Summary

简单的自制工具处理果蝇*果蝇黑色素

Published: July 24, 2019
doi:

Summary

这里描述的是使用几个自制的工具转移,冷却,杀死成年果蝇,以及清洁玻璃养殖瓶和收集鸡蛋。这些工具易于制作,在处理果蝇方面相当有效。

Abstract

果蝇,果蝇黑色素,在生物学研究和生物学教育中被广泛应用。处理成年苍蝇是常见的,但在实践中很难,因为成年苍蝇飞行。这里演示的是如何使一些简单和具有成本效益的工具,以解决在处理果蝇的难题。泡沫塞中的孔被制成,移液器尖端或漏斗插入孔中。苍蝇然后只向一个方向移动到移液器尖端/漏斗组合,允许有效控制成人果蝇进入或流出小瓶。现有的协议已经修改,通过在碎冰中冷却并转移到寒冷、坚硬的冰袋表面来冷却苍蝇。冰袋上覆盖着一块医用纱布,在立体显微镜下检查时,使固定苍蝇远离冷凝水。苍蝇最终被安乐死以计数和分类,或被丢弃微摇。还开发了用于收集鸡蛋的瓶形笼子,以及用于清洁玻璃培养瓶的省力装置和附带的协议。

Introduction

果蝇,果蝇黑色素,是一种模型生物,广泛用于生物研究和生物学教育研究的广泛课题1,2。处理果蝇的基本问题是成年人从小瓶转移到小瓶和苍蝇的固定,使他们更容易处理,因为所有成年人(除了一些突变体3,4)可以飞行。

按照惯例,研究人员通过拿着两个小瓶口对口,轻击苍蝇或让苍蝇飞到另一个小瓶,然后分离和重新插入两个小瓶4,将苍蝇从一个小瓶转移到另一个小瓶。显然,这需要打开两个直径相同的小瓶,并且很难控制转移的苍蝇数量。同时,这需要快速的双手来完成工作,而逃避流浪苍蝇可能导致实验室或教室出现问题。在果蝇实验中,将特级处女苍蝇或雄蝇添加到已经准备好的十字架上是另一项例行任务。按照惯例,在添加额外的苍蝇之前,苍蝇必须固定在十字架小瓶中。

成人果蝇通常用醚、CO2或冷却5麻醉。与醚和CO2接触相比,冷却剂是固定成年果蝇的最经济有效的剂,对苍蝇和研究人员(尤其是年轻学生)的危害最小6,7。然而,在寒冷的表面或室内持续凝结的水会使苍蝇变湿。很难确定湿苍蝇的表型,在操作8、9中很容易损坏。这阻止了冷却方法得到更广泛的接受。

飞转工具和飞行冷却方法已经描述之前10。据报道,一种经过改良的冷却麻醉技术对果蝇实验是安全、可靠和可行的。本文还介绍了 1) 杀死成年人计数、分类或丢弃的方法,2) 清洁玻璃培养瓶的省力设备和规程,以及 3) 收集鸡蛋的简单笼子。此处描述的易于设计和经济高效的工具可用于解决飞行处理的难题,这些方法已经过测试,并且被证明为经验丰富的新手研究人员可靠、可靠且易于操作。

Protocol

1. 准备工具和附件 提示/漏斗塞 获得两个海绵插头(插头的直径必须略大于用于传输苍蝇的瓶的内径)。用加热的电焊铁在海绵塞的中心打一个洞。 获得两个 1 mL 移液器尖端,用锋利的刀横向将一个切成两半,然后丢弃尖端。然后,从第二个移液器尖端上切下 1.5 厘米的尖端。将两个移液器尖端的残余与多用途粘合剂粘合在一起,使移液器尖端拉长(图1A<…

Representative Results

T-和F-阻子被开发为一套简单的工具,可以调整和用于任何飞行转移活动。将苍蝇从旧文化转移到几种新鲜文化中,包括移除新鲜小瓶的插头,用F-塞器替换它们,然后轻敲旧小瓶中的苍蝇,快速取下其插头,并用T塞器替换。如果旧食物是紧凑的,那么重要的是翻转旧小瓶,并将T-止口的尖端插入F塞的开口,然后轻敲苍蝇进入新鲜的小瓶。然后,更换 T 和 F 塞器并重新插入小瓶。如果旧?…

