Summary

Real tidsövervakning av humana Glioma cell migration på dorsala root ganglion Axon-Oligodendrocyte Co-kulturer

Published: December 13, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi ett ex-vivo blandat enskiktslager kultur system för studier av Human gliom cell (HGC) migration i realtid. Denna modell ger möjlighet att observera interaktioner mellan hgcs och både myelinerade och icke-myeliniserade axoner inom en uppdelade kammare.

Abstract

Glioblastom är en av de mest aggressiva mänskliga cancerformer på grund av omfattande cellulära heterogenitet och migration egenskaper hGCs. För att bättre förstå molekylära mekanismer bakom gliom cell migration, en förmåga att studera samspelet mellan hgcs och axoner inom tumören mikromiljö är viktigt. För att modellera denna cellulära interaktion, utvecklade vi ett blandat kultur system bestående av hGCs och dorsala root ganglier (DRG) Axon-oligodendrocyte Co-kulturer. DRG kulturer valdes eftersom de kan isoleras effektivt och kan bilda de långa, omfattande prognoser som är idealiska för migration studier av detta slag. Renade råtta oligodendrocyter lades sedan på renade råtta DRG axoner och inducerade till myelinat. Efter att ha bekräftat bildandet av kompakta myelin, var hGCs slutligen till samkulturen och deras interaktioner med DRG axoner och oligodendrocyter övervakades i realtid med hjälp av Time-lapse mikroskopi. Under dessa förhållanden, hgcs bilda tumör-liknande aggregerade strukturer som uttrycker gfap och Ki67, migrera längs både myeliniserade och icke-myeliniserade axonala spår och interagera med dessa axoner genom bildandet av pseudopodia. Vårt ex vivo Co-Culture-system kan användas för att identifiera nya cellulära och molekylära mekanismer för hGC-migration och kan potentiellt användas för in vitro-testning av läkemedels effekt.

Introduction

Glioblastoma är en av de mest aggressiva och dödliga tumörer i den mänskliga hjärnan. Den nuvarande standarden på vården inkluderar kirurgisk resektion av tumören följt av strålning1 plus samtidig och adjuvant administrering av temozolomid2. Även med denna multi-terapeutiska tillvägagångssätt, tumör upprepning är oundvikligt3. Detta beror delvis på den omfattande flyttande natur tumörceller, som invaderar hjärnparenkymet skapa flera finger-liknande projektioner i hjärnan4 som gör fullständig resektion osannolikt.

Under de senaste åren har det blivit uppenbart att aggressivitet glioblastoma beror delvis på närvaron av en population av cancer stamceller inom tumör massan5,6, som uppvisar hög migrations potential7,8, resistens mot kemoterapi och strålning9,10 och förmågan att bilda sekundära tumörer11. GSCs kan rekapitulera ursprungliga polyklonala tumörer när xenografted till naken möss5.

Trots den rikedom av kunskap om den genetiska bakgrunden av glioblastomas, studier på gliom cell (GC) migration hindras för närvarande av brist på effektiva in vitro-eller in vivo migration modeller. Särskilt, medan gliom cell-axonal interaktioner modulerad av cellulära och miljömässiga faktorer är en kärnkomponent i gliom invasion, till vår kännedom finns det för närvarande inget experimentellt system med förmågan att modellera dessa interaktioner12,13,14. För att åtgärda denna brist utvecklade vi ett ex vivo kultur system av primära hgcs Co-odlade med renade DRG Axon-oligodendrocyter som resulterar i förhöjda uttryck av differentierade tumörmarkörer samt omfattande migration och interaktion av hgcs med myelinerade och icke-myeliniserade fibrer. Denna ex vivo plattform, på grund av dess uppdelade layout, är lämplig för att testa effekterna av nya Therapeutics på hGC migrationsmönster.,

Protocol

Protokollen för insamling, isolering, och förökning av patient-derived humana gliom celler godkändes av IRB kommittén för Rhode Island Hospital. Alla djur upprätthölls enligt NIH-guiden för skötsel och användning av försöksdjur. Alla djur användnings protokoll godkändes av den institutionella djuromsorg och användning kommittén för Rhode Island Hospital. 1. media och buffertpreparat Förbered 50 mL av Neurosphere media: 1x neuronal basal medium w/o vitamin A, 1x ser…

Representative Results

För att studera interaktionen mellan hgcs och axoner genererade vi renade DRG axoner som tidigare beskrivits15,16,17,18. Dessa renade DRG axoner var sedan seedad med hGCs, som bildade GFAP +/Ki67 + tumörliknande strukturer integreras i axonala nätverk, medan enskilda hGCs migreras antingen i förening eller mellan axonerna (figur 2). För att avgöra hur hgcs interagerar med…

Discussion

Migrationsstudier för hGCs kan utföras med hjälp av Boyden kammar system eller Scratch analyser. Men medan dessa experiment misslyckas med att ge någon information om samspelet mellan tumörceller med andra omgivande vävnader, kan det nuvarande systemet recapitulate GC interaktioner med myeliniserade och icke-myeliniserade fibrer. Vidare, för att studera tumör bildning och slutpunkts migration, organotypic slice kulturer av gnagare hjärnan eller in vivo implantation av gliom celler i gnagare hjärnan eller flanke…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av interna medel från Institutionen för neurokirurgi, Brown University till N.T.

