Summary

사이토 솔 릭 siRNA 전달을 위한 중성 충전, pH 반응 형 고분자 나노 입자의 제조

Published: May 02, 2019
doi:

Summary

화학적 성질을 준비 및 특성화 하는 방법 및 중성 충전 된, pH 반응 siRNA 나노 입자의 생물 활성이 제시 된다. 성공적인 siRNA에 대 한 기준은 크기, 형태학, 표면 전 하, siRNA 하 중 및 유전자 침묵과 같은 나노 의약품에 대해 논의 된다.

Abstract

표적으로 하는 분자 의학으로 siRNA의 성공은 병리학 조직 내 세포에 대 한 효율적인 사이토 졸 전달에 달려 있습니다. 이전 ‘ undruggable ‘ 간 질환 표적을 siRNA로 치료 하기 위한 임상 성공이 달성 되었다. 그러나 효율적인 종양 siRNA 전달은 긴 순환 시간, 틈새 장기의 회피 (예: 간과 신장) 및 종양 침투 및 유지 를 포함 하는 추가적인 약동 학적 설계 고려 사항을 필요로 합니다. 여기서, 우리는 특히 종양과 같은 비 간 조직에 효율적인 siRNA 전달을 위해 설계 된 중합체 나노 입자의 제제 및 시험관 내 물리 화학적/생물학적 특성화를 설명 한다. 상기 siRNA 나노 입자는 폴 리 이온 복합체를 형성 하는 siRNA와 디 블록 공중 합체 (dimethylamino) 에틸 메타 크 릴레이 트뷰 틸 메타 크 릴레이 트) (PEG-db)의 정전기 적 복합체에 의해 제조 된다 ( 상기 siRNA는 폴 리 플렉스 코어 내에 금속 이온이 격리 되 고, PEG는 친수성, 중 화제의 코로나를 형성 한다. 더욱이, 상기 DB 블록은 내 상 염색체 통로의 소포가 산성화 함에 따라 막 용 해 되 고 (< pH 6.8), 내 상 염색체의 탈출 및 siRNA의 사이토 솔 릭 전달을 유발 한다. SiRNA의 물리 화학적 특성을 특성화 하는 방법으로는 크기, 표면 전 하, 입자 형태학 및 siRNA 하 중 등이 기재 되어 있다. SiRNA 나노 입자의 생물 활성은 신속 하 고 높은 처리량의 유전자 침묵 분석에서 모델 유전자로 서 루시퍼 라 제를 사용 하 여 측정 된다. 이러한 초기 테스트를 통과 한 설계 (예: PEG-DB 기반 폴 리 플렉스)는 종양 또는 병리학의 다른 사이트에 대 한 siRNA의 전달을 평가 하는 전 임상 동물 연구로의 번역에 적합 한 것으로 간주 됩니다.

Introduction

Sirnas는 mRNA 서 열에서 단백질의 번역을 억제 하기 때문에 이론적으로는 모든 알려진 병 리 제1,2,4,5의 약물에 사용 될 수 있습니다. 그러나, 의학에서 sirna의 사용은 sirna 분자6,7의 포괄적으로 가난한 약물 동태 학적 프로 파일에 의해 제한 된다. 정 맥 주사 시, sirnas는 뉴 클레 아 제8,9에 의해 신장 및/또는 저하를 통해 급속히 제거 된다. 그것의 큰 크기 및 음 전 하 때문에, siRNA는 세포에 들어갈 수 없고 또는 내 생포 하는 통로를 이스케이프 하 여 사이토 솔 (10)에 상주 하는 RNA 유도 침묵 복합체 (RISC)에 접근 하 고, 13. 따라서, 광범위 한 노력은 siRNA 전달 전략 (14)의 설계 및 구현에 초점을 맞추고 있다. 이러한 노력은 주로 siRNA를 패키지 하는 지질 및 폴리머 기반 나노 입자의 개발에 초점을 맞추고, 생체 내에서의 클리어런스 및 분해 로부터 보호 하 고, 이온화 가능한 양이온 성 아민 기를 통해 세포 흡수 및 내 염색체 탈출을 개시 한다. 많은 사전 임상 성공이 보고 되 고 가장 최근에는 유전 트랜스 티 레 틴 매개 (해 트) 아 밀 로이드 증15를 치료 하기 위해 나노 입자 기반 간 siRNA 전달에 대 한 첫 번째 임상 성공은 보고 되었습니다.