Discussion

本文介绍了一些用于处理果蝇饲养和实验中涉及的基本活动的自制工具。这些工具很简单,但相当有效。实际上,任何实验室都可以轻松制作这些工具,而研究或教学实验室不需要找到现成的替代方案,而这种替代方案可能在当地不可用。

苍蝇转移是果蝇实验中最常见的做法和艰巨任务。不幸的是,到目前为止,还没有描述转移工具3,4,12,17在这里,T-和F-塞。

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

没有

Materials

a pair of pliers
cordless drill driver max speed: 500 rpm
electric soldering iron
file
funnel diameter of disk<60mm
ice box
insect pins
infrared thermometer HCIYET HT-830
long cuff rubber gloves
mechanical pencils
medical gauze
microcentrifuge tube 100 ul
microwave oven
Parafilm
peri dish internal diameter 60 mm
pipette tips 1 ml
plastic film
plastic peri dish Φ36 mm used to cover the empty vial
point tweezers
protective work gloves
re-freezable hard icepacks 26.5×14.5×2.5 cm or larger
rubber air blower
snap cutter
soft drink bottle 500 ml, internal diameter c.a. 65 mm
sponge stopper
stainless steel sponges
tube brush
vial Φ34 mm × 90 mm

References

  1. Jennings, B. H. Drosophila – a versatile model in biology & medicine. Materials Today. 14 (5), 190-195 (2011).
  2. JoVE Science Education Database. . Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. An Introduction to Drosophila melanogaster. , (2018).
  3. Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. Laboratory Culture of Drosophila. Drosophila Protocols. , (2000).
  4. Greenspan, R. J. Fly pushing: The theory and practice of Drosophila genetics. Cold Spring Harbor Laboratory Press. , (2004).
  5. Ashburner, M., Thompson, J., Ashburner, M., Wright, T. R. F. The laboratory culture of Drosophila. The genetics and biology of Drosophila. 2a, 1-109 (1978).
  6. Ratterman, D. M., O'Donnell, M. A. Eliminating ether by using ice for Drosophila labs. Tested Studies For Laboratory Teaching. , 259-265 (2003).
  7. . Culturing techniques for Drosophila Available from: https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf (2019)
  8. Markow, T. A., O'Grady, P. M. . Drosophila: A Guide to Species Identification and Use. , (2006).
  9. Artiss, T., Hughes, B. Taking the Headaches Out of Anesthetizing Drosophila: A Cheap & Easy Method of Constructing Carbon Dioxide Staging. The American Biology Teacher. 69 (8), e77-e80 (2007).
  10. Qu, W. -. H., Zhu, T. -. B., Yang, D. -. X. A Modified Cooling Method and its Application in Drosophila Experiments. Journal Of Biological Education. 49 (3), 302-308 (2015).
  11. . Egg-laying cages for drosophila Available from: https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17 (2018)
  12. Roberts, D. B. . Drosophila: a practical approach. , (1998).
  13. Tang, M., Peng, Q. -. F., Yang, D. Two devices for Drosophila experiments (in Chinese). Bulletin of Biology. 45 (11), 49-50 (2010).
  14. Zhou, T. -. y., Gan, J., Yang, D. Preparation of sponge plug and sponge plug based fly transferring device for Drosophila experiments (in Chinese). Bulletin of Biology. 46 (6), 49-50 (2011).
  15. Yang, D. . Genetics laboratory investigation. , (2016).
  16. Yang, D. Carnivory in the larvae of Drosophila melanogaster and other Drosophila species. Scientific Reports. 8, (2018).
  17. Stocker, H., Gallant, P., Dahmann, C. Getting Started: An Overview on Raising and Handling Drosophila. Drosophila: Methods and Protocols. , (2008).
check_url/kr/59613?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yang, D. Simple Homemade Tools to Handle Fruit Flies—Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (149), e59613, doi:10.3791/59613 (2019).

View Video