Neste estudo, nós descrevemos um protocolo detalhado para induzir o esteatose vesicular do fígado em pilhas diferenciadas de HepaRG com o oleato do sódio do sal do ácido gordo e empregamos métodos para a deteção e a quantificação da acumulação do lipido, incluindo anti-Stokes coerente Microscopia do espalhamento de Raman (carros), análise cytofluorimetric, mancha vermelha O do óleo, e qPCR.
A esteatose hepática representa uma disfunção metabólica que resulta de um acúmulo de gotas lipídicas contendo triglicerídeos em hepatócitos. O acúmulo excessivo de gordura leva à doença hepática gordurosa não alcoólica (DHGNA), que é potencialmente reversível e pode evoluir para esteatohepatite não alcoólica (NASH) e, eventualmente, cirrose e carcinoma hepatocelular (HCC). Os mecanismos moleculares que ligam a acumulação lipídica em hepatócitos com a progressão para NASH, dano hepático irreversível, fibrose, cirrose e até mesmo HCC ainda permanecem obscuros. Para isso, vários modelos in vitro e in vivo foram desenvolvidos para elucidar os processos patológicos que causam a DHGNA. No presente estudo, descrevemos um modelo celular para a indução de esteatose vesicular hepática que consiste em células de HepaRG hepáticas humanas diferenciadas por DMSO tratadas com o oleato de sódio de sal de ácidos graxos. De fato, as células HepaRG tratadas com oleato de sódio acumulam gotas lipídicas no citoplasma e apresentam características típicas de esteatose. Este modelo in vitro humano representa uma alternativa valiosa aos modelos in vivo dos ratos assim como aos hepatocytes humanos preliminares. Também apresentamos uma comparação de vários métodos para a quantificação e avaliação do acúmulo de gordura em células de HepaRG, incluindo coloração de óleo vermelho O, medida de Bodipy citofluimétrica, análise metabólica da expressão gênica por qPCR e anti-Stokes coerente Microscopia de espalhamento Raman (CARS). A imagem latente dos carros combina a especificidade química da espectroscopia de Raman, uma técnica da análise química conhecida em aplicações da ciência dos materiais, com os benefícios das microscopias óticas de alta velocidade, de alta resolução não-lineares para permitir a precisão quantificação da acumulação lipídica e da dinâmica das gotas lipídicas. O estabelecimento de um modelo in vitro eficiente para a indução da esteatose vesicular, ao lado de um método exato para a quantificação e caracterização do acúmulo lipídico, poderia levar ao desenvolvimento do diagnóstico de fase precoce da DHGNA através da identificação de marcadores moleculares, e à geração de novas estratégias de tratamento.
A esteatose hepática é definida como acúmulo de gordura intrahepática, dentro de gotas lipídicas contendo triglicerídeos, de pelo menos 5% do peso do fígado. O armazenamento hepático prolongado de lipídios é um processo potencialmente reversível, no entanto, pode levar a disfunção metabólica hepática, inflamação e formas avançadas de doença hepática gordurosa não alcoólica (DHGNA), a causa predominante de doença hepática crônica em muitas partes do o mundo1,2. A NAFLD é uma doença multifatorial que pode evoluir para a esteatohepatite não alcoólica mais agressiva (Nash), que por sua vez pode progredir para cirrose e, em pequena porcentagem de pacientes, para carcinoma hepatocelular (HCC)1,3. Nenhuma terapia aprovada está atualmente disponível como um tratamento específico para a NAFLD e a combinação de modificações de dieta e estilo de vida continua sendo o pilar da NAFLD e da gerência de Nash4,5,6.
Os mecanismos moleculars que conduzem ao desenvolvimento da esteatose hepatic na patogénese de NAFLD permanecem ainda para ser elucidados7. Neste contexto, modelos de camundongo foram desenvolvidos para estudar a progressão da doença da esteatose humana. Existe uma infinidade de modelos diferentes, e cada um tem suas vantagens e desvantagens, incluindo modelos genéticos, nutricionais e quimicamente induzidos combinando diferentes abordagens. Os ratos geneticamente modificados (transgênicos ou Knockout) desenvolvem espontaneamente a doença hepática. Entretanto, deve-se notar que estas mutações são muito raras nos seres humanos e o apagamento ou a excesso-expressão de um único gene (por exemplo, rato de OB/OB) não podem imitar a etiologia da doença humana multifatorial a nível molecular8,9. Da mesma forma, a doença adquirida por camundongos após manipulação dietética ou farmacológica pode não imitar os efeitos das dietas humanas associadas ao desenvolvimento da DHGNA no homem8. Os modelos animais têm, no entanto, facilitado a evolução na compreensão da DHGNA e essa abordagem é atualmente a estratégia mais freqüentemente utilizada na pesquisa laboratorial. No entanto, a replicação em humanos dos resultados obtidos em modelos animais tem falhado repetidamente, causando má tradução para a clínica10.
