Summary

Étude de toxicité des nanoparticules d'oxyde de zinc dans la culture cellulaire et dans le mélanogaster de Drosophila

Published: September 19, 2019
doi:

Summary

Nous décrivons un protocole détaillé pour évaluer les profils toxicologiques des nanoparticules d’oxyde de zinc (ZnO NPs) en particulier, le type de mort cellulaire dans les fibroblastes pulmonaires HUMAINS MRC5 et la formation de ROS dans la mouche des fruits Drosophila.

Abstract

Les nanoparticules d’oxyde de zinc (ZnO NPs) ont un large éventail d’applications, mais le nombre de rapports sur la toxicité associée à ZnO NP a augmenté rapidement ces dernières années. Cependant, les études qui élucident les mécanismes sous-jacents pour la toxicité NP-induite par ZnO sont maigres. Nous avons déterminé les profils de toxicité des nP znO utilisant des modèles expérimentaux in vitro et in vivo. Une diminution significative de la viabilité cellulaire a été observée dans les fibroblastes pulmonaires MRC5 exposés au nP De ZnO, ce qui montre que les NP ZnO exercent des effets cytotoxiques. De même, il est intéressant de noter que l’intestin exposé aux nCp ZnO a montré une augmentation spectaculaire des niveaux d’espèces réactives d’oxygène (ROS) dans la mouche des fruits Drosophila. Des études plus approfondies sont nécessaires pour établir une évaluation des risques pour l’utilisation accrue des nP ZnO par les consommateurs.

Introduction

La nanotechnologie fait référence à l’application de matériaux nanométriques qui sont utilisés dans tous les domaines scientifiques, y compris la médecine, la science des matériaux et la biochimie. Par exemple, les NP ZnO qui sont connus pour leur diffusion ultraviolette, leur détection chimique et leurs propriétés antimicrobiennes, ainsi que pour leur conductivité électrique élevée, sont utilisés dans la production de divers produits de consommation tels que les emballages alimentaires, les cosmétiques, textiles, caoutchoucs, batteries, catalyseur pour le traitement du gaz de queue automobile, et applications biomédicales1,2,3.

Cependant, les applications naissantes des produits à base de NP ZnO, conduisant à une exposition accrue de l’homme aux nP ZnO, ont soulevé des préoccupations sur leurs effets néfastes potentiels sur la santé humaine. Un certain nombre d’études cellulaires in vitro ont démontré que les NP de ZnO peuvent induire le stress oxydatif, la cytotoxicité autophagie-connexe, l’inflammation, et la génotoxicité4,5,6,7,8 . Notamment, la toxicité des NP ZnO est supposée être causée par la dissolution de Zn pour libérer les ions Zn2, ainsi que la réactivité de surface de ZnO, résultant en déséquilibres ioniques et métaboliques cellulaires qui sont liés à l’homéostasie ionique altérée et un inhibition du transport ionique4,7,9,10. Fait important, des études ont montré que la génération d’espèces réactives d’oxygène (ROS) est l’un des mécanismes primaires sous-jacents à la toxicité associée à ZnO NPs. L’activité anti-oxydante insuffisante suivant l’insulte de ROS s’est avérée responsable de l’obtention de la cytotoxicité et des dommages d’ADN9. Les effets toxiques des NP ZnO ont également été signalés chez les modèles animaux, y compris le rongeur1, poisson zèbre11,12, ainsi que l’invertébré Drosophila13.

