Formålet med denne metoden er å generere hjerte Feltspesifikke CARDIAC stamceller in vitro for å studere Stamcelle spesifikasjonen og funksjonelle egenskaper, og å generere kammer spesifikke CARDIAC celler for hjertesykdom modellering.
Pluripotent stamceller tilbyr stort potensial for å forstå hjerte utvikling og sykdom og for regenererende medisin. Mens de siste fremskritt i utviklingsmessige kardiologi har ført til generering av CARDIAC celler fra Pluripotent stamceller, er det uklart om de to CARDIAC felt-den første og andre hjerte felt (FHF og SHF)-er indusert i Pluripotent stamceller systemer. For å løse dette, genererte vi en protokoll for in vitro spesifikasjon og isolering av hjerte felt-spesifikke CARDIAC stamceller. Vi brukte embryonale stamceller linjer bærer Hcn4-GFP og Tbx1-grobunn; Rosa-RFP journalister av FHF og SHF, henholdsvis, og live celle immunostaining av cellemembranen protein Cxcr4, en SHF markør. Med denne tilnærmingen genererte vi stamceller som recapitulate de funksjonelle egenskapene og transcriptome til deres in vivo motstykker. Vår protokoll kan utnyttes til å studere tidlig spesifikasjon og segregering av de to hjerte felt og å generere kammer-spesifikke CARDIAC celler for hjertesykdom modellering. Siden dette er et in vitro organoid system, kan det ikke gi presis anatomisk informasjon. Men, dette systemet overvinner dårlig tilgjengelighet av gastrulation-scenen embryo og kan oppskalert for høy gjennomstrømming skjermer.
Bruken av Pluripotent stamceller (PSCer) har revolusjonert feltet av CARDIAC regenerering og personlig medisin med pasient-spesifikke myocytter for sykdoms modellering og narkotikabehandling1,2,3, 4. mer nylig har in vitro protokoller for generering av atrieflimmer vs ventrikkel samt pacemaker-lignende cardiomyocytes har blitt utviklet5,6. Men om cardiogenesis kan gjenopprettes in vitro for å studere hjerte utvikling og deretter generere ventrikkel kammer spesifikke CARDIAC celler er fortsatt uklart.
Under tidlig embryoutvikling, mesodermal celler under påvirkning av utskilt morphogens som BMP4, Wnts og Activin A danner primitive strek7. CARDIAC mesodermal celler preget av uttrykk for Mesp1, migrere anteriort og senere tid å danne CARDIAC halvmåne og deretter primitive hjerte tube7,8. Denne trekk gruppen av celler inneholder to svært distinkte populasjoner av hjerte stamceller (CPC), nemlig det første og det andre hjerte feltet (FHF og SHF)9,10. Celler fra SHF er svært proliferativ og trekk, og er primært ansvarlig for forlengelse og looping av hjertet røret. I tillegg SHF celler differensiere til cardiomyocytes, fibroblaster, glatt muskel og endothelial celler som de kommer inn i hjertet røret for å danne høyre ventrikkel, høyre ventrikkel utløp og stor del av både Atria7,10. I kontrast, FHF celler er mindre proliferativ og trekk og skille hovedsakelig til cardiomyocytes som de gir opphav til venstre ventrikkel og en mindre del av Atria11. I tillegger SHF forfedre preget av uttrykk for Tbx1, FGF8, FGF10 og Six2 mens FHF celler uttrykker Hcn4 og Tbx511,12,13,14,15.
PSCer kan differensiere til alle tre bakterie lag og deretter til en hvilken som helst celle type i kroppen4,16. Derfor tilbyr de enormt potensial for å forstå hjerte utvikling og for modellering spesifikke utviklingsmessige defekter som resulterer i medfødt hjertesykdom, den hyppigste årsaken til fødselen defekter17. En stor undergruppe av medfødt hjertesykdom inkluderer kammer-spesifikke CARDIAC unormalt18,19. Men det fortsatt uklart om disse stammer fra uregelrett hjerte feltutbygging. I tillegg, gitt manglende evne til cardiomyocytes å spre etter fødselen, har det vært omfattende anstrengelser for å skape hjerte vev for hjertet gjenfødelse1,7,20. Tatt i betraktning de fysiologiske og morfologiske forskjellene mellom CARDIAC kamre, generasjon av kammer-spesifikke CARDIAC vev bruker PSCer er av vesentlig betydning. Mens nylige fremskritt innen utviklings kardiologi har ført til en robust generasjon av CARDIAC celler fra PSCer, er det fortsatt uklart om de to hjerte feltene kan bli indusert i PSC-systemer.
