Summary

Konvertering av Human indusert pluripotent Stem Cells (iPSCs) i funksjonell spinal og skallen motor neurons bruke PiggyBac vektorer

Published: May 01, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen gir rask og effektiv konvertering av indusert Pluripotent stamceller i motoriske neurons med en spinal eller skallen identitet, ved svangerskap utenfor livmoren av transkripsjon faktorer fra induserbart piggyBac vektorer.

Abstract

Vi beskriver her en metode for å få funksjonell spinal og skallen motor neurons fra humant indusert Pluripotent stamceller (iPSCs). Direkte konvertering til motoriske nervecellen er oppnådd ved svangerskap utenfor livmoren uttrykk for alternative moduler av transkripsjon faktorer, nemlig Ngn2, Isl1 og Lhx3 (NIL) eller Ngn2, Isl1 og Phox2a (NIP). NIL og NIP spesifisere, henholdsvis, spinal og skallen motorisk Nevron identitet. Vår protokoll starter med generering av modifiserte iPSC linjer der NIL eller NIP er stabilt integrert i Genova via en piggyBac Transposon vektor. Uttrykk for transgenes blir deretter indusert av Doxycycline og fører, i 5 dager, til konvertering av iPSCs i MN forfedre. Påfølgende modning, for 7 dager, fører til homogene populasjoner av spinal eller skallen MNs. Vår metode har flere fordeler fremfor tidligere protokoller: det er ekstremt rask og forenklet; det krever ikke viral infeksjon eller ytterligere MN isolasjon; Det gjør det mulig å generere ulike MN subpopulasjoner (spinal og skallen) med en bemerkelsesverdig grad av modning, som demonstrert av evnen til brann tog av handlingen potensialer. Videre kan et stort antall motoriske neurons fås uten rensing fra blandede populasjoner. iPSC-avledet spinal og skallen motor neurons kan brukes til in vitro modellering av amyotrofisk lateral sklerose og andre nevrodegenerative sykdommer i motorisk Nevron. Homogen motorisk Nevron populasjoner kan representere en viktig ressurs for celle type bestemt legemiddel screenings.

Introduction

Motoriske Nevron (MN) degenerasjon spiller en utløsende rolle i menneskelige sykdommer som amyotrofisk lateral sklerose (ALS) og spinal muskel atrofi (SMA). Etablering egnet in vitro celle modellsystemer som recapitulate kompleksiteten i den menneskelige MN er et viktig skritt mot utviklingen av nye terapeutiske tilnærminger. Indusert Pluripotent stamceller (iPSCs), som er utstyrt med bemerkelsesverdig plurilineage differensiering egenskaper, har nå blitt avledet fra en rekke pasienter rammet av motoriske Nevron sykdommer1,2. Ytterligere iPSC linjer bærer patogene mutasjoner knyttet til MN sykdommer har blitt generert av genredigering, fra kontroll “sunn” Pluripotent stamceller3. Disse linjene representerer nyttige verktøy for in vitro sykdom modellering og narkotika screening, forutsatt at hensiktsmessige metoder for iPSC differensiering inn MNs er tilgjengelig. Begrunnelsen for utviklingen av denne metoden er å gi det vitenskapelige samfunnet interessert i MN sykdommer med en rask og effektiv differensiering protokollen gir opphav til eldre funksjonell MNs. Den første fordelen med denne metoden er dens tidsramme for utførelse. En annen relevant punkt av styrke kommer fra eliminering av eventuelle rensing trinn. Endelig protokollen kan brukes til å generere to forskjellige populasjoner av motor neurons.

Muligheten for å generere ulike under typer av MNs er spesielt relevant for modellering av MN sykdommer. Ikke alle MN under typer er like sårbare i ALS og SMA og utbruddet av symptomene i ulike motor enheter i stor grad påvirker prognosen. I ALS, spinal utbruddet med symptomer som starter i øvre og nedre lemmer fører til døden i ca 3-5 år4. Omvendt, bulbar utbruddet, og starter med degenerasjon av skallen MNs, har en verste prognose. Videre er prosentandelen av bulbar utbruddet signifikant høyere hos pasienter med mutasjoner i RNA-bindende proteiner FUS og TDP-43 enn hos personer med SOD1 mutasjoner5. Nesten helheten av alternative MN differensiering protokoller er avhengig av aktiviteten til retinoic acid (ra), som tildeler en spinal karakter å skille iPSCs6,7,8. Dette begrenser muligheten for å studere indre faktorer, som kan være beskyttende i bestemte MN under typer9,10.