기존의 약리학 (즉, 소 분자 약물)에 의해 현재 “undruggable” 되는 많은 암 유발 유전자 들이 암 치료 용 고분자 siRNA 나노 입자의 설계에 동기를 부여 하 고 있다. 그러나, 비 간장 siRNA 납품을 위해 고려 되어야 하는 디자인 매개 변수의 개별적인 세트가 있습니다. 전달 시스템은 전신 순환17,18,19내에서 응집을 야기 하는 폴 리 플렉스의 양이온 성 전 하를 차폐 한다. 종양 전달을 위해, 구체적으로, si-NP 안정성은 향상 된 투과성 및 유지 (epr) 효과를 통해 종양 내에 축적이 증가 하 고 따라서 긴 순환을 부여 하는 것이 필수적 이다20,21. 더욱이, si-NP 크기에 대 한 제어는 약 20-200 nm 직경 크기의 나노 입자만을 레버리지로 서 필수적 이며, 보다 작은 Si-NPs (~ 20 50 nm 직경) 더 큰 크기의 나노 입자에 대 한 개선 된 종양 침투를 나타낸다 미세 입자23.

이러한 추가적인 설계 제약을 해결 하기 위해 정 맥 내 투여에 따르는 siRNA의 전신 종양 전달을 위한, 중성-충전, pH 반응 시-NPs가 개발 되었다 (도 1)24. 이러한 si-NPs는 페 길 화 된, 또는 가장 최근에는, 중성 표면 전 하 및 순환에 있는 단백질 흡착 및 오 손 화에 저항을 위한 Zwitterionated25입니다. 그들은 세포내 전달을 구동 하기 위해 양이온 성 문자에 전적으로 의존 할 수 없기 때문에, 매우 효율적인 내 염색체 탈출은 강력한 유전자 침묵을 달성 하기 위한 필수적 이다. 따라서, 이러한 si-NPs의 코어는 세포 외 pH (7.4)에서 불활성 인 고 내 분 비 핵으로 구성 되어 있으 나,이는 내 리소 소 통로의 산성화 조건에서 스위치 유사 방식으로 촉발 된다 [pH 6.8 (초기 내 상 염색체) – 5.0 ( ). 마지막으로, si-NPs의 코어 내에서 양이온 성 및 소수 성 함량의 혼합물은 정전기 및 반 데르 발스 안정화 힘을 모두 제공 하 여, 단지 양이온 시스템에 비해 혈액에서의 시-NPs의 안정성을 향상 시킨다.