Portanto, os modelos in vitro da DHGNA podem desempenhar um papel fundamental na elucidação dos mecanismos moleculares da progressão da NAFLD, e representam uma ferramenta valiosa para a tela de um grande número de compostos. Culturas de células primárias, linhas celulares imortalizadas e biópsias hepáticas têm sido amplamente utilizadas para fins de pesquisa11. Os hepatócitos humanos preliminares assemelham-se pròxima às circunstâncias clínicas humanas, mas há um número limitado de doadores, e as culturas de pilha preliminares mostram a reprodutibilidade pobre devido à variabilidade das pilhas. Essas observações, juntamente com questões éticas e logísticas, resultaram no uso de hepatócitos primários humanos sendo limitados12. Assim, as linhas de célula hepatic representam uma alternativa conveniente, tendo diversas vantagens essenciais sobre a cultura preliminar, porque as linhas de pilha hepatic crescem firmemente, têm uma vida-extensão quase ilimitada, e têm um phenotype estável. Além disso, as linhas celulares são facilmente acessíveis e as condições de cultura das linhagens celulares hepáticas são mais simples do que as dos hepatócitos primários e são padronizadas entre os diferentes laboratórios.
Aqui, nós descrevemos em detalhe um modelo Cell-Based in vitro da esteatose vesicular do fígado, representada por pilhas diferenciadas hepatic do HepaRG tratadas com o oleate do sódio do ácido gordo. A linha celular de HepaRG foi estabelecida de um paciente fêmea afetado pela infecção da hepatite C e por um tumor bem diferenciado do fígado da classe de Edmondson mim14. A linha celular HepaRG é uma linhagem de células progenitoras bipotentes humanas capaz de diferenciar a exposição a 2% de sulfóxido de dimetil (DMSO) em direção a dois fenótipos de células diferentes: células semelhantes às das vias biliares e hepatócitos. As células de HepaRG diferenciadas (dHepaRG) compartilham algumas características e propriedades com hepatócitos adultos e possuem a capacidade de expressar de forma estável genes específicos do fígado, como albumina, AldolaseB, citocromo P450 2E1 (CYP2E1) e citocromo P450 3A4 (CYP3A4)13 (passo 3). O tratamento de células de dheparg com o oleato de sódio de sal de ácidos graxos (250 μm) por 5 dias levam à geração de gotas lipídicas citoplasmáticas, imitando os efeitos do fígado gordo14,15,17,18 ( Passo 4). A acumulação de gotas lipídicas pode ser facilmente detectada pela coloração de óleo vermelho O (passo 5), um corante lisocromo solúvel em gordura que mancha triglicérides neutros e lipídios vermelho-laranja. Para quantificar eficientemente os lipídios no dheparg gordo, aqui nós ilustramos a análise cytofluorimetric após a mancha com 4, 4-difluoro-1, 3, 5, 7-tetramethyl-4-Bora-3A, 4a-diaza-s-indacene (bodipy 505/515) (etapa 6), uma sonda fluorescente lipofílico a corpos lipídicos intracelulares e tem sido usado para rotular gotas lipídicas19. Além disso, aqui nós mostramos como avaliar a esteatose pela reacção em cadeia quantitativa do polymerase (qPCR) (etapa 7) desregulação da expressão de gene de diversos genes metabólicos em pilhas de dHepaRG. Para caracterizar e quantificar ainda mais o acúmulo de gotas lipídicas após o tratamento com oleato de sódio, realizou-se a microscopia de espalhamento Raman (CARS) coerente de anti-Stokes (etapa 8), uma técnica inovadora que possibilita a visualização e quantificação de gotas lipídicas sem rotulagem20,21.
