Descrito aqui é o uso de várias ferramentas caseiras para transferir, Chill, e matar a Drosophilaadulta, bem como para limpar frascos de cultura de vidro e coletar ovos. Estas ferramentas são fáceis de fazer e são bastante eficientes no manuseio da Drosophila.
A mosca-das-frutas, Drosophila melanogaster, é amplamente utilizada tanto na pesquisa biológica quanto na educação em biologia. Manipulação de moscas adultas é comum, mas difícil na prática, como moscas adultas voam. Demonstrado aqui é como fazer algumas ferramentas simples e rentáveis para abordar problemas difíceis no manuseio da Drosophila. Furos em rolhas de espuma são feitas e pontas de pipeta ou funis são inseridos nos furos. As moscas movem-se então somente em uma direção na ponta da pipeta/assemblage do funil, permitindo o controle eficiente da transferência da Drosophila adulta dentro ou fora de um frasco. Protocolos existentes foram modificados para cool-anestesiando moscas por refrigeração em gelo esmagado e transferi-los para uma superfície fria, dura IcePack. O IcePack é coberto com uma parte de gaze médica que mantem moscas imobilizadas da água condensada quando examinado um stereomicroscope. As moscas são finalmente eutanasiado para a contagem e triagem ou descartados por microondulação. Uma gaiola em forma de garrafa também foi desenvolvida para a coleta de ovos, bem como um dispositivo de poupança de mão de obra e protocolo de acompanhamento para frascos de cultura de vidro de limpeza.
A mosca-das-frutas, Drosophila melanogaster, é um organismo modelo amplamente utilizado na educação biológica de pesquisa e biologia para estudar uma ampla gama de tópicos1,2. Os problemas básicos de manipulação de Drosophila são a transferência de adultos de frasco para injetáveis e imobilização das moscas para que eles são mais fáceis de manusear, como todos os adultos (exceto para alguns mutantes3,4) pode voar.
Convencionalmente, um pesquisador transfere moscas de um frasco para outro, segurando dois frascos boca-a-boca, batendo as moscas para baixo ou permitindo moscas para voar em outro frasco, em seguida, separando e reconectando ambos os frascos4. Obviamente, isso requer que a abertura de dois frascos com o mesmo diâmetro, e é difícil controlar a quantidade de moscas transferidas. Enquanto isso, isso requer mãos rápidas para conseguir o trabalho feito, e escapar moscas perdidas pode resultar em problemas para o laboratório ou sala de aula. Adicionar moscas virgens extras ou moscas masculinas a uma cruz já preparada é outra tarefa rotineira em experimentos de Drosophila . Convencionalmente, as moscas devem ser imobilizadas no frasco cruzado antes da adição de moscas extra.
A Drosophila adulta é rotineiramente anestesiada por éter, co2ou refrigeração5. Em comparação com a exposição ao éter e ao co2 , o resfriamento é o agente mais eficiente em termos de custo para imobilizar a Drosophila adulta e o menos prejudicial para as moscas e pesquisadores (especialmente estudantes jovens)6,7. No entanto, a água que se condensa continuamente sobre a superfície fria ou câmara molha as moscas. É difícil determinar os fenótipos de moscas molhadas, e podem facilmente tornar-se danificados durante a manipulação8,9. Isso manteve o método de refrigeração de se tornar mais amplamente aceito.
As ferramentas para o transferência da mosca e um método para refrigerar da mosca foram descritas previamente10. Nisto, uma técnica de refrigeração modificada da anestesia é relatada que é segura, de confiança, e praticável para experimentos de Drosophila . Também descrito neste artigo são 1) métodos para matar adultos para a contagem, triagem, ou descartando, 2) dispositivos e protocolos de poupança de trabalho para a limpeza de frascos de cultura de vidro, e 3) uma gaiola simples para a coleta de ovos. As ferramentas facilmente projetadas e rentáveis descritas aqui podem ser usadas para abordar as difíceis questões de manuseio de mosca, e esses métodos foram testados e são comprovados para serem robustos, confiáveis e fáceis de manusear para pesquisadores experientes e novatos.
Algumas ferramentas caseiras para lidar com atividades básicas envolvidas na criação e experimentação de Drosophila são descritas neste artigo. Estas ferramentas são simples, mas bastante eficaz. Virtualmente, qualquer laboratório pode fazer essas ferramentas com facilidade, e uma pesquisa ou um laboratório de ensino não precisa encontrar uma alternativa pronta que talvez não esteja disponível localmente.
Fly transferência é a prática mais comum e uma tarefa difícil em…
The authors have nothing to disclose.
Nenhum
a pair of pliers | |||
cordless drill driver | max speed: 500 rpm | ||
electric soldering iron | |||
file | |||
funnel | diameter of disk<60mm | ||
ice box | |||
insect pins | |||
infrared thermometer | HCIYET HT-830 | ||
long cuff rubber gloves | |||
mechanical pencils | |||
medical gauze | |||
microcentrifuge tube | 100 ul | ||
microwave oven | |||
Parafilm | |||
peri dish | internal diameter 60 mm | ||
pipette tips | 1 ml | ||
plastic film | |||
plastic peri dish | Φ36 mm used to cover the empty vial | ||
point tweezers | |||
protective work gloves | |||
re-freezable hard icepacks | 26.5×14.5×2.5 cm or larger | ||
rubber air blower | |||
snap cutter | |||
soft drink bottle | 500 ml, internal diameter c.a. 65 mm | ||
sponge stopper | |||
stainless steel sponges | |||
tube brush | |||
vial | Φ34 mm × 90 mm |