다양 한 기능을 비교적 단순한 설계로 통합 하는 것은 가역 적인 추가-프 래그 멘 테이 션 체인 트랜스퍼 (뗏목) 제어 중 합을 사용 하 여 복잡 한 구조와 정밀한 조성을 가진 폴리머를 생산할 수 있습니다. 중성 표면 전 하, pH 반응성 및 NP 안정성을 갖춘 dimethylamino를 생산 하기 위해 폴 리 에틸렌 글리콜을 합성 하는 데 사용 됩니다() 에틸 메타 크 릴레이 트공동부 틸 메타 크 릴레이 트)) (PEG-DB; 그림 1a). PEG-DB는 PEG 코로나 및 DB/siRNA 코어를 사용 하 여 시-NPs를 형성 하는 siRNA와 함께 정전기 적으로 복합 화 된다 (도 1b). PEG는 si-NP 코로나 상에 서 불활성의 중립-충전 된 친수성 층을 형성 한다. 상기 DB 블록은 2-dimethylamino) 에틸 메타 크 릴레이 트 (DMAEMA) 및 부 틸 메타 크 릴레이 트 (BMA)의 50:50 몰 비로 이루어진다. 양이온 DMAEMA 정전기 적으로 복합체는 음으로 충전 된 siRNA. BMA는 np 안정성을 증가 시키고 반 데르 발스 상호 작용에의 한 NP 코어 내에서의 자가 동료 이다. 함께, DMAEMA 및 BMA는 DB 폴리머 블록에 pH 의존적 지질 이중-용 해 거동을 부여 한다. 세포 외 pH에서, DB 블록은 si-NP 코어에 금속 화 되 고 지질 이중 층에 불활성 이다. 내 상 염색체 통로 내에 있는 것과 같은 산 성 조건 하에서, DB 블록 내 이온화 가능한 DMAEMA는 양성자 스폰지 효과를 용이 하 게 하 고, 내 상 염색체 완충은 삼 투 팽 윤 및 파열을 유도 한다26. 추가적으로, DB 블록 내의 소수 성 BMA 모이 어 티는 지질 이중 층으로 활발 하 게 통합 되 고, 강력한 내 혈관 분해를 초래 한다. 따라서, siRNA는 PEG-DB와 함께 복합 화 되어 세포 외 pH에서 중립으로 충전 되 고 안정성이 높게 유지 되 고 있으 나 산 성 pH에서 지질 이중 층을 교란 시켜 siRNA 페이로드의 세포 졸 전달을 보장 한다.

본 명세서는 PEG-DB 로부터 si-NPs를 생산 하는 실험 절차를 설명 한다. 이 화학적 매개 변수를 특성화 하는 방법과 si-NPs의 생물 활성을 제시 하 고 논의 합니다. 신속 하 게 si-NP 생물 활성을 평가 하기 위해, 루시퍼 라 제는 녹 다운 연구를 위한 모델 유전자로 서 사용 된다. 반딧불이의 루시퍼 라 제에는 ‘ 글로우 ‘를 담당 하는 프로 틴27가 있습니다. 이에 따라, 상기 반딧불 루시퍼 라 제 유전자로 형질 감염 된 포유류 세포는 루미 노 미터를 이용 하 여 포획 하 여 루시퍼 라 제 발현 수준을 정량화 할 수 있는 바이오 발광 ‘ 발광 ‘을 생성 한다. 여기서 우리는 루시퍼 라 제를 사용 하 여 루시퍼 라 제에 대 한 siRNA를 제공 하 고 루시퍼 라 제 발현 세포의 생물 발광에 상응 하는 감소를 정량화 하 여 스크램블 된 siRNA를 받는 세포와 비교 하 여 시-NPs의 생물 활성을 평가 합니다.

Protocol

1. 시-NPs의 준비 및 특성화 si-NP 준비 3.33 Mg/ml의 구 연산 완충 액 (pH 4.0)에서 10 mM의 고분자를 녹 이세요. 중합체는 먼저 용 해를 보장 하기 위해 에탄올에 10 배 농도로 용 해 될 수 있다.참고: 고분자는 낮은 농도에서 용 해 될 수 있지만, 3.33 mg/m l 이상의 농도에서 사용 하 여 균질 한 NP 형성을 방지할 수 있습니다. SiRNA (50 μ m)를 추가하 여 N+:P 10의 비율로 생성…

Representative Results

생체 내 siRNA 전달을 위한 효과적인 si-NPs의 몇 가지 필수적인 특성은 적절 한 크기 (~ 200 nm 직경), siRNA 패키징 및 유전자 침묵 생물 활성 이다. 이것은 완전 한 목록 (토론에서 언급 된 대로)이 아니지만, 이러한 기본 특성은 제제의 추가 테스트를 고려 하기 전에 확인 되어야 합니다. 도 2 는 제제 화 시의 SI-…

