Summary

En sammenfallende strategi for generering av en nesten sekvensielt cDNA bibliotek fra ubrukte Pacific østers

Published: June 13, 2019
doi:

Summary

Vi beskriver en strategi for hvordan du bruker RNA prøver fra ubrukte Pacific østers prøver, og evaluere genetisk materiale ved sammenligning med offentlig tilgjengelige Genova data for å generere et tilnærmet sekvensielt cDNA bibliotek.

Abstract

Tilgangen til biologisk materiale av referanse arter, som ble brukt tidligere i viktige eksperimenter som i utviklingen av romanen cellelinjer eller Genova sekvensering prosjekter, er ofte vanskelig å sørge for videre studier eller tredjeparter på grunn av consumptive natur. Selv nå vidt distribuert over Stillehavet kysten av Asia, Australia og Nord-Amerika, individuelle Stillehavet østers prøver er genetisk ganske mangfoldig, og er derfor ikke direkte egnet som utgangspunkt materiale for gen biblioteker. I denne artikkelen viser vi bruken av ubrukte Pacific østers prøver Hentet fra regionale sjømatmarkeder å generere cDNA biblioteker. Disse bibliotekene ble deretter sammenlignet med offentlig tilgjengelige østers Genova, og den nærmeste relaterte biblioteket ble valgt ved hjelp av mitokondrie referanse gener Cytokrom C oksidase delenhet I (COX1) og NADH dehydrogenase (ND). Egnetheten av den genererte cDNA biblioteket er også demonstrert ved kloning og uttrykk for to gener koding av enzymer UDP-glucuronic acid dehydrogenase (UGD) og UDP-xylose syntase (UXS), som er ansvarlig for biosyntesen av UDP-xylose fra UDP-glukose.

Introduction

Oppkjøpet av levende refererte biologisk materiale kan være utfordrende på grunn av lange leveringstider, entreprenør resonnement, eller landsspesifikke tollregler. Som et alternativ kan det nødvendige biologiske materialet også samles inn fra phenotypically identiske prøver. Imidlertid kan disse prøvene variere betydelig på nivået av genotype, og derfor sammenligninger med digitalt lagrede referanse genomer av samme art er ofte gjengitt vanskelig eller fåfengt på grunn av inkompatibilitet av den nylig Hentet materiale med eksisterende metoder for DNA-forsterkning. Sekvensering svært bevarte gener av individuelle prøver er en mye brukt og kraftig verktøy for å identifisere arter1, for eksempel bevarte mitokondrie gener som ofte brukes som referanse gener for kvalitetsvurdering av cDNA biblioteker2 ,3,4,5,6. Den underliggende begrunnelsen for heri presentert metoden er at høy bevaring av mitokondrie gen sekvenser i enkelte anonyme østers prøver i forhold til tilsvarende sekvenser av referansen Genova indikerer at andre gener kan også vise en lavt nivå av avvik, gitt den generelt raskere rate av mitokondrie DNA evolusjon i forhold til kjernefysisk DNA7, slik at forsterkning og isolering av et bredt spekter av vitenskapelig og industrielt relevante gener ved å bruke offentlig tilgjengelige sekvensering-data som en referanse.

Det overordnede målet for det her er beskrevet metoden er å presentere en optimalisert arbeidsflyt for å generere en tilnærmet sekvensert østers cDNA bibliotek som kan brukes som mal DNA for kloning av østers gener. I virtuelle sekvensering, de Novo Genova sekvensering er omgås; stedet, en kjent, digitalt lagret referanse sekvens brukes direkte til å utnytte eller design primere for produksjon av cDNAs som til slutt vil utgjøre et bibliotek (eller legges til en eksisterende en). Målet er å produsere et konvergent cDNA-bibliotek, som betyr at likheter mellom de genererte cDNA-sekvensene og referanse sekvensen kan rangeres fra lav til høy avvik. En viktig fordel ved å bruke Cytokrom C oksidase delenhet 1 (COX1) og NADH dehydrogenase (ND) som referanse gener er at selv svært geografisk endemisk østers prøver kan bli profilert på grunn av den høye bevaring av disse mitokondrie gener. Etter å ha bevist tilnærming med disse veletablerte markører, vi da demonstrere sin søknad til to enzym kandidater som er involvert i sukker nukleotid biosyntesen og kan være av industriell relevans8,9, 10. The bioteknologisk potensialet i Stillehavet østers er fortsatt uutforsket. Derfor tror vi at dette sammenfallende metode for å utarbeide et tilnærmet sekvensielt cDNA biblioteket vil også være hensiktsmessig for ikke-spesialiserte forskere som ønsker å generere cDNA fra denne relevante biologiske materialet.