Materials

100 mm Suspension Culture Dish Corning 430591
2.5S NGF ENVIGO B.5025
60 mm Suspension Culture Dish Corning 430589
ACK Lysing Buffer Thermo Fisher A1049201
Ammonium Hydroxide Solution Fisher Scientific A669-500 Concentrated
Animal-Free Recombinant Human EGF Peprotech AF-100-15
Animal-Free Recombinant Human FGF-basic (154 a.a.) Peprotech AF-100-18B
Anti-A2B5 MicroBeads, human, mouse, rat Miltenyi Biotec 130-093-392
Antibiotic-Antimycotic (100X) Thermo Fisher 15240062
AutoMACS Rinsing Solution (PBS, pH 7.2) Miltenyi Biotec 130-091-222
B27 Supplement Thermo Fisher 17504044
B27 Supplement, minus vitamin A Thermo Fisher 12587001
Bacteriological Plate BD Falcon 351029
Biotin Sigma B4639
BSA Sigma A9418
Campenot Chamber Tyler Research CAMP-10
Cell Culture Dish Corning 430165 35mm X 10mm
Cell Strainer BD Falcon 352350 70 uM, Nylon
Cell Strainer BD Falcon 352340 30 uM, Nylon
Collagenase/Dispase Roche 11097113001
Cultrex Rat Collagen I Trevigen 3440-100-01
D-Glucose Sigma G5146
DMEM Thermo Fisher 10313021
DNase I Sigma D7291
Dow Corning High-Vacuum Grease Fisher Scientific 14-635-5D
Dumont #5 Forceps Roboz RS-5045
E16 Timed Pregnant Sprague Dawley Rat
EBSS Sigma E7510
EGTA Sigma E3889
FBS Hyclone SH30070.02
FUDR Sigma F0503
GlutaMAX Supplement Thermo Fisher 35050061
Ham's F-12 Nutrient Mix Thermo Fisher 11765054
HBSS Thermo Fisher 14175095
Hemostatic Forceps Roboz RS-7035
Heparin Sodium Salt, 0.2% in PBS Stem Cell Technologies 07980
Hypodermic Needle, 18G BD 511097
Insulin-Transferrin-Selenium G Thermo Fisher 41400045
L-Cysteine Sigma C7477
L-Glutamine Thermo Fisher 25030081
Leibovitz's L-15 Medium Thermo Fisher 11415064
MACS BSA Stock Solution Miltenyi Biotec 130-091-376
MACS MultiStand Miltenyi Biotec 130-042-303
MEM Thermo Fisher 1190081
Mg2SO4 Sigma M2643
MiniMACS Separator Miltenyi Biotec 130-042-102
MS Columns plus tubes Miltenyi Biotec 130-041-301
NAC Sigma A8199
NaHCO3 Sigma S5761
Neurobasal Medium Thermo Fisher 21103049
Neurobasal-A Medium Thermo Fisher 10888022
Ordinary forceps
P2 Sprague Dawley Rat Pups
Papain Worthington LS003126
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher 15140148
Pin Rake Tyler Research CAMP-PR
Progesterone Sigma P8783
StemPro Accutase Cell Dissociation Reagent Thermo Fisher A1110501
Syrine Grease Applicator Tyler Research CAMP-GLSS
Transferrin Sigma T2036
Uridine Sigma U3003

