Summary

In vitro generasjon av mus hjerte Field-spesifikke CARDIAC stamceller

Published: July 03, 2019
doi:

Summary

Formålet med denne metoden er å generere hjerte Feltspesifikke CARDIAC stamceller in vitro for å studere Stamcelle spesifikasjonen og funksjonelle egenskaper, og å generere kammer spesifikke CARDIAC celler for hjertesykdom modellering.

Abstract

Pluripotent stamceller tilbyr stort potensial for å forstå hjerte utvikling og sykdom og for regenererende medisin. Mens de siste fremskritt i utviklingsmessige kardiologi har ført til generering av CARDIAC celler fra Pluripotent stamceller, er det uklart om de to CARDIAC felt-den første og andre hjerte felt (FHF og SHF)-er indusert i Pluripotent stamceller systemer. For å løse dette, genererte vi en protokoll for in vitro spesifikasjon og isolering av hjerte felt-spesifikke CARDIAC stamceller. Vi brukte embryonale stamceller linjer bærer Hcn4-GFP og Tbx1-grobunn; Rosa-RFP journalister av FHF og SHF, henholdsvis, og live celle immunostaining av cellemembranen protein Cxcr4, en SHF markør. Med denne tilnærmingen genererte vi stamceller som recapitulate de funksjonelle egenskapene og transcriptome til deres in vivo motstykker. Vår protokoll kan utnyttes til å studere tidlig spesifikasjon og segregering av de to hjerte felt og å generere kammer-spesifikke CARDIAC celler for hjertesykdom modellering. Siden dette er et in vitro organoid system, kan det ikke gi presis anatomisk informasjon. Men, dette systemet overvinner dårlig tilgjengelighet av gastrulation-scenen embryo og kan oppskalert for høy gjennomstrømming skjermer.

Introduction

Bruken av Pluripotent stamceller (PSCer) har revolusjonert feltet av CARDIAC regenerering og personlig medisin med pasient-spesifikke myocytter for sykdoms modellering og narkotikabehandling1,2,3, 4. mer nylig har in vitro protokoller for generering av atrieflimmer vs ventrikkel samt pacemaker-lignende cardiomyocytes har blitt utviklet5,6. Men om cardiogenesis kan gjenopprettes in vitro for å studere hjerte utvikling og deretter generere ventrikkel kammer spesifikke CARDIAC celler er fortsatt uklart.

Under tidlig embryoutvikling, mesodermal celler under påvirkning av utskilt morphogens som BMP4, Wnts og Activin A danner primitive strek7. CARDIAC mesodermal celler preget av uttrykk for Mesp1, migrere anteriort og senere tid å danne CARDIAC halvmåne og deretter primitive hjerte tube7,8. Denne trekk gruppen av celler inneholder to svært distinkte populasjoner av hjerte stamceller (CPC), nemlig det første og det andre hjerte feltet (FHF og SHF)9,10. Celler fra SHF er svært proliferativ og trekk, og er primært ansvarlig for forlengelse og looping av hjertet røret. I tillegg SHF celler differensiere til cardiomyocytes, fibroblaster, glatt muskel og endothelial celler som de kommer inn i hjertet røret for å danne høyre ventrikkel, høyre ventrikkel utløp og stor del av både Atria7,10. I kontrast, FHF celler er mindre proliferativ og trekk og skille hovedsakelig til cardiomyocytes som de gir opphav til venstre ventrikkel og en mindre del av Atria11. I tillegger SHF forfedre preget av uttrykk for Tbx1, FGF8, FGF10 og Six2 mens FHF celler uttrykker Hcn4 og Tbx511,12,13,14,15.