I samsvar med et tidligere arbeid i musen embryonale stamceller11, har vi nylig vist at i humant iPSCs svangerskap/Ngn2, Isl1 og LHX3 (Nil) induserer en spinal MN identitet, mens Ngn2 og Isl1 pluss PHOX2A (Nip) spesifiserer skallen MNs12. Vi har derfor utviklet en effektiv protokoll, som fører til produksjon av menneskelige MNs utstyrt med funksjonelle egenskaper i en 12 dagers behandlingstid. Hensikten med denne metoden er å få, i en kort tidsramme og uten behov for rensing (f. eks, av FACS), celle populasjoner svært beriket for MNs med spinal eller hjerne identitet.

Protocol

1. vedlikehold av Human iPSCs Utarbeidelse av matrise-belagt plater Tin et 5 mL hetteglass med matrise (se tabell over materialer) ved 4 ° c over natten. Den opprinnelige matrisen bestandene kommer på ulike lager konsentrasjoner og alikvoter er laget i henhold til fortynning faktor som er angitt på dataarket, spesifikke for den enkelte mye. Det er viktig å holde hetteglasset og rør isen kaldt for å hindre prematur gelling av matrisen. Dispensere matrise i alikv…

Representative Results

En skjematisk beskrivelse av den differensiering metoden er vist i figur 1. Human iPSCs (WT I linje3) ble transfekterte med EpB-BSD-TT-Nil eller EpB-BSD-TT-Nip, genererer, etter blasticidin utvalg, stabile og induserbart cellelinjer12, heretter referert til som iPSC-Nil og IPSC-Nip, henholdsvis. Differensiering celler ble karakterisert for uttrykket av pluripotency markør OCT4 og Pan-neuronal markør TUJ1. Immunostaining analyse viste ensartet…

Discussion

Denne protokollen gjør det mulig å effektivt konvertere menneskelige iPSCs i spinal og skallen motor neurons takket være utenfor livmoren uttrykk for avstamning-spesifikke transkripsjon faktorer. Disse transgenes er induserbart av Doxycycline og stabilt integrert i Genova takket være en piggyBac Transposon-basert vektor. I en blandet befolkning, en eller flere eksemplarer av piggyBac vektoren vil bli tilfeldig integrert i Genova av individuelle celler, øker risikoen for Genova integritet endringer. Videre, en progre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke Imaging Facility ved Center for Life nano Science, Istituto Italiano di Tecnologia, for støtte og tekniske råd. Vi er takknemlige for medlemmer av Center for Life nano Science for nyttig diskusjon. Dette arbeidet ble delvis støttet av et stipend fra AriSLA (pilot Grant 2016 “StressFUS”) til AR.