References

  1. Stupp, R., et al. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma. New England Journal of Medicine. 352 (10), 987-996 (2005).
  2. Stupp, R., Weber, D. C. The role of radio- and chemotherapy in glioblastoma. Onkologie. 28 (6-7), 315-317 (2005).
  3. Wick, W., et al. Pathway inhibition: emerging molecular targets for treating glioblastoma. Neuro-Oncology. 13 (6), 566-579 (2011).
  4. Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nature Reviews Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).
  5. Lee, J., et al. Tumor stem cells derived from glioblastomas cultured in bFGF and EGF more closely mirror the phenotype and genotype of primary tumors than do serum-cultured cell lines. Cancer Cell. 9 (5), 391-403 (2006).
  6. Visvader, J. E. Cells of origin in cancer. Nature. 469 (7330), 314-322 (2011).
  7. Morshead, C. M., van der Kooy, D. Disguising adult neural stem cells. Current Opinion in Neurobiology. 14 (1), 125-131 (2004).
  8. Sanai, N., Alvarez-Buylla, A., Berger, M. S. Neural stem cells and the origin of gliomas. New England Journal of Medicine. 353 (8), 811-822 (2005).
  9. Chen, J., et al. A restricted cell population propagates glioblastoma growth after chemotherapy. Nature. 488 (7412), 522-526 (2012).
  10. Bao, S., et al. Glioma stem cells promote radioresistance by preferential activation of the DNA damage response. Nature. 444 (7120), 756-760 (2006).
  11. Beier, D., et al. CD133(+) and CD133(-) glioblastoma-derived cancer stem cells show differential growth characteristics and molecular profiles. 암 연구학. 67 (9), 4010-4015 (2007).
  12. Armento, A., Ehlers, J., Schotterl, S., Naumann, U., De Vleeschouwer, S. . Glioblastoma. , (2017).
  13. Chedotal, A., Kerjan, G., Moreau-Fauvarque, C. The brain within the tumor: new roles for axon guidance molecules in cancers. Cell Death and Differentiation. 12 (8), 1044-1056 (2005).
  14. Rao, S. S., Lannutti, J. J., Viapiano, M. S., Sarkar, A., Winter, J. O. Toward 3D biomimetic models to understand the behavior of glioblastoma multiforme cells. Tissue Engineering Part B Reviews. 20 (4), 314-327 (2014).
  15. Windebank, A. J., Wood, P., Bunge, R. P., Dyck, P. J. Myelination determines the caliber of dorsal root ganglion neurons in culture. Journal of Neuroscience. 5 (6), 1563-1569 (1985).
  16. Wood, P. M. Separation of functional Schwann cells and neurons from normal peripheral nerve tissue. Brain Research. 115 (3), 361-375 (1976).
  17. Rambukkana, A., Zanazzi, G., Tapinos, N., Salzer, J. L. Contact-dependent demyelination by Mycobacterium leprae in the absence of immune cells. Science. 296 (5569), 927-931 (2002).
  18. Tapinos, N., Ohnishi, M., Rambukkana, A. ErbB2 receptor tyrosine kinase signaling mediates early demyelination induced by leprosy bacilli. Nature Medicine. 12 (8), 961-966 (2006).
  19. Chan, J. R., et al. NGF controls axonal receptivity to myelination by Schwann cells or oligodendrocytes. Neuron. 43 (2), 183-191 (2004).
  20. Dugas, J. C., Tai, Y. C., Speed, T. P., Ngai, J., Barres, B. A. Functional genomic analysis of oligodendrocyte differentiation. Journal of Neuroscience. 26 (43), 10967-10983 (2006).
  21. Ruffini, F., Arbour, N., Blain, M., Olivier, A., Antel, J. P. Distinctive properties of human adult brain-derived myelin progenitor cells. American Journal of Pathology. 165 (6), 2167-2175 (2004).
  22. Zepecki, J. P., Snyder, K. M., Moreno, M. M., Fajardo, E., Fiser, A., Ness, J., Sarkar, A., Toms, S. A., Tapinos, N. Regulation of human glioma cell migration, tumor growth, and stemness gene expression using a Lck targeted inhibitor. Oncogene. 38, 1734-1750 (2018).
  23. Chen, H. C. Boyden chamber assay. Methods in Molecular Bioliogy. 294, 15-22 (2005).
  24. Merz, F., et al. Organotypic slice cultures of human glioblastoma reveal different susceptibilities to treatments. Neuro-Oncology. 15 (6), 670-681 (2013).
  25. Singh, S. K., et al. Identification of human brain tumour initiating cells. Nature. 432 (7015), 396-401 (2004).
  26. Aubert, M., Badoual, M., Christov, C., Grammaticos, B. A model for glioma cell migration on collagen and astrocytes. Journal of the Royal Society Interface. 5 (18), 75-83 (2008).
  27. Jia, W., et al. Effects of three-dimensional collagen scaffolds on the expression profiles and biological functions of glioma cells. International Journal of Oncology. 52 (6), 1787-1800 (2018).
  28. Kaphle, P., Li, Y., Yao, L. The mechanical and pharmacological regulation of glioblastoma cell migration in 3D matrices. Journal of Cellular Physiology. 234 (4), 3948-3960 (2019).
  29. Gritsenko, P., Leenders, W., Friedl, P. Recapitulating in vivo-like plasticity of glioma cell invasion along blood vessels and in astrocyte-rich stroma. Histochemistry and Cell Biology. 148 (4), 395-406 (2017).
  30. Gritsenko, P. G., Friedl, P. Adaptive adhesion systems mediate glioma cell invasion in complex environments. Journal of Cell Science. 131 (15), (2018).
  31. Kaur, H., et al. Cadherin-11, a marker of the mesenchymal phenotype, regulates glioblastoma cell migration and survival in vivo. Molecular Cancer Research. 10 (3), 293-304 (2012).
  32. Rao, S. S., et al. Mimicking white matter tract topography using core-shell electrospun nanofibers to examine migration of malignant brain tumors. Biomaterials. 34 (21), 5181-5190 (2013).
  33. Huang, Y., et al. Three-dimensional hydrogel is suitable for targeted investigation of amoeboid migration of glioma cells. Molecular Medicine Reports. 17 (1), 250-256 (2018).
check_url/kr/59744?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zepecki, J. P., Snyder, K. M., Tapinos, N. Real-Time Monitoring of Human Glioma Cell Migration on Dorsal Root Ganglion Axon-Oligodendrocyte Co-Cultures. J. Vis. Exp. (154), e59744, doi:10.3791/59744 (2019).

View Video