Discussion

여기에 설명 된 si-NPs는 음이온 성 siRNA와 양이온 고분자를 폴 리 이온 복합체 (폴 리 플렉스)로 정전기 협회에 의해 형성 됩니다. PEG-DB 중합체의 siRNA 및 양이온 DB 블록의 정전기 적 복합체는 낮은 pH (4.0)에서 혼합 하 여 촉진 된다. PH 4.0에서 DMAEMA는 고도로 양성자 화 되어 결과적으로 DB 블록이 매우 충전 됩니다. 이것은 중합체가 미 셀을 형성 하는 것과 반대로 용액에서 unimers로 용 해 되 고 siRNA로 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 크레이그 듀발과 레 베 카 쿡이 연구를 수행 하기 위한 데이터 및 실험실 리소스에 액세스 할 수 있도록 감사 합니다. 저자는 DLS와 TEM (NSF EPS 1004083) 계기에 접근 하기를 위한 나노 규모 과학 및 공학 (VINSE)에 대 한 밴 더 빌 트 연구소에 감사 합니다. 저자 들은 대학원 연구 펠로 우 십 프로그램 (NSF # 1445197)을 지원 하기 위한 국립 과학 재단에 감사 드립니다. 저자는 재정 지원 (NIH R01 EB019409)에 대 한 국가의 건강 연구소에 감사 합니다. 저자는 국방 CDMRP (OR130302) 재정 지원을 위한 국방부 의회 감독 의료 연구 프로그램에 감사 드립니다.

Materials

0.45 mm pore-size syringe filters Thermo Fisher Scientific F25133 17 mm diameter, PTFE membrane
0-14 pH test strips Millipore Sigma P4786
10x TAE buffer Thermo Fisher Scientific/Invitrogen AM9869
6-7.7 pH test strips Millipore Sigma P3536
96-well black walled plates Corning 3603 Tissue-culture treated
Agarose Powder Thermo Fisher Scientific/Invitrogen 16500
Citric acid monohydrate Millipore Sigma C1909
dibasic sodium phosphate dihydrate Millipore Sigma 71643
D-luciferin Thermo Fisher Scientific 88294 Monopotassium Salt
DMEM Gibco 11995065 High glucose and pyruvate
Ethanol Millipore Sigma 459836
ethidium bromide Thermo Fisher Scientific/Invitrogen 15585011
FBS Gibco 26140079
loading dye Thermo Fisher Scientific/Invitrogen R0611
Luciferase siRNA IDT N/A Antisense Strand Sequense: GAGGAGUUCAUUAUCAGUGCAAUUGUU Sense Strand Sequense: CAAUUGCACUGAUAAUGAACUCCT*C* *DNA bases
MDA-MB-231 / Luciferase (Bsd) stable cells GenTarget Inc SC059-Bsd Luciferase-expressing cells sued to assess si-NP bioactivity
monobasic sodium phosphate monohydrate Millipore Sigma S9638
Scarmbled siRNA IDT N/A Antisense Strand Sequense: AUACGCGUAUUAUACGCGAUUAACGAC Sense Strand Sequense: CGUUAAUCGCGUAUAAUACGCGUA*T* *DNA bases
square polystyrene cuvettes Fisher Scientific 14-955-129 4.5 mL capacity
TEM grids Ted Pella, Inc. 1GC50 PELCO Center-Marked Grids, 50 mesh, 3.0mm O.D., Copper
Trisodium citrate dihydrate Millipore Sigma S1804
uranyl acetate Polysciences, Inc. 21447-25