Drosophila sert de modèle animal alternatif bien établi pour le dépistage de la toxicité des entités chimiques et des nanomatériaux (NM)14,15. Fait important, il existe des niveaux élevés de similitude génétique et physiologique entre l’homme et la drosophile qui justifie l’utilisation de la drosophile comme modèle in vivo pour évaluer les réponses biologiques aux contaminants environnementaux tels que les NM 16. En outre, il y a beaucoup d’avantages d’utiliser Drosophila en raison de sa petite taille, de sa courte durée de vie, de son aptitude génétique et de son entretien facile et rentable. En outre, Drosophila a été largement adopté pour l’étude de la génétique, la biologie moléculaire et développementale, depuis que son génome complet a été entièrement séquencé il ya des années en 2000, ce qui le rend approprié pour une variété de dépistage à haut débit et pour s’attaquer aux questions biologiques non résolues17,18,19,20,21. Ces dernières années, un certain nombre d’études liées à l’immunotoxicité utilisant différents types de NP dans Drosophila ont été rapportés15,22,23,24. Ces nouvelles connaissances fondamentales obtenues à partir des études utilisant Drosophila ont contribué à fournir plus de perspicacité dans notre compréhension de la nanotoxicologie.

ROS est un coupable bien connu pour la cytotoxicité et la génotoxicité causées par les nP, en particulier, à base de métal NPs25. Les ROS sont des espèces chimiques contenant de l’oxygène avec des propriétés réactives plus élevées que l’oxygène moléculaire. Les radicaux libres tels que le radical superoxyde (O2) et même, les molécules non radicales telles que le peroxyde d’hydrogène (H2O2) peuvent agir comme ROS. Dans l’état physiologique normal, ils sont tenus de maintenir l’homéostasie cellulaire26, cependant, ROS excessive en raison de la surproduction ou la dysrégulation du système de défense antioxydant peut causer un stress oxydatif, conduisant à des dommages aux protéines, lipides et acide désoxyribonucléique (ADN)27. Par exemple, à mesure que les niveaux de ROS augmentent et que le niveau de glutathion (GSH) diminue de façon concomitante, la perturbation de la synthèse de l’adénosine triphosphate (ATP) a lieu et le niveau de déshydrogénase de lactate (LDH) augmente dans le milieu, aboutissant à la mort cellulaire27.

Ici, nous fournissons des protocoles pour effectuer des analyses cellulaires et génétiques utilisant les cellules cultivées de mammifères et Drosophila pour déterminer les effets défavorables potentiels des NPs de ZnO. Un aperçu de la méthode utilisée pour l’étude de toxicité des nP ZnO est montré dans la figure 1.

Protocol

1. Analyse du tri des cellules activées par fluorescence (FACS) sur les cellules habitées/fixes Sonicate ZnO NPs en suspension pour 15 min. Préparer les nP ZnO à diverses concentrations (p. ex. 0, 10, 25, 50 100 et 200 g/mL) en utilisant une solution de stock NP ZnO de mg/mL pour le traitement des cellules cultivées. Seed MRC5 fibroblastes pulmonaires humains (1 x 105 cellules / puits) sur une plaque de culture de 6 puits par jour à l’avance, puis traiter les cellules avec 2…

Representative Results

Les cellules NP-exposées ont été traitées avec le kit de réactif de coloration de cellules, suivi s’est triant de cellules utilisant la cytométrie de flux. Les cellules traitées par ZnO NP (en bas, panneau droit) présentent un pourcentage plus élevé de cellules apoptotiques précoces (R3)/tardives (R6) que de cellules témoins (R5, panneau inférieur, gauche). La mort des cellules nécrotiques est indiquée par R4 (en haut, panneau droit) (Figure 2)…

Discussion

Afin d’évaluer si ZnO NP peut induire l’apoptose dans les fibroblastes DE MRC5, nous utilisons la cytométrie de flux pour distinguer les cellules de la mort nécrotique ou apoptotique de cellules. Dans les cellules vivantes normales, la phosphatidylserine (PS) est localisée à la membrane cellulaire. En cas d’apoptose, PS est translogué dans le dépliant extracellulaire de la membrane plasmatique, permettant la liaison de l’annexe V étiquetée avec de la fluorescéine (FITC Annexin V)29. D’au…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

L’étude a été appuyée par le numéro de subvention R706-000-043-490. L’étude ne représente pas le point de vue du promoteur de la subvention.