PSCer kan differensiere til alle tre bakterie lag og deretter til en hvilken som helst celle type i kroppen4,16. Derfor tilbyr de enormt potensial for å forstå hjerte utvikling og for modellering spesifikke utviklingsmessige defekter som resulterer i medfødt hjertesykdom, den hyppigste årsaken til fødselen defekter17. En stor undergruppe av medfødt hjertesykdom inkluderer kammer-spesifikke CARDIAC unormalt18,19. Men det fortsatt uklart om disse stammer fra uregelrett hjerte feltutbygging. I tillegg, gitt manglende evne til cardiomyocytes å spre etter fødselen, har det vært omfattende anstrengelser for å skape hjerte vev for hjertet gjenfødelse1,7,20. Tatt i betraktning de fysiologiske og morfologiske forskjellene mellom CARDIAC kamre, generasjon av kammer-spesifikke CARDIAC vev bruker PSCer er av vesentlig betydning. Mens nylige fremskritt innen utviklings kardiologi har ført til en robust generasjon av CARDIAC celler fra PSCer, er det fortsatt uklart om de to hjerte feltene kan bli indusert i PSC-systemer.

For å recapitulate cardiogenesis in vitro og studere spesifikasjonen og egenskapene til CPC, har vi tidligere brukt et system basert på differensiering av PSC-avledet CARDIAC spheroids21,22,23,24. Nylig genererte vi mus embryonale stamceller (mESCs) med GFP og RFP journalister under kontroll av FHF genet Hcn4 og SHF genet Tbx1, henholdsvis (mESCsTbx1-grobunn; Rosa-RFP; HCN4-GFP) 25. In vitro differensiert mESCs dannet CARDIAC spheroids der GFP + og RFP + celler dukket opp fra to forskjellige områder av mesodermal celler og mønstret på en komplementær måte. De resulterende GFP +-og RFP +-cellene viste henholdsvis FHF-og SHF-egenskapene, bestemt av RNA-sekvensering og klonal-analyser. Betydelig, benytter mESCs bærer det Isl1-RFP reporter (mESCIsl1-RFP), vi oppdaget det SHF celler var trofast Fair av cellen-overflate protein CXCR4, og denne kanne sette i stand isolasjon av hjertet åker-spesifikk celler uten transgenes. Den nåværende protokollen vil beskrive generering og isolering av hjerte Feltspesifikke CPC-er fra mESCs, som kan tjene som et verdifullt verktøy for å studere kammer spesifikk hjertesykdom.

Protocol

Merk: In vitro generasjon av hjerte felt-spesifikk mus CARDIAC stamceller (figur 1). 1. vedlikehold av mus ESCs Grow mESCs (mESCsTbx1-grobunn; Rosa-RFP; HCN4-GFP, MESCISL1-RFP)25 på 0,1% (w/v) gelatin belagt T25 flasker i 2i medium (870 ml GLASCOW minimum viktig medium (GMEM), 100 ml fosterets storfe serum (FBS), 10 mL av GlutaMAX, 10 ml av ikke-essensielle aminosyrer, 10 m…

Representative Results

Etter ca 132 h av differensiering, kan Tbx1-RFP og Hcn4-GFP CPC oppdages ved hjelp av et fluorescerende mikroskop (figur 2). Vanligvis, GFP og RFP celler komme ca i nærheten det likt tid. De to populasjoner av CPC fortsetter å ekspandere i umiddelbar nærhet og ofte i et utfyllende mønster. Justering av konsentrasjonen av Activin A og BMP4 vil endre prosentene av FHF vs SHF CPC (Figur 3). CPC-spesifikasjonen in vitro ble først og fremst bestemt av konsentras…

Discussion

I vår protokoll beskriver vi en metodikk for å generere hjerte-spheroids og isolerte hjerte Feltspesifikke CPC-er. De kan brukes til å studere mekanismer for CPC-spesifikasjonen og deres egenskaper, så vel som for CARDIAC kammer-spesifikk sykdom modellering. En tidligere publisert arbeid brukt en mESC linje med to fluorescerende journalister (Mef2c/Nkx 2.5) for å studere cardiogenesis in vitro, men begge disse markørene uttrykkes på embryonale dag 9.5-10 når cardiomyocytes er allerede dannet26</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

E. T. ble støttet av The Magic som teller og AHA. C. K. ble støttet av tilskudd fra NICHD/NIH (R01HD086026), AHA, og MSCRF.