Materials

5-Bapta Sigma-Aldrich A4926-1G chemicals for electrophysiological solutions
Accutase Sigma-Aldrich A6964-100ML  Cell dissociation reagent
anti-CHAT EMD Millipore  AB144P Anti-Choline Acetyltransferase. Primary antibody used in immunostaining assays. RRID: AB_2079751; Lot number: 2971003
anti-goat Alexa Fluor 488  Thermo Fisher Scientific  A11055 Secondary antibody used for immonofluorescence assays. RRID: AB_2534102; Lot number: 1915848
anti-mouse Alexa Fluor 647 Thermo Fisher Scientific  A31571 Secondary antibody used for immonofluorescence assays. RRID: AB_162542; Lot number: 1757130
anti-Oct4  BD Biosciences 611202 Primary antibody used in immunostaining assays. RRID: AB_398736; Lot number: 5233722
anti-Phox2b Santa Cruz Biotechnology, Inc. sc-376997 Primary antibody used in immunostaining assays. Lot number: E0117
anti-rabbit Alexa Fluor 594  Immunological Sciences IS-20152-1 Secondary antibody used for immonofluorescence assays
anti-TUJ1  Sigma-Aldrich  T2200 Primary antibody used in immunostaining assays. RRID: AB_262133
B27 Miltenyi Biotec 130-093-566 Serum free supplement for neuronal cell maintenance
Bambanker Nippon Genetics NGE-BB02 Cell freezing medium, used here for motor neuron progenitors
BDNF PreproTech 450-02 Brain-Derived Neurotrophic Factor
Blasticidin Sigma-Aldrich 203350 Nucleoside antibiotic that inhibits protein synthesis in prokaryotes and eukaryotes
BSA Sigma-Aldrich A2153 Bovine Serum Albumin. Blocking agent to prevent non-specific binding of antibodies in immunostaining assays
CaCl2 Sigma-Aldrich C3881 chemicals for electrophysiological solutions
Clampex 10 software Molecular Devices Clampex 10 Membrane currents recording system
Corning Matrigel hESC-qualified Matrix Corning 354277 Reconstituted basement membrane preparation from the Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) mouse sarcoma. Used for adhesion of iPSC to plastic and glass supports
CRYOSTEM ACF FREEZING MEDIA Biological Industries 05-710-1E Freezing medium for human iPSCs
D-Glucose Sigma-Aldrich G5146 chemicals for electrophysiological solutions
DAPI powder Roche 10236276001 4′,6-diamidino-2-phenylindole. Fluorescent stain that binds to adenine–thymine rich regions in DNA used for nuclei staining in immonofluorescence assays
DAPT AdipoGen AG-CR1-0016-M005 Gamma secretase inhibitor
Dispase Gibco 17105-041 Reagent for gentle dissociation of human iPSCs
DMEM/F12 Sigma-Aldrich D6421-500ML Basal medium for cell culture
Doxycycline Sigma-Aldrich D9891-1G  Used to induce expression of transgenes from epB-Bsd-TT-NIL and epB-Bsd-TT-NIP vectors
DS2U  WiCell UWWC1-DS2U Commercial human iPSC line
E.Z.N.A Total RNA Kit  Omega bio-tek R6834-02 Kit for total extraction of RNA from cultured eukaryotic cells
GDNF PreproTech 450-10 Glial-Derived Neurotrophic Factor
Gibco Episomal hiPSC Line Thermo Fisher Scientific A18945 Commercial human iPSC line
Glutamax Thermo Fisher Scientific 35050038 An alternative to L-glutamine with increased stability. Improves cell health.
Hepes Sigma-Aldrich H4034 chemicals for electrophysiological solutions
iScript Reverse Transcription Supermix for RT-qPCR  Bio-Rad 1708841 Kit for gene expression analysis using real-time qPCR
iTaqTM Universal SYBR Green Supermix  Bio-Rad 172-5121  Ready-to-use reaction master mix optimized for dye-based quantitative PCR (qPCR) on any real-time PCR instrument
K-Gluconate Sigma-Aldrich G4500 chemicals for electrophysiological solutions
KCl Sigma-Aldrich P9333 chemicals for electrophysiological solutions
L-ascorbic acid LKT Laboratories A7210 Used in cell culture as an antioxidant
Laminin Sigma-Aldrich 11243217001 Promotes attachment and growth of neural cells in vitro
Laser scanning confocal microscope  Olympus  iX83 FluoView1200 Confocal microscope for acquisition of immunostaining images
Mg-ATP Sigma-Aldrich A9187 chemicals for electrophysiological solutions
MgCl2 Sigma-Aldrich M8266 chemicals for electrophysiological solutions
Mounting Medium  Ibidi 50001 Mounting solution used for confocal microscopy and immunofluorescence assays
Multiclamp patch-clamp amplifier Molecular Devices 700B Membrane currents recording system
Na-GTP Sigma-Aldrich G8877 chemicals for electrophysiological solutions
NaCl Sigma-Aldrich 71376 chemicals for electrophysiological solutions
NEAA Thermo Fisher Scientific 11140035 Non-Essential Amino Acids. Used as a supplement for cell culture medium, to increase cell growth and viability.
Neon 100 μL Kit Thermo Fisher Scientific MPK10096 Cell electroporation kit
Neon Transfection System Thermo Fisher Scientific MPK5000 Cell electroporation system
Neurobasal Medium Thermo Fisher Scientific 21103049 Basal medium designed for long-term maintenance and maturation of neuronal cell populations without the need for an astrocyte feeder layer
NutriStem-XF/FF  Biological Industries 05-100-1A Human iPSC culture medium
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 157-8 Used for cell fixation in immunostaining assays
PBS Sigma-Aldrich D8662-500ML Dulbecco s Phosphate Buffer Saline w Calcium w Magnesium
PBS Ca2+/Mg2+ free Sigma-Aldrich D8537-500ML Dulbecco s Phosphate Buffer Saline w/o Calcium w/o Magnesium
Penicillin/Streptomycin  Sigma-Aldrich P4333-100ML Penicillin/Streptomicin solution used to prevent cell culture contamination from bacteria.
poly-ornithine Sigma-Aldrich P4957 Promotes attachment and growth of neural cells in vitro
SU5402 Sigma-Aldrich SML0443-5MG Selective inhibitor of vascular endothelial growth factor receptor 2 (VEGFR-2)
Triton X-100  Sigma-Aldrich T8787 4-(1,1,3,3-Tetramethylbutyl)phenyl-polyethylene glycol, t-Octylphenoxypolyethoxyethanol, Polyethylene glycol tert-octylphenyl ether. Used for cell permeabilization in immunostaining assays
Upright microscope Olympus BX51VI Microscope for electrophysiological recording equipped with CoolSnap Myo camera 
Y-27632  (ROCK inhibitor) Enzo Life Sciences ALX-270-333-M005  Cell-permeable selective inhibitor of Rho-associated, coiled-coil containing protein kinase (ROCK). Increases iPSC survival
μ-Slide 8 Well  Ibidi 80826 Support for high–end microscopic analysis of fixed cells