Protocol

Merk: en skjematisk oversikt er vist i figur 1. 1. samling av eksempler Skaff østers prøver. Hold østers på isen i kombinasjonen perioden, transport og før laboratoriebruk og prosess innen 4-7 dager etter kjøpet.Merk: for denne protokollen, ble østers kjøpt fra Zhong Cai Wholesale Market i Nanjing (stammer fra Ningde, Fujian, Kina og Lianyungang, Jiangsu, Kina), Haijie Aquatic Product Company i Qingdao (kommer fra Qingdao, Shandong, Kina), Ju…

Representative Results

Figur 1 viser en skjematisk oversikt over de beskrevne forberedelse metoden for konvergent cDNA biblioteket avledet fra Stillehavet østers individer. Figur 2 viser SEKVENSER av COX1 og nd gener av en fjernt relatert østers prøve med høy avvik fra COX1 og nd gen sekvenser av referansematerialet. Figur 3 viser SEKVENSER av COX1 og nd gener av et nært beslektet østers prøve med lav avvik fra COX1 og nd gen sekvenser av referanse…

Discussion

Det forevist protokollen innrømmer det genetisk legitimasjonen av ubrukte østers prøver med lignende fenotype fra område Seafood marked av sammenligningen av det COX1 og ND gener med en offentlig anvendelig østers DNA Genova data bank. Betydningen av denne metoden ligger i sin enkelhet, som bare en enkelt PCR reaksjon er nødvendig for evalueringen av den virtuelle cDNA biblioteket. De to bevarte mitokondrie COX1 og ND gener ble forsterket fra en cDNA bibliotek som ble generert av omvendt transkripsjon av RNA ekstra…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet delvis av Natural Science Foundation i Kina (gi tall 31471703, A0201300537 og 31671854 til J.V. og ll, gi nummer 31470435 til G.Y.), og den 100 Foreign talenter plan (Grant nummer JSB2014012 til J.V.).

Materials

Chemicals:
1% Triton X-100 Solarbio 9002-93-1 *Alternative distributors possible
2,5-Dihydroxybenzoic acid Alfa Aesar 490-79-9 *Alternative distributors possible
Acetonitrile Merck 75-05-8 *Alternative distributors possible
Agarose for molecular biology Biowest Chemicals 111860 *Alternative distributors possible
Ampicilin Solarbio 69-52-3 *Alternative distributors possible
Chloroform Lingfeng, Shanghai 67-66-3 *Alternative distributors possible
DEPC water Thermo Scientific R0601
Ethanol Jinhuada, Guangzhou 64-17-5 *Alternative distributors possible
Guanidinium thiocyanate-phenol reagent Invitrogen 15596018 TRIzol reagent
Imidazole Energy Chemical 288-32-4 *Alternative distributors possible
Isopropyl alcohol Nanjing Chemical Reagent 67-63-0 *Alternative distributors possible
Isopropyl β-D-thiogalactopyranoside Solarbio 367-93-1 *Alternative distributors possible
Kanamycin Solarbio 25389-94-0 *Alternative distributors possible
LB Agar Thermo Fisher 22700025 *Alternative distributors possible
LB Broth Thermo Fisher 10855021 *Alternative distributors possible
Methanol Jinhuada, Guangzhou 67-56-1 *Alternative distributors possible
MgCl2 hexahydrate Xilong Huagong 7791-18-6 *Alternative distributors possible
NaCl Xilong Huagong 7647-14-5 *Alternative distributors possible
NAD+ Duly Biotech 53-84-9 *Alternative distributors possible
Phenyl-methylsulfonyl fluoride Macklin 329-98-6 *Alternative distributors possible
Tris Solarbio 77-86-1 *Alternative distributors possible
UDP-glucose Wuhu Nuowei Chemicals 28053-08-9 *Alternative distributors possible
UDP-glucuronic acid SIGMA 63700-19-6 *Alternative distributors possible
Tools/Instruments:
MALDI-TOF mass spectrometer Bruker Autoflex *Alternative distributors possible
Metal block heater Long Yang Scientific Instruments Thermoshaker HB20 *Alternative distributors possible
PCR thermocycler Hema 9600 *Alternative distributors possible
Enzyme and Kits:
10×Ligation buffer Thermo Scientific B69 *Alternative distributors possible
5×PrimeSTAR buffer Takara 9158A
Alkaline phosphatase ThermoFisher FastAP EF0654 *Alternative distributors possible
COX forward primer Genscript ATGTCAACAAATCATTTAGACATTG
COX reverse primer Genscript ACTTGACCAAAAACATAAGACATG
Cutsmart Buffer NEB B7204S *Alternative distributors possible
dNTP mix Invitrogen 18427088
MgUGD forward primer Genscript ACATATGACCCTGTCCAAGATCTGTTGT
MgUGD reverse primer Genscript ACTCGAGACTCTGTGAGGCGGTGGAG
MgUXS forward primer Genscript CCATATGGCAGAATCCTCACAATCAC
MgUXS reverse primer Genscript ACTCGAGCACATTTTTGAATTTGCAGACGT
ND forward primer Genscript ATGAGATGGCAATTATTTTTTAAT
ND reverse primer Genscript ATGTATTTTGGAAAAATCTCCAC
PCR Cleanup Kit AxyGen AP-PCR-250 *Alternative distributors possible
pET-30a(+) vector Merck Millipore 69909