References

  1. Fire, A., et al. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391 (6669), 806-811 (1998).
  2. Elbashir, S. M., et al. Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cells. Nature. 411 (6836), 494-498 (2001).
  3. Soutschek, J., et al. Therapeutic silencing of an endogenous gene by systemic administration of modified siRNAs. Nature. 432 (7014), 173-178 (2004).
  4. Hannon, G. J. RNA interference. Nature. 418, 244 (2002).
  5. Dykxhoorn, D. M., Palliser, D., Lieberman, J. The silent treatment: siRNAs as small molecule drugs. Gene Therapy. 13 (6), 541-552 (2006).
  6. Wittrup, A., Lieberman, J. Knocking down disease: a progress report on siRNA therapeutics. Nature Reviews Genetics. 16 (9), 543 (2015).
  7. Li, H. E., Nelson, C. C., Evans, B., Duvall, C. Delivery of Intracellular-Acting Biologics in Pro-Apoptotic Therapies. Current Pharmaceutical Design. 17 (3), 293-319 (2011).
  8. Bartlett, D. W., Davis, M. E. Effect of siRNA nuclease stability on the in vitro and in vivo kinetics of siRNA-mediated gene silencing. Biotechnology and Bioengineering. 97 (4), 909-921 (2007).
  9. Zuckerman, J. E., Choi, C. H., Han, H., Davis, M. E. Polycation-siRNA nanoparticles can disassemble at the kidney glomerular basement membrane. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 109 (8), 3137-3142 (2012).
  10. Dominska, M., Dykxhoorn, D. M. Breaking down the barriers: siRNA delivery and endosome escape. Journal of Cell Science. 123 (Pt 8), 1183-1189 (2010).
  11. Gilleron, J., et al. Image-based analysis of lipid nanoparticle–mediated siRNA delivery, intracellular trafficking and endosomal escape. Nature Biotechnology. 31 (7), 638 (2013).
  12. Sahay, G., et al. Efficiency of siRNA delivery by lipid nanoparticles is limited by endocytic recycling. Nature Biotechnology. 31 (7), 653-658 (2013).
  13. Wittrup, A., et al. Visualizing lipid-formulated siRNA release from endosomes and target gene knockdown. Nature Biotechnology. 33 (8), 870-876 (2015).
  14. Kanasty, R., Dorkin, J. R., Vegas, A., Anderson, D. Delivery materials for siRNA therapeutics. Nature Materials. 12 (11), 967-977 (2013).
  15. Adams, D., et al. Patisiran, an RNAi Therapeutic, for Hereditary Transthyretin Amyloidosis. New England Journal of Medicine. 379 (1), 11-21 (2018).
  16. Dang, C. V., Reddy, E. P., Shokat, K. M., Soucek, L. Drugging the ‘undruggable’ cancer targets. Nature Reviews Cancer. 17 (8), 502 (2017).
  17. Alexis, F., Pridgen, E., Molnar, L. K., Farokhzad, O. C. Factors affecting the clearance and biodistribution of polymeric nanoparticles. Molecular Pharmaceutics. 5 (4), 505-515 (2008).
  18. Verbaan, F. J., et al. The fate of poly(2-dimethyl amino ethyl)methacrylate-based polyplexes after intravenous administration. International Journal of Pharmaceutics. 214 (1-2), 99-101 (2001).
  19. Lv, H., Zhang, S., Wang, B., Cui, S., Yan, J. Toxicity of cationic lipids and cationic polymers in gene delivery. Journal of Controlled Release. 114 (1), 100-109 (2006).
  20. Shi, J., Kantoff, P. W., Wooster, R., Farokhzad, O. C. Cancer nanomedicine: progress, challenges and opportunities. Nature Reviews Cancer. 17 (1), 20 (2016).
  21. Torchilin, V. Tumor delivery of macromolecular drugs based on the EPR effect. Advanced Drug Delivery Reviews. 63 (3), 131-135 (2011).
  22. Duncan, R. The dawning era of polymer therapeutics. Nature Reviews Drug Discovery. 2 (5), 347 (2003).
