Summary

Высокой пропускной силы тяги Микроскопия использованием PDMS показывает доз-зависимые эффекты преобразования фактор роста-я на Эпителиальный-к-мезенхимальный переход

Published: June 01, 2019
doi:

Summary

Мы представляем высокую пропускную силу силы ассеис изготовлены с силиконовой резины (PDMS). Этот новый ассси подходит для изучения физических изменений в сотрудничности клеток во время различных биологических и биомедицинских процессов и заболеваний. Мы демонстрируем полезность этого метода, измеряя tGF-я зависимое увеличение контрактности во время эпителиального перехода к мезенхимальному.

Abstract

Сотовая контрактность имеет важное значение в различных аспектах биологии, движущих процессов, которые варьируются от подвижности и деления, для сокращения тканей и механической стабильности, и представляет собой основной элемент многоклеточной жизни животных. В клетках атто-миозина, акто-миосин сокращения наблюдается в тяговых сил, которые клетки оказывают на их субстрат. Дисрегуляция клеточной контрактильности появляется в множестве патологий, что делает контрактность перспективной мишенью в различных диагностических подходах с использованием биофизики в качестве метрики. Кроме того, новые терапевтические стратегии могут быть основаны на исправлении очевидной неисправности клеточной контрактности. Однако эти приложения требуют прямой количественной оценки этих сил.

Мы разработали силиконовую эластомерную масляную силовую микроскопию (TFM) в параллельном формате мультиколодца. Наше использование силиконовой резины, в частности полидиметилсилоксана (PDMS), а не широко используемых гидрогель полиакриламид (PAA) позволяет нам сделать надежные и инертные субстраты с неопределенным исполидных сроков хранения, не требующих специализированных условий хранения. В отличие от подходов на основе столба-PDMS, которые имеют модуль в диапазоне GPa, PDMS, используемый здесь, очень совместим, от примерно 0,4 кПа до 100 кПа. Мы создаем платформу высокой пропускной силы для TFM путем раздела этих больших монолитных субстратов, пространственно в биохимически независимых скважин, создавая многоскважинную платформу для скрининга силы тяги, совместимую с существующими многоскважинными системами.

В этой рукописи мы используем эту многостороннюю систему силы тяги для изучения Эпителия к мезенхимальному переходу (EMT); мы индуцируем EMT в клетках NMuMG путем подвергать их к TGF-я, и для того чтобы количественно биофизические изменения во время EMT. Мы измеряем сородичность как функцию концентрации и продолжительности воздействия TGF-я. Наши выводы здесь демонстрируют полезность параллелизированного TFM в контексте биофизики болезней.

Introduction

Контрактность акто-миозина является важным элементом активной клеточной механики, влияющим на поведение клеток от подвижности и пролиферации до дифференциации стволовых клеток. В тканях контрактность приводит к активности от полярного разделения при эмбриогенезе, к сужению дыхательных путей и сердечной деятельности. Критически, для того чтобы произвести напряжение, клетки должны сперва придерживаться к их внеклеточной окружающей среде. При этом эта договорность генерирует силы тяги на их окрестностях. Микроскопия силы тяги (TFM) вытекла в множество форм как путь к количественной оценке этих усилий от различных клеток на по-разному условиях.

Область TFM стала свидетелем исключительной широты инноваций и применения, и результаты проложили путь к новым перспективам в биологии, которые включают механику и физические силы. Начиная с морщинсиликоновых силиконовых субстратов1, исследователи применили различные методы для измерения сил тяги клеток. Эти подходы постоянно совершенствуются и в настоящее время достиглиуровня разрешения порядка нескольких микрон 2. Тем не менее, одна основная проблема возникла, которая является трудность в создании субстратов соответствующим низким модули с использованием имеющихся силиконов. Чтобы обойти эту проблему, полиакриламид был принят в качестве замены в связи с легкостью создания субстратов по заказу 1-20 кПа3. Недавно мы внедрили оченьсовместимые силиконы в TFM 4, что позволяет нам изготовить тот же диапазон модули, что и полиакриламид, но с преимуществами инертного и надежного силикона.

Подходы ТФМ позволили провести ценные механо-биологические открытия, однако постоянным недостатком является их сложность, часто ограничивающая их использование исследователями в инженерных или физических дисциплинах. Это в значительной степени объясняется подробными калибровками и сложными расчетами, которые необходимы для количественной оценки контрактности. Еще одной важной проблемой является то, что методы TFM в основном низкой пропускной способ и, следовательно, плохо подходит для изучения многих различных условий или популяций одновременно5. Это создало узкое место, которое препятствует переносу ТФМ из специализированной биофизики в более широкие биологические и фармакологические приложения.

Недавно мы разработали многоскважинную пластину TFM, которая позволяет исследователям параллелизировать свои измерения TFM для более быстрой количественной оценки показателей контрактности, исследуя влияние различных соединений, а также используя меньше реагентов4 . Эта методология имеет широкую полезность в различных исследованиях механобиологии, от оценки влияния соединений на клеточную активность до количественной оценки сократительных изменений в дифференциации или заболеваниях.

