cripta. Sugerimos que cuando se utiliza la proliferación como punto final en la fase aguda de los ratones de mucositis, la incorporación de BrdU debe utilizarse preferentemente, pero al cuantificar la hiperproliferación en la etapa posterior durante la fase regenerativa, la profundidad de la cripta es una profundidad razonable alternativa a la incorporación de BrdU. El objetivo de este estudio fue describir este modelo de una manera que pueda ser utilizado por todos los investigadores, tanto en el campo de la oncología, pero especialmente los investigadores no familiarizados con los modelos de lesión intestinal.

El modelo descrito se puede utilizar para fenotipo modelos transgénicos de acuerdo con la respuesta adaptativa utilizando el peso corporal, el peso SI y la profundidad de la cripta como puntos finales. Como ejemplo, mostramos aquí cómo usamos el modelo de mucositis inducida por 5-fluorouracilo (5-FU) en un modelo celular knock out con secreción insuficiente de células L16. El péptido similar al glucagón-1 (GLP-1) y el péptido similar al glucagón-2 (GLP-2) son hormonas intestinales cosecretadas de las células L enteroendocrinas en respuesta a la ingesta de alimentos17,18. GLP-2 es reconocido como un factor importante para la curación intestinal, la regulación de la apoptosis mucosa y la mejora de la función barrera del SI19,20,21,22. Basándonos en la literatura, hipotetizómos que las hormonas endógenas son esenciales para la hiperproliferación compensatoria que ocurre en la respuesta adaptativa después de una lesión.

Protocol

Todos los métodos descritos se llevaron a cabo de conformidad con las directrices de la legislación danesa que rige la experimentación con animales (1987). Los estudios se realizaron con el permiso de la Inspección Danesa de Experimentos Animales (2013-15-2934-00833) y del comité ético local. NOTA: Los ratones hembra C57BL/6J (20 a 25 g) se obtuvieron y albergaron ocho por jaula en luz estándar de 12 h, ciclo oscuro de 12 h con acceso gratuito al agua y comida estándar. Los animales fu…

Representative Results

En el primer experimento, inducimos la mucositis en ratones en el día 0 y sacrificamos un grupo de ratones cada día durante 5 días consecutivos. Al medir el peso SI, encontramos que este parámetro disminuyó desde el día 2 hasta el día 4 sugiriendo una pérdida en la masa enterocitos. También encontramos que en el día 5, el peso SI no era significativamente diferente del día 0 (ratones no tratados) (Figura1). La proliferación medida por la incorpora…

Discussion

Aquí, demostramos un método ampliamente accesible para estudiar la lesión SI y la regeneración en un modelo de ratón. Existe una amplia variedad de modelos animales preclínicos de lesión intestinal, pero es vital que entendamos que cada modelo es único y que los puntos finales deben ser apropiados para responder a la pregunta de investigación. Este modelo es excelente para estudiar la respuesta adaptativa a la lesión, pero los puntos finales deben modificarse cuando se utiliza el modelo como un modelo preclíni…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por una subvención sin restricciones del Novo Nordisk Center for Basic Metabolic Research y la Fundación Lundbeck.

Materials

5-Fluorouracil Hospira Nordic AB, Sweden 137853
Ketaminol®Vet Merck, New Jersey, USA 511485
Rompun®Vet Xylazine Rompunvet, Bayer, Leverkusen, Germany. 148999
10% nautral formalin buffer Cell Path Ltd, Powys, United Kingdom BAF-5000-08A
HistoClear National Diagnostics, United Kingdom HS-200
Pertex HistoLab®, Sweden 840
BrdU Sigma-Aldrich, Germany. B5002
Tris/EDTA pH 9 buffer Thermofisher scientific, Denmark TA-125-PM4X
Peroxide Block Ultravision Quanto Mouse on Mouse kit, Thermofisher Scientific, Denmark TL-060-QHDM
Rodent Block buffer Ultravision Quanto Mouse on Mouse kit, Thermofisher Scientific, Denmark TL-060-QHDM
Monoclonal mouse anti-BrdU antibody Thermofisher Scientific, Denmark. MA1-81890
Lab Vision Antibody Diluent OP Quanto Thermofisher Scientific, Denmark. TA-125-ADQ
Horseradish peroxidase Ultravision Quanto Mouse on Mouse kit, Thermofisher Scientific, Denmark TL-060-QHDM
DAB Quanto Substrate DAB Substrate Kit, Thermofisher Scientific, Denmark TA-125-QHDX
DAB Quanto Chromogen DAB Substrate Kit, Thermofisher Scientific, Denmark TA-125-QHDX
Zen Lite Software (Blue edition) Carl Zeiss A/S https://www.zeiss.com/microscopy/int/products/microscope-software/zen-lite.html
ImageJ Software LOCI, University of Wisconsin https://imagej.nih.gov/ij/