References

  1. Blaxter, M. L. The promise of a DNA taxonomy. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological. 359 (1444), 669-679 (2004).
  2. Wen, J., et al. Species identification of dried shellfish (oyster, clam and mussel) products sold on the Chinese market. Food Control. 90, 199-204 (2018).
  3. Zhang, H., et al. Mitochondrial cob and cox1 genes and editing of the corresponding mRNAs in Dinophysis acuminata from Narragansett Bay, with special reference to the phylogenetic position of the genus Dinophysis. Applied and Environmental Microbiology. 74 (5), 1546-1554 (2007).
  4. Sell, J., Spirkovski, Z. Mitochondrial DNA differentiation between two forms of trout Salmo letnica, endemic to the Balkan Lake Ohrid, reflects their reproductive isolation. Molecular Ecology. 13, 3633-3644 (2004).
  5. Karadjian, G., et al. Highly rearranged mitochondrial genome in Nycteria parasites (Haemosporidia) from bats. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (35), 9834-9839 (2018).
  6. Morga, B., et al. Identification of genes from flat oyster Ostrea edulis as suitable housekeeping genes for quantitative real time PCR. Fish and Shellfish Immunology. 29 (6), 937-945 (2010).
  7. Delsuc, F., et al. Molecular systematics of armadillos (Xenarthra, Dasypodidae): contribution of maximum likelihood and Bayesian analyses of mitochondrial and nuclear genes. Molecular Phylogenetics and Evolution. 28 (2), 261-265 (2005).
  8. Wei, S., et al. Discovery and Biochemical Characterization of UDP-Glucose Dehydrogenase from Akkermansia muciniphila. Protein & Peptide Letters. 24 (8), 735-741 (2017).
  9. Gu, B., et al. Discovery and Biochemical Characterization of the UDP-Xylose Biosynthesis Pathway in Sphaerobacter thermophilus. Protein & Peptide Letters. 23 (12), 1103-1110 (2016).
  10. Duan, X. C., et al. Functional characterization of the UDP-xylose biosynthesis pathway in Rhodothermus marinus. Applied Microbiology and Biotechnology. 99 (22), 9463-9472 (2015).
  11. Vogelstein, B., Gillespie, D. Preparative and analytical purification of DNA from agarose. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76 (2), 615-619 (1979).
  12. Song, H. B., et al. UDP-glucose 4-epimerase and β-1,4-galactosyltransferase from the oyster Magallana gigas as valuable biocatalysts for the production of galactosylated products. International Journal of Molecular Sciences. 19 (6), 1600 (2018).
  13. Gainey, P. A., Phelps, C. F. Uridine diphosphate glucuronic acid production and utilization in various tissues actively synthesizing glycosaminoglycans. Biochemical Journal. 128 (2), 215-227 (1972).

Play Video

Cite This Article
Lyu, Y. M., Li, Y. Q., Song, H. B., Guo, J., Wang, T., Liu, L., Yedid, G., Voglmeir, J. A Converging Strategy for the Generation of a Virtually Sequenced cDNA Library from Unreferenced Pacific Oysters. J. Vis. Exp. (148), e59462, doi:10.3791/59462 (2019).

View Video