Одной из областей биомедицинских исследований, которые принесут большую пользу от TFM является изучение того, как физические сигналы воздействия злокачественных фенотипов раковых клеток. Метастаз, ответственный за 90% смертей, связанных с раком, характеризуется раковыми клетками, покидающих исходный участок опухоли и колонизирующих вторичном месте. Для клеток мигрировать через ткани и пройти в и из сосудистой системы, они должны радикально изменить свою форму, чтобы протиснуться через эти физические барьеры, генерируя значительные силы, чтобы тянуть свой путь вдоль внеклеточной матрицы или двигаться между другими Клетки. Эти силы передаются в субстрат через фокусные взаимодействия2,3и могут быть количественно с помощью TFM. В то время как раковые заболевания биохимически исключительно разнообразны, с расширяющимся репертуаром известных мутаций и белковых изменений, наблюдались некоторые общие физические изменения; в различных раковых заболеваний, в том числе молочной железы, простаты и рака легких, метастатические клетки были показаны оказывать 2-3 раза тяговые силы неметастатических клеток6,7,8. Эти результаты показывают, что может быть сильная корреляция между метастатическим прогрессированием и тяговые силы, оказываемые клетками; однако трудно изучить подробные временные изменения в контрактности.

Эпителиальный переход к мезенхимальному переходу (ЭМТ) представляет собой процесс, при котором клетки уменьшают адепты и плотное соединение опосредованное сливки клеток, становясь более мигрирующим и инвазивным. В дополнение к физиологическим функциям, которые включают заживление ран и процессы развития, EMT также процесс, используемый во время метастазирования, что делает его полезной модельной системой для изучения этого процесса. Используя TGF-я, мы можем побудить EMT в murine молочной эпителиальных клеток (NMuMG)9 непосредственно количественно физических изменений во время этой трансформации, и характеризуют время и дозо-зависимые эффекты TGF-я на ЭМТ и сократительность клеток. В этой статье мы демонстрируем полезность этого подхода, измеряя изменения в контрактности во время индуцированной EMT.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Следующий протокол будет направлять исследователей в изготовлении и использовании многоскважины TFM блюдо показано на рисунке 1. 1. Приготовление силиконовых субстратов PDMS Приготовление силиконовой резиновой смеси PDMS на основе композит?…

Representative Results

Перед добавлением TGF-я, слияние монослой клеток имеет булыжник, как форма и плотно упакованы. После лечения TGF-я, клетки становятся более удлиненные в морфологии, увеличение области клеток и приобретения более мезенхимального фенотипа. Используя мульти-хорошо устройст…

Discussion

Для успеха этого метода, очень важно иметь равномерно покрытый образец с постоянной толщиной около 100 мкм. Модули должны быть тщательно отобраны для изучения физической значимости биологической системы интересов. При изготовлении верхнего слоя, концентрация фидуциальных флуоресцент?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят Тома Кодгера, Майкла Лэндри и Кристофера Барретта за помощь в синтезе биса. A.J.E. признает гранты Совета по естественным наукам и инженерным исследованиям RGPIN/05843-2014 и E-PE/472339-2015, Канадские институты исследований в области здравоохранения No 143327, Грант Канадского онкологического общества No 703930 и Канадский фонд инноваций Проект #32749. Р. Кришнан признает, национальные институты здравоохранения грант нет. R21HL123522 и R01HL136209. H.Y. была поддержана Фондами де Рехерче Санте Квебеки и Fonds de recherche Nature et Technologies Квебека. Авторы благодарят Johanan Idicula за помощь в видео и рукописи и Зиксин Он за помощь в подготовке видео.