  23. Tang, L., et al. Investigating the optimal size of anticancer nanomedicine. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 111 (43), 15344-15349 (2014).
  24. Nelson, C. E., et al. Balancing Cationic and Hydrophobic Content of PEGylated siRNA Polyplexes Enhances Endosome Escape, Stability, Blood Circulation Time, and Bioactivity in vivo. ACS Nano. 7 (10), 8870-8880 (2013).
  25. Jackson, M. A., et al. Zwitterionic Nanocarrier Surface Chemistry Improves siRNA Tumor Delivery and Silencing Activity Relative to Polyethylene Glycol. ACS Nano. , (2017).
  26. Akinc, A., Thomas, M., Klibanov, A. M., Langer, R. Exploring polyethylenimine-mediated DNA transfection and the proton sponge hypothesis. The Journal of Gene Medicine. 7 (5), 657-663 (2005).
  27. de Wet, J. R., Wood, K. V., DeLuca, M., Helinski, D. R., Subramani, S. Firefly luciferase gene: structure and expression in mammalian cells. Molecular and Cellular Biology. 7 (2), 725-737 (1987).
  28. Aggarwal, P., Hall, J. B., McLeland, C. B., Dobrovolskaia, M. A., McNeil, S. E. Nanoparticle interaction with plasma proteins as it relates to particle biodistribution, biocompatibility and therapeutic efficacy. Advanced Drug Delivery Reviews. 61 (6), 428-437 (2009).
  29. Geng, Y., et al. Shape effects of filaments versus spherical particles in flow and drug delivery. Nature Nanotechnology. 2 (4), 249 (2007).
  30. Chauhan, V. P., et al. Fluorescent nanorods and nanospheres for real-time in vivo probing of nanoparticle shape-dependent tumor penetration. Angewandte Chemie International Edition. 50 (48), 11417-11420 (2011).
  31. Chu, K. S., et al. Plasma, tumor and tissue pharmacokinetics of Docetaxel delivered via nanoparticles of different sizes and shapes in mice bearing SKOV-3 human ovarian carcinoma xenograft. Nanomedicine. 9 (5), 686-693 (2013).
  32. Werfel, T. A., et al. Selective mTORC2 Inhibitor Therapeutically Blocks Breast Cancer Cell Growth and Survival. 암 연구학. 78 (7), 1845-1858 (2018).
  33. Sarett, S. M., et al. Lipophilic siRNA targets albumin in situ and promotes bioavailability, tumor penetration, and carrier-free gene silencing. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 114 (32), E6490-E6497 (2017).
  34. Williams, M. M., et al. Intrinsic apoptotic pathway activation increases response to anti-estrogens in luminal breast cancers. Cell Death and Disease. 9 (2), 21 (2018).
  35. Evans, B. C., et al. Ex Vivo Red Blood Cell Hemolysis Assay for the Evaluation of pH-responsive Endosomolytic Agents for Cytosolic Delivery of Biomacromolecular Drugs. Journal of Visualized Experiments. (73), e50166 (2013).
  36. Werfel, T., et al. Combinatorial Optimization of PEG Architecture and Hydrophobic Content Improves siRNA Polyplex Stability, Pharmacokinetics, and Potency In vivo. Journal of Controlled Release. , (2017).
  37. Kilchrist, K. V., Evans, B. C., Brophy, C. M., Duvall, C. L. Mechanism of Enhanced Cellular Uptake and Cytosolic Retention of MK2 Inhibitory Peptide Nano-polyplexes. Cellular and Molecular Bioengineering. 9 (3), 368-381 (2016).
  38. Kilchrist, K. V., et al. Gal8 Visualization of Endosome Disruption Predicts Carrier-Mediated Biologic Drug Intracellular Bioavailability. ACS Nano. , (2019).
check_url/kr/59549?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hendershot, J., Smith, A. E., Werfel, T. A. Preparation of Neutrally-charged, pH-responsive Polymeric Nanoparticles for Cytosolic siRNA Delivery. J. Vis. Exp. (147), e59549, doi:10.3791/59549 (2019).

View Video