Materials

β-mercaptoethanol Sigma M6250
0.1% (w/v) Gelatin EMD Millipore ES-006-B
100mM Sodium Pyruvate Gibco 11360
100X Pen/Strep Gibco 15070-063
1X PBS w/o Calcium and Magnesium Thermo Fisher Scientific 21-040-CV
20% Paraformaldehyde Thermo Fisher Scientific 50-980-493
5 ml Polystyrene round-bottom tube with a 40μm cell strainer BD Falcon 35223
Activin A R & D Systems 338-AC-010
Ascorbic Acid Sigma A-4544
B27 minus vitamin A (50x) Thermo Fisher Scientific 12587010
BMP4 R & D Systems 314-BP
Bovine Serum Albumin Sigma A2153
Cell sorter Sony SH800 Sony or any other fluorescence-activated cell sorter
Cell strainer 70μm Thermo Fisher Scientific 08-771-2
Centrifuge Sorvall Legend XT Thermo Fisher Scientific 75004508
CHIR99021 Selleck chemicals S2924
CO2 Incubator Thermo Fisher Scientific 51030285
Corning Ultra Low Attachment T75 flask Corning 07-200-875
Countless II FL automated cell counter Thermo Fisher Scientific
Donkey anti-mouse IgG secondary antibody, Alexa Fluor 647 conjugate Thermo Fisher Scientific A-31571, Lot #1757130
Dulbecco's Modified Eagle's Medium high glucose (DMEM) Gibco 11965-092
EDTA Sigma E6758
ESGRO (LIF) Millipore ESG1106
EVOS FL microscope Thermo Fisher Scientific AMF4300
Fetal Bovine Serum Invitrogen SH30071.03
Glasgow’s MEM (GMEM) Gibco 11710035
GlutaMAX (100 x) Gibco 35050-061
Ham’s F12 Gibco 10-080-CV
HEPES Sigma H3375
IMDM Gibco 12440053
Monothioglycero (MTG) Sigma M-6145
Mouse anti-Troponin T antibody Thermo Fisher Scientific MS-295-P1
N2-SUPPLEMENT Gibco 17502-048
Non-essential amino acid solution (NEAA Invitrogen 11140-050
PD0325901 Selleckchem S1036
PerCP-efluor 710 conjugated anti-Cxcr4 antibody Thermo Fisher Scientific 46-9991-82
Suspension culture dish 150 mm x 25mm Corning 430597
T25 flasks Corning 353109
TrypLE (Trypsin) Gibco 12604
Y-27632 (ROCK inhibitor) Stem cell technologies 72304