Materials

Plate
GEL-8100 Nusil Technology GEL-8100 High Purity Dielectric, Soft Silicone Gel kit
Dow Corning Sylgard 184 Silicone Encapsulant Clear 0.5 kg Kit Ellsworth Adhesives 184 SIL ELAST KIT 0.5KG curing agent
Custom Cut Glass  Hausser Scientific Company 109.6mm± x 72.8mm± x 1mm thickness
Target 2TM Nylon Syringe Filter ThermoFisher Scientific F2513-4
96-well Stripwell Egg Crate Strip Holder Corning 2572
Polystyrene Universal Microplate Lid With Corner Notch  Corning 3099
Ethyl alcohol Greenfield Global P016EA95 0.95
2-Propanol Sigma-Aldrich 190764 ACS reagent, ≥99.5%
Surface Coating
Sulfo-SANPAH Crosslinker Proteochem c1111-100mg
Fibronectin bovine plasma Sigma-Aldrich F1141-1MG solution, sterile-filtered, BioReagent, suitable for cell culture
PBS, 1X Wisent 319-005-CL pH 7.4, without calcium and magnesium
DMSO Sigma-Aldrich 472301
Cell Culture
DMEM, 1X Wisent 319-005-CL 4.5g/L glucose, with L-glutamine, sodium pyruvate and phenol red
FBS (Fetal Bovine Serum) Wisent 080-150 Premium Quality, Endotoxin <1, Hemoglobin <25
HEPES Wisent 330-050-EL 1M, free acid
Human Insulin Recombinant Wisent 511-016-CM USP grade
Penicillin-Streptomycin Solution Wisent 450-201-EL 100 X, sterile filtered for cell culture
L-Glutamine solution Wisent 609-065-EL 200mM solution, sterile filtered for cell culture
Amphotericine B Wisent 450-105-QL 250μg/ml, sterile filtered for cell culture
Recombinant Human TGF-β1 Peprotech 100-21 HEK293 Derived
Acetic acid Sigma-Aldrich 537020 Glacial, ≥99.85%
Cictric acid Sigma-Aldrich 251275  ACS reagent, ≥99.5%
NMuMG ATCC CRL-1636 Mouse Mammary Gland Cell Line
Sodium azide Fisher Schientific AC190385000 99%, extra pure, ACROS Organics
Potassium hydroxide Sigma-Aldrich 221473 ACS reagent, ≥85%, pellets
TritonX-100 Sigma-Aldrich X100 laboratory grade
Bead Synthesis
1,1′-Dioctadecyl-3,3,3′,3′-tetramethylindocarbocyanine perchlorate (DiI) Sigma-Aldrich  468495-100MG 97%
Methyl methacrylate Sigma-Aldrich  M55909-500ML contains ≤30 ppm MEHQ as inhibitor, 99%
Inhibitor Remover Sigma-Aldrich  306312-1EA Prepacked column for removing hydroquinone and monomethyl ether hydroquinone
Methacryloxylpropyl Terminated Polydimethylsiloxane Gelest  DMS-R31 (25,000g/mol) Polydimethylsiloxane stabilizer, 25,000g/mol, 1,000 cSt
2,2′-Azobis(2-methylpropionitrile) (AIBN) Sigma-Aldrich  441090-25G 98%
Hexane  Sigma-Aldrich  296090-2L anhydrous, 95%
Hexane, mixture of isomers Sigma-Aldrich  227064-1L anhydrous, ≥99%
Whatman qualitative filter paper, Grade 1 Sigma-Aldrich  WHA1001055 circles, diam. 55 mm,
Equipment
Laurell WS-650Mz-23NPPB Laurell Technologies
UVP Handheld UV Lamp Model UVGL-58 VWR 21474-622
Rheometer Anton Paar MCR 302 WESP

References

  1. Harris, A., Wild, P., Stopak, D. Silicone rubber substrata: a new wrinkle in the study of cell locomotion. Science. 208 (4440), 177-179 (1980).
  2. Oliver, T., Dembo, M., Jacobson, K. Traction forces in locomoting cells. Cell Motil Cytoskeleton. 31 (3), 225-240 (1995).
  3. Dembo, M., Wang, Y. L. Stresses at the Cell-to-Substrate Interface during Locomotion of Fibroblasts. Biophysical Journal. 76 (4), 2307-2316 (1999).
  4. Yoshie, H., Koushki, N., et al. Traction Force Screening Enabled by Compliant PDMS Elastomers. Biophysical Journal. 114 (9), 2194-2199 (2018).
  5. Park, C. Y., Zhou, E. H., et al. High-throughput screening for modulators of cellular contractile force. Integrative biology quantitative biosciences from nano to macro. 7 (10), 1318-1324 (2015).
  6. Kraning-Rush, C. M., Califano, J. P., Reinhart-King, C. A. Cellular traction stresses increase with increasing metastatic potential. PLoS ONE. 7 (2), e32572 (2012).
  7. Agus, D. B., et al. A physical sciences network characterization of non-tumorigenic and metastatic cells. Scientific Reports. 3 (1), 1449 (2013).
  8. Guo, M., Ehrlicher, A. J., et al. Probing the Stochastic, Motor-Driven Properties of the Cytoplasm Using Force Spectrum Microscopy. Cell. 158 (4), 822-832 (2014).
  9. Ngan, E., Northey, J. J., Brown, C. M., Ursini-Siegel, J., Siegel, P. M. A complex containing LPP and alpha-actinin mediates TGFbeta-induced migration and invasion of ErbB2-expressing breast cancer cells. Journal of Cell Science. 126 (Pt 9), 1981-1991 (2013).
  10. Klein, S. M., Manoharan, V. N., Pine, D. J., Lange, F. F. Preparation of monodisperse PMMA microspheres in nonpolar solvents by dispersion polymerization with a macromonomeric stabilizer. Colloid & Polymer Science. 282 (1), 7-13 (2003).
check_url/kr/59364?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yoshie, H., Koushki, N., Molter, C., Siegel, P. M., Krishnan, R., Ehrlicher, A. J. High Throughput Traction Force Microscopy Using PDMS Reveals Dose-Dependent Effects of Transforming Growth Factor-β on the Epithelial-to-Mesenchymal Transition. J. Vis. Exp. (148), e59364, doi:10.3791/59364 (2019).

View Video