Materials

15% Methyl 4-Hydroxybenzoate Sigma Aldrich
4% Paraformaldehyde Sigma Aldrich P6148
Bacto Agar BD biosciences
cncCK6/TM3, Sb a gift from Dr. Kerppola T
cornmeal, glucose, yeast brewer Sigma Aldrich
CyAn ADP with Summit Software DAKO https://flow.usc.edu/files/2014/07/BC-Cyan-ADP-User-Guide-2016.pdf
Dihydroethidium (Hydroethidine) Thermo Fisher Scientific D11347
FITC Annexin V Apoptosis Detection Kit I BD biosciences 556547
Fluorescent microscope Olympus
Glucolin Supermarket
Image J software NIH
MRC5 human lung fibroblast ATCC CCL-171
Schneider’s Drosophila medium Thermo Fisher Scientific 21720-024
vectashield antifade mounting medium with DAPI Vector Laboratories H-1200
wild- type Canton-S; Sod2N308/CyO NIG-FLY
Zinc Oxide Nanoparticles Sigma Aldrich 721077 Refer Sheet 2

References

  1. Kim, Y. R., et al. Toxicity of 100 nm zinc oxide nanoparticles: a report of 90-day repeated oral administration in Sprague Dawley rats. International Journal of Nanomedicine. 9 Suppl 2, 109-126 (2014).
  2. Xie, Y., He, Y., Irwin, P. L., Jin, T., Shi, X. Antibacterial activity and mechanism of action of zinc oxide nanoparticles against Campylobacter jejuni. Applied and Environmental Microbiology. 77, 2325-2331 (2011).
  3. Colvin, V. L. The potential environmental impact of engineered nanomaterials. Nature Biotechnology. 21, 1166-1170 (2003).
  4. De Angelis, I., et al. Comparative study of ZnO and TiO(2) nanoparticles: physicochemical characterisation and toxicological effects on human colon carcinoma cells. Nanotoxicology. 7, 1361-1372 (2013).
  5. Johnson, B. M., et al. Acute exposure to ZnO nanoparticles induces autophagic immune cell death. Nanotoxicology. 9, 737-748 (2015).
  6. Singh, N., et al. NanoGenotoxicology: the DNA damaging potential of engineered nanomaterials. Biomaterials. 30, 3891-3914 (2009).
  7. Song, W., et al. Role of the dissolved zinc ion and reactive oxygen species in cytotoxicity of ZnO nanoparticles. Toxicology Letters. 199, 389-397 (2010).
  8. Wahab, R., et al. ZnO nanoparticles induced oxidative stress and apoptosis in HepG2 and MCF-7 cancer cells and their antibacterial activity. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 117, 267-276 (2014).
  9. Namvar, F., et al. Cytotoxic effects of biosynthesized zinc oxide nanoparticles on murine cell lines. Evidence-Based Complementary and Alternative. 2015, (2015).
  10. Wong, S. W., Leung, P. T., Djurisic, A. B., Leung, K. M. Toxicities of nano zinc oxide to five marine organisms: influences of aggregate size and ion solubility. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 396, 609-618 (2010).
  11. Hua, J., Vijver, M. G., Richardson, M. K., Ahmad, F., Peijnenburg, W. J. Particle-specific toxic effects of differently shaped zinc oxide nanoparticles to zebrafish embryos (Danio rerio). Environmental Toxicology and Chemistry. 33, 2859-2868 (2014).
  12. Zhao, X., Wang, S., Wu, Y., You, H., Lv, L. Acute ZnO nanoparticles exposure induces developmental toxicity, oxidative stress and DNA damage in embryo-larval zebrafish. Aquatic Toxicology. 136-137, 49-59 (2013).
  13. Alaraby, M., Annangi, B., Hernandez, A., Creus, A., Marcos, R. A comprehensive study of the harmful effects of ZnO nanoparticles using Drosophila melanogaster as an in vivo model. Journal of Hazardous Materials. 296, 166-174 (2015).