Este protocolo descreve como diferenciar as células HepaRG e como induzir a esteatose vesicular pelo tratamento oleato de sódio (Figura 1A). Com efeito, em comparação com outras linhagens celulares de carcinoma hepatocelular humano (HCC), a linha celular heparg apresenta características de hepatócitos humanos adultos, representando uma valiosa alternativa aos hepatócitos humanos primários cultivados ex vivo13,14 </…
The authors have nothing to disclose.
Agradecemos ao Prof. Christian trepo (INSERM U871, Lyon, França), que gentilmente forneceu células HepaRG. Agradecemos a Rita Appodia pela ajuda administrativa. Este trabalho foi apoiado por MIUR-Ministero dell’ istruzione, dell’ Università e della ricerca (FIRB 2011 – 2016 RBAP10XKNC) e Universidade Sapienza de Roma (Prot. C26A13T8PS; Prot. C26A142MCH; Prot. C26A15LSXL).
Hyclone HyClone Fetal Clone II | GE Healthcare | SH30066 | |
William’s E medium with GlutaMAX | Thermofisher | 32551087 | |
Penicillin/streptomycin | SIGMA | P4333 | |
Insulin | SIGMA | I9278 | |
hydrocortisone hemisuccinate | SIGMA | H2270 | |
DMSO, dimethyl sulfoxide | SIGMA | D2438 | |
Sodium Oleate | SIGMA | O7501 | |
Methanol | SIGMA | 179337 | |
Isopropanol | SIGMA | 278475 | |
BODIPY 505/515 | Thermofisher | D3921 | |
PBS | Thermofisher | 14190-250 | |
Formaldehyde solution | SIGMA | 252549 | |
RNAse free DNAseI | Promega | M198A | |
Glass-bottomed dishes | Willco Wells | GWST-5040 | |
Oil Red solution | SIGMA | O625 | |
CellTiter 96 AQueous One Solution | Promega | G3582 | |
q-PCR oligo name | Sequence | ||
ACACB FOR | CAAGCCGATCACCAAGAGTAAA | ||
ACACB REV | CCCTGAGTTATCAGAGGCTGG | ||
b-actin FOR | GCACTCTTCCAGCCTTCCT | ||
b-actin REV | AGGTCTTTGCGGATGTCCAC | ||
ALBUMIN FOR | TGCTTGAATGTGCTGATGACAGG | ||
ALBUMIN REV | AAGGCAAGTCAGCAGGCATCTCATC | ||
ALDOB FOR | GCATCTGTCAGCAGAATGGA | ||
ALDOB REV | TAGACAGCAGCCAGGACCTT | ||
APOB FOR | CCTCCGTTTTGGTGGTAGAG | ||
APOB REV | CCTAAAAGCTGGGAAGCTGA | ||
APOC3 FOR | CTCAGCTTCATGCAGGGTTA | ||
APOC3 REV | GGTGCTCCAGTAGTCTTTCAG | ||
CPT1A FOR | TCATCAAGAAATGTCGCACG | ||
CPT1A REV | GCCTCGTATGTGAGGCAAAA | ||
CYP2E1 FOR | TTGAAGCCTCTCGTTGACCC | ||
CYP2E1 REV | CGTGGTGGGATACAGCCAA | ||
CYP3A4 FOR | CTTCATCCAATGGACTGCATAAAT | ||
CYP3A4 REV | TCCCAAGTATAACACTCTACACAGACAA | ||
GAPDH FOR | TGACAACTTTGGTATCGTGGAAGG | ||
GAPDH REV | AGGGATGATGTTCTGGAGAGCC | ||
GPAM FOR | TCTTTGGGTTTGCGGAATGTT | ||
GPAM REV | ATGCACATCTCGCTCTTGAATAA | ||
IL6 FOR | CCTGAACCTTCCAAAGATGGC | ||
IL6 REV | ACCTCAAACTCCAAAAGACCAGTG | ||
PDK4 FOR | ACAGACAGGAAACCCAAGCCAC | ||
PDK4 REV | TGGAGGTGAGAAGGAACATACACG | ||
PLIN2 FOR | TTGCAGTTGCCAATACCTATGC | ||
PLIN2 REV | CCAGTCACAGTAGTCGTCACA | ||
PLIN4 FOR | AATGAGTTGGAGGGGCTGGGGGACATC | ||
PLIN4 REV | GGTCACCTAAACGAACGAAGTAGC | ||
SCD FOR | TCTAGCTCCTATACCACCACCA | ||
SCD REV | TCGTCTCCAACTTATCTCCTCC | ||
SLC2A1 