References

  1. Laflamme, M. A., Murray, C. E. Heart regeneration. Nature. 473 (7347), 326-335 (2011).
  2. Spater, D., Hansson, E. M., Zangi, L., Chien, K. R. How to make a cardiomyocyte. Development. 141 (23), 4418-4431 (2014).
  3. Birket, M. J., Mummery, C. L. Pluripotent stem cell derived cardiovascular progenitors–a developmental perspective. 발생학. 400 (2), 169-179 (2015).
  4. Bellin, M., Marchetto, M. C., Gage, F. H., Mummery, C. L. Induced pluripotent stem cells: the new patient. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 13 (11), 713-726 (2012).
  5. Lee, J. H., Protze, S. I., Laksman, Z., Backx, P. H., Keller, G. M. Human Pluripotent Stem Cell-Derived Atrial and Ventricular Cardiomyocytes Develop from Distinct Mesoderm Populations. Cell Stem Cell. 21 (2), 179-194 (2017).
  6. Protze, S. I., et al. Sinoatrial node cardiomyocytes derived from human pluripotent cells function as a biological pacemaker. Nature Biotechnology. 35 (1), 56-68 (2017).
  7. Galdos, F. X., et al. Cardiac Regeneration: Lessons From Development. Circulation Research. 120 (6), 941-959 (2017).
  8. Lescroart, F., et al. Early lineage restriction in temporally distinct populations of Mesp1 progenitors during mammalian heart development. Nature Cell Biology. 16 (9), 829-840 (2014).
  9. Bruneau, B. G. Signaling and transcriptional networks in heart development and regeneration. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (3), 008292 (2013).
  10. Kelly, R. G., Buckingham, M. E., Moorman, A. F. Heart fields and cardiac morphogenesis. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 4 (10), (2014).
  11. Bruneau, B. G., et al. Chamber-specific cardiac expression of Tbx5 and heart defects in Holt-Oram syndrome. 발생학. 211 (1), 100-108 (1999).
  12. Watanabe, Y., et al. Fibroblast growth factor 10 gene regulation in the second heart field by Tbx1, Nkx2-5, and Islet1 reveals a genetic switch for down-regulation in the myocardium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (45), 18273-18280 (2012).
  13. Huynh, T., Chen, L., Terrell, P., Baldini, A. A fate map of Tbx1 expressing cells reveals heterogeneity in the second cardiac field. Genesis. 45 (7), 470-475 (2007).
  14. Zhou, Z., et al. Temporally Distinct Six2-Positive Second Heart Field Progenitors Regulate Mammalian Heart Development and Disease. Cell Reports. 18 (4), 1019-1032 (2017).
  15. Spater, D., et al. A HCN4+ cardiomyogenic progenitor derived from the first heart field and human pluripotent stem cells. Nature Cell Biology. 15 (9), 1098-1106 (2013).
  16. Cho, G. S., Tampakakis, E., Andersen, P., Kwon, C. Use of a neonatal rat system as a bioincubator to generate adult-like mature cardiomyocytes from human and mouse pluripotent stem cells. Nature Protocols. 12 (10), 2097-2109 (2017).
  17. Bruneau, B. G., Srivastava, D. Congenital heart disease: entering a new era of human genetics. Circulation Research. 114 (4), 598-599 (2014).
  18. Liu, X., et al. The complex genetics of hypoplastic left heart syndrome. Nature Genetics. 49 (7), 1152-1159 (2017).
  19. Li, L., et al. HAND1 loss-of-function mutation contributes to congenital double outlet right ventricle. International Journal of Molecular Medicine. 39 (3), 711-718 (2017).
  20. Garbern, J. C., Lee, R. T. Cardiac stem cell therapy and the promise of heart regeneration. Cell Stem Cell. 12 (6), 689-698 (2013).
  21. Uosaki, H., et al. Direct contact with endoderm-like cells efficiently induces cardiac progenitors from mouse and human pluripotent stem cells. PLoS One. 7 (10), 46413 (2012).
  22. Cheng, P., et al. Fibronectin mediates mesendodermal cell fate decisions. Development. 140 (12), 2587-2596 (2013).
  23. Shenje, L. T., et al. Precardiac deletion of Numb and Numblike reveals renewal of cardiac progenitors. Elife. 3, 02164 (2014).
  24. Morita, Y., et al. Sall1 transiently marks undifferentiated heart precursors and regulates their fate. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 92, 158-162 (2016).
  25. Andersen, P., et al. Precardiac organoids form two heart fields via Bmp/Wnt signaling. Nature Communications. 9 (1), 3140 (2018).
  26. Domian, I. J., et al. Generation of functional ventricular heart muscle from mouse ventricular progenitor cells. Science. 326 (5951), 426-429 (2009).
check_url/kr/59826?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tampakakis, E., Miyamoto, M., Kwon, C. In Vitro Generation of Heart Field-specific Cardiac Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (149), e59826, doi:10.3791/59826 (2019).

View Video