References

  1. Weinstein, L. D., Shoemaker, C. P., Hersh, T., Wright, H. K. Enhanced intestinal absorption after small bowel resection in man. The Archives of Surgery. 99 (5), 560-562 (1969).
  2. Helmrath, M. A., VanderKolk, W. E., Can, G., Erwin, C. R., Warner, B. W. Intestinal adaptation following massive small bowel resection in the mouse. Journal of the American College of Surgeons. 183 (5), 441-449 (1996).
  3. Kissow, H., et al. Exogenous glucagon-like peptide-2 (GLP-2) prevents chemotherapy-induced mucositis in rat small intestine. Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 70 (1), 39-48 (2012).
  4. Kaczmarek, A., Brinkman, B. M., Heyndrickx, L., Vandenabeele, P., Krysko, D. V. Severity of doxorubicin-induced small intestinal mucositis is regulated by the TLR-2 and TLR-9 pathways. The Journal of Pathology. 226 (4), 598-608 (2012).
  5. Pontoppidan, P. L., et al. Intestinal response to myeloablative chemotherapy in piglets. Experimental Biology and Medicine. 239 (1), 94-104 (2014).
  6. Pontoppidan, P. L., et al. Associations between gastrointestinal toxicity, micro RNA and cytokine production in patients undergoing myeloablative allogeneic stem cell transplantation. International Immunopharmacology. 25 (1), 180-188 (2015).
  7. Crenn, P., Messing, B., Cynober, L. Citrulline as a biomarker of intestinal failure due to enterocyte mass reduction. Clinical Nutrition. 27 (3), 328-339 (2008).
  8. Fijlstra, M., et al. Lactose maldigestion during methotrexate-induced gastrointestinal mucositis in a rat model. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 300 (2), G283-G291 (2011).
  9. Jones, J. W., et al. Citrulline as a Biomarker in the Murine Total-Body Irradiation Model: Correlation of Circulating and Tissue Citrulline to Small Intestine Epithelial Histopathology. Health Physics. 109 (5), 452-465 (2015).
  10. Lutgens, L. C., et al. Citrulline: a physiologic marker enabling quantitation and monitoring of epithelial radiation-induced small bowel damage. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 57 (4), 1067-1074 (2003).
  11. Demacker, P. N., et al. Plasma citrulline measurement using UPLC tandem mass-spectrometry to determine small intestinal enterocyte pathology. Journal of Chromatography B: Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 877 (4), 387-392 (2009).
  12. van Eijk, H. M., Rooyakkers, D. R., Deutz, N. E. Rapid routine determination of amino acids in plasma by high-performance liquid chromatography with a 2-3 microns Spherisorb ODS II column. Journal of Chromatography. 620 (1), 143-148 (1993).
  13. Scholzen, T., Gerdes, J. The Ki-67 protein: from the known and the unknown. Journal of Cellular Physiology. 182 (3), 311-322 (2000).
  14. Khoshyomn, S., Lew, S., DeMattia, J., Singer, E. B., Penar, P. L. Brain tumor invasion rate measured in vitro does not correlate with Ki-67 expression. Journal of Neuro-Oncology. 45 (2), 111-116 (1999).
  15. Matatall, K. A., Kadmon, C. S., King, K. Y. Detecting Hematopoietic Stem Cell Proliferation Using BrdU Incorporation. Methods in Molecular Biology. , 91-103 (2018).
  16. Hytting-Andreasen, R., et al. Endogenous glucagon-like peptide- 1 and 2 are essential for regeneration after acute intestinal injury in mice. PLoS One. 13 (6), e0198046 (2018).
  17. Elliott, R. M., et al. Glucagon-like peptide-1 (7-36)amide and glucose-dependent insulinotropic polypeptide secretion in response to nutrient ingestion in man: acute post-prandial and 24-h secretion patterns. Journal of Endocrinology. 138 (7-36), 159-166 (1993).
  18. Orskov, C., Wettergren, A., Holst, J. J. Secretion of the incretin hormones glucagon-like peptide-1 and gastric inhibitory polypeptide correlates with insulin secretion in normal man throughout the day. Scandinavian Journal of Gastroenterology. 31 (7), 665-670 (1996).
  19. Drucker, D. J., Erlich, P., Asa, S. L., Brubaker, P. L. Induction of intestinal epithelial proliferation by glucagon-like peptide 2. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (15), 7911-7916 (1996).
  20. Lee, S. J., et al. Disruption of the murine Glp2r impairs Paneth cell function and increases susceptibility to small bowel enteritis. Endocrinology. 153 (3), 1141-1151 (2012).
  21. Shin, E. D., Estall, J. L., Izzo, A., Drucker, D. J., Brubaker, P. L. Mucosal Adaptation to Enteral Nutrients is Dependent on the Physiologic Actions of Glucagon-Like Peptide-2 in Mice. Gastroenterology. 128 (5), 1340-1353 (2005).
  22. Tsai, C. H., et al. Intestinal growth-promoting properties of glucagon-like peptide-2 in mice. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 273 (1), E77-E84 (1997).
  23. Sangild, P. T., Shen, R. L., Pontoppidan, P., Rathe, M. Animal models of chemotherapy-induced mucositis: translational relevance and challenges. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 314 (2), G231-G246 (2017).
  24. Gibson, R. J., et al. Irinotecan causes severe small intestinal damage, as well as colonic damage, in the rat with implanted breast cancer. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 18 (9), 1095-1100 (2003).
  25. Zhang, C., et al. Bone marrow stromal cells upregulate expression of bone morphogenetic proteins 2 and 4, gap junction protein connexin-43 and synaptophysin after stroke in rats. 신경과학. 141 (2), 687-695 (2006).
  26. Biebl, M., Cooper, C. M., Winkler, J., Nl Kuhn, H. G. J. Analysis of neurogenesis and programmed cell death reveals a self-renewing capacity in the adult rat brain. Neuroscience Letters. 291 (1), 17-20 (2000).

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Billeschou, A., Hunt, J., Kissow, H. Important Endpoints and Proliferative Markers to Assess Small Intestinal Injury and Adaptation using a Mouse Model of Chemotherapy-Induced Mucositis. J. Vis. Exp. (147), e59236, doi:10.3791/59236 (2019).

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