For å recapitulate cardiogenesis in vitro og studere spesifikasjonen og egenskapene til CPC, har vi tidligere brukt et system basert på differensiering av PSC-avledet CARDIAC spheroids21,22,23,24. Nylig genererte vi mus embryonale stamceller (mESCs) med GFP og RFP journalister under kontroll av FHF genet Hcn4 og SHF genet Tbx1, henholdsvis (mESCsTbx1-grobunn; Rosa-RFP; HCN4-GFP) 25. In vitro differensiert mESCs dannet CARDIAC spheroids der GFP + og RFP + celler dukket opp fra to forskjellige områder av mesodermal celler og mønstret på en komplementær måte. De resulterende GFP +-og RFP +-cellene viste henholdsvis FHF-og SHF-egenskapene, bestemt av RNA-sekvensering og klonal-analyser. Betydelig, benytter mESCs bærer det Isl1-RFP reporter (mESCIsl1-RFP), vi oppdaget det SHF celler var trofast Fair av cellen-overflate protein CXCR4, og denne kanne sette i stand isolasjon av hjertet åker-spesifikk celler uten transgenes. Den nåværende protokollen vil beskrive generering og isolering av hjerte Feltspesifikke CPC-er fra mESCs, som kan tjene som et verdifullt verktøy for å studere kammer spesifikk hjertesykdom.
I vår protokoll beskriver vi en metodikk for å generere hjerte-spheroids og isolerte hjerte Feltspesifikke CPC-er. De kan brukes til å studere mekanismer for CPC-spesifikasjonen og deres egenskaper, så vel som for CARDIAC kammer-spesifikk sykdom modellering. En tidligere publisert arbeid brukt en mESC linje med to fluorescerende journalister (Mef2c/Nkx 2.5) for å studere cardiogenesis in vitro, men begge disse markørene uttrykkes på embryonale dag 9.5-10 når cardiomyocytes er allerede dannet26</…
The authors have nothing to disclose.
E. T. ble støttet av The Magic som teller og AHA. C. K. ble støttet av tilskudd fra NICHD/NIH (R01HD086026), AHA, og MSCRF.
β-mercaptoethanol | Sigma | M6250 | |
0.1% (w/v) Gelatin | EMD Millipore | ES-006-B | |
100mM Sodium Pyruvate | Gibco | 11360 | |
100X Pen/Strep | Gibco | 15070-063 | |
1X PBS w/o Calcium and Magnesium | Thermo Fisher Scientific | 21-040-CV | |
20% Paraformaldehyde | Thermo Fisher Scientific | 50-980-493 | |
5 ml Polystyrene round-bottom tube with a 40μm cell strainer | BD Falcon | 35223 | |
Activin A | R & D Systems | 338-AC-010 | |
Ascorbic Acid | Sigma | A-4544 | |
B27 minus vitamin A (50x) | Thermo Fisher Scientific | 12587010 | |
BMP4 | R & D Systems | 314-BP | |
Bovine Serum Albumin | Sigma | A2153 | |
Cell sorter | Sony | SH800 | Sony or any other fluorescence-activated cell sorter |
Cell strainer 70μm | Thermo Fisher Scientific | 08-771-2 | |
Centrifuge Sorvall Legend XT | Thermo Fisher Scientific | 75004508 | |
CHIR99021 | Selleck chemicals | S2924 | |
CO2 Incubator | Thermo Fisher Scientific | 51030285 | |
Corning Ultra Low Attachment T75 flask | Corning | 07-200-875 | |
Countless II FL automated cell counter | Thermo Fisher Scientific | ||
Donkey anti-mouse IgG secondary antibody, Alexa Fluor 647 conjugate | Thermo Fisher Scientific | A-31571, Lot #1757130 | |
Dulbecco's Modified Eagle's Medium high glucose (DMEM) | Gibco | 11965-092 | |
EDTA | Sigma | E6758 | |
ESGRO (LIF) | Millipore | ESG1106 | |
EVOS FL microscope | Thermo Fisher Scientific | AMF4300 | |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen | SH30071.03 | |
Glasgow’s MEM (GMEM) | Gibco | 11710035 | |
GlutaMAX (100 x) | Gibco | 35050-061 | |
Ham’s F12 | Gibco | 10-080-CV | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
IMDM | Gibco | 12440053 | |
Monothioglycero (MTG) | Sigma | M-6145 | |
Mouse anti-Troponin T antibody | Thermo Fisher Scientific | MS-295-P1 | |
N2-SUPPLEMENT | Gibco | 17502-048 | |
Non-essential amino acid solution (NEAA | Invitrogen | 11140-050 | |
PD0325901 | Selleckchem | S1036 | |
PerCP-efluor 710 conjugated anti-Cxcr4 antibody | Thermo Fisher Scientific | 46-9991-82 | |
Suspension culture dish 150 mm x 25mm | Corning | 430597 | |
T25 flasks | Corning | 353109 | |
TrypLE (Trypsin) | Gibco | 12604 | |
Y-27632 (ROCK inhibitor) | Stem cell technologies | 72304 |