  14. Rand, M. D. Drosophotoxicology: the growing potential for Drosophila in neurotoxicology. Neurotoxicology and Teratology. 32, 74-83 (2010).
  15. Ong, C., Yung, L. Y., Cai, Y., Bay, B. H., Baeg, G. H. Drosophila melanogaster as a model organism to study nanotoxicity. Nanotoxicology. 9, 396-403 (2015).
  16. Hoffmann, J. A., Reichhart, J. M. Drosophila innate immunity: an evolutionary perspective. Nature Immunology. 3, 121-126 (2002).
  17. Hughes, T. T., et al. Drosophila as a genetic model for studying pathogenic human viruses. Virology. 423, 1-5 (2012).
  18. Jennings, B. H. Drosophila – a versatile model in biology & medicine. Materials Today. 14, 190-195 (2011).
  19. Adams, M. D., Sekelsky, J. J. From sequence to phenotype: reverse genetics in Drosophila melanogaster. Nature Reviews Genetics. 3, 189-198 (2002).
  20. Adams, M. D., et al. The genome sequence of Drosophila melanogaster. Science. 287, 2185-2195 (2000).
  21. Ong, C., et al. Silver nanoparticles disrupt germline stem cell maintenance in the Drosophila testis. Scientific Reports. 6, (2016).
  22. Alaraby, M., Demir, E., Hernandez, A., Marcos, R. Assessing potential harmful effects of CdSe quantum dots by using Drosophila melanogaster as in vivo model. Science of the Total Environment. 530-531, 66-75 (2015).
  23. Barik, B. K., Mishra, M. Nanoparticles as a potential teratogen: a lesson learnt from fruit fly. Nanotoxicology. , 1-27 (2018).
  24. Jovanovic, B., et al. The effects of a human food additive, titanium dioxide nanoparticles E171, on Drosophila melanogaster – a 20 generation dietary exposure experiment. Scientific Reports. 8, (2018).
  25. Cao, Y. The Toxicity of Nanoparticles to Human Endothelial Cells. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1048, 59-69 (2018).
  26. Akhtar, M. J., Ahamed, M., Alhadlaq, H. A., Alshamsan, A. Mechanism of ROS scavenging and antioxidant signalling by redox metallic and fullerene nanomaterials: Potential implications in ROS associated degenerative disorders. Biochimica Et Biophysica Acta-General Subjects. 1861, 802-813 (2017).
  27. Akter, M., et al. A systematic review on silver nanoparticles-induced cytotoxicity: Physicochemical properties and perspectives. Journal of Advanced Research. 9, 1-16 (2018).
  28. Vecchio, G. A fruit fly in the nanoworld: once again Drosophila contributes to environment and human health. Nanotoxicology. 9, 135-137 (2015).
  29. Marino, G., Kroemer, G. Mechanisms of apoptotic phosphatidylserine exposure. Cell Research. 23, 1247-1248 (2013).
  30. Stoddart, M. J. Cell Viability Assays: Introduction. Mammalian Cell Viability: Methods and Protocols. , (2011).
  31. Yazdani, M. Concerns in the application of fluorescent probes DCDHF-DA, DHR 123 and DHE to measure reactive oxygen species in vitro. Toxicology in Vitro. 30, 578-582 (2015).
  32. Chen, J., Rogers, S. C., Kavdia, M. Analysis of kinetics of dihydroethidium fluorescence with superoxide using xanthine oxidase and hypoxanthine assay. Annals of Biomedical Engineering. 41, 327-337 (2013).
  33. Hartig, S. M. Basic image analysis and manipulation in ImageJ. Current Protocols in Molecular Biology. , (2013).
check_url/kr/59510?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ng, C. T., Ong, C. N., Yu, L. E., Bay, B. H., Baeg, G. H. Toxicity Study of Zinc Oxide Nanoparticles in Cell Culture and in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (151), e59510, doi:10.3791/59510 (2019).

View Video