References

  1. Dimos, J. T., et al. Induced Pluripotent Stem Cells Generated from Patients with ALS Can Be Differentiated into Motor Neurons. Science (New York, NY). 321 (5893), 1218 (2008).
  2. Ebert, A. D., et al. Induced pluripotent stem cells from a spinal muscular atrophy patient. Nature. 457 (7227), 277-280 (2009).
  3. Lenzi, J., et al. ALS mutant FUS proteins are recruited into stress granules in induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) derived motoneurons. Disease models & mechanisms. 8 (7), 755-766 (2015).
  4. Wijesekera, L. C., Leigh, P. N. Amyotrophic lateral sclerosis. Orphanet journal of rare diseases. 4 (3), 1-22 (2009).
  5. Yan, J., et al. Frameshift and novel mutations in FUS in familial amyotrophic lateral sclerosis and ALS/dementia. Neurology. 75 (9), 807-814 (2010).
  6. Boulting, G. L., et al. A functionally characterized test set of human induced pluripotent stem cells. Nature biotechnology. 29 (3), 279-286 (2011).
  7. Amoroso, M. W., et al. Accelerated high-yield generation of limb-innervating motor neurons from human stem cells. The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. 33 (2), 574-586 (2013).
  8. Maury, Y., et al. Combinatorial analysis of developmental cues efficiently converts human pluripotent stem cells into multiple neuronal subtypes. Nature biotechnology. 33 (1), 89-96 (2015).
  9. Allodi, I., et al. Differential neuronal vulnerability identifies IGF-2 as a protective factor in ALS. Scientific reports. 6, 25960 (2016).
  10. Kaplan, A., et al. Neuronal matrix metalloproteinase-9 is a determinant of selective neurodegeneration. Neuron. 81 (2), 333-348 (2014).
  11. Mazzoni, E. O., et al. Synergistic binding of transcription factors to cell-specific enhancers programs motor neuron identity. Nature neuroscience. 16 (9), 1219-1227 (2013).
  12. De Santis, R., Garone, M. G., Pagani, F., de Turris, V., Di Angelantonio, S., Rosa, A. Direct conversion of human pluripotent stem cells into cranial motor neurons using a piggyBac vector. Stem Cell Research. 29, 189-196 (2018).
  13. Yusa, K., Zhou, L., Li, M. A., Bradley, A., Craig, N. L. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (4), 1531-1536 (2011).
  14. Sances, S., et al. Modeling ALS with motor neurons derived from human induced pluripotent stem cells. Nature Neuroscience. 16 (4), 542-553 (2016).
  15. Miller, J. D., et al. Human iPSC-based modeling of late-onset disease via progerin-induced aging. Cell stem cell. 13 (6), 691-705 (2013).
  16. Lenzi, J., et al. Differentiation of control and ALS mutant human iPSCs into functional skeletal muscle cells, a tool for the study of neuromuscolar diseases. Stem Cell Research. 17 (1), 140-147 (2016).
  17. Zhang, Y., et al. Rapid Single-Step Induction of Functional Neurons from Human Pluripotent Stem Cells. Neuron. 78 (5), 785-798 (2013).
  18. Theka, I., et al. Rapid generation of functional dopaminergic neurons from human induced pluripotent stem cells through a single-step procedure using cell lineage transcription factors. Stem cells translational medicine. 2 (6), 473-479 (2013).
  19. Pawlowski, M., et al. Inducible and Deterministic Forward Programming of Human Pluripotent Stem Cells into Neurons, Skeletal Myocytes, and Oligodendrocytes. Stem Cell Reports. 8 (4), 803-812 (2017).
  20. Li, X., et al. Fast Generation of Functional Subtype Astrocytes from Human Pluripotent Stem Cells. Stem Cell Reports. 11 (4), 998-1008 (2018).
  21. Nehme, R., et al. Combining NGN2 Programming with Developmental Patterning Generates Human Excitatory Neurons with NMDAR-Mediated Synaptic Transmission. Cell reports. 23 (8), 2509-2523 (2018).
check_url/kr/59321?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Garone, M. G., de Turris, V., Soloperto, A., Brighi, C., De Santis, R., Pagani, F., Di Angelantonio, S., Rosa, A. Conversion of Human Induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) into Functional Spinal and Cranial Motor Neurons Using PiggyBac Vectors. J. Vis. Exp. (147), e59321, doi:10.3791/59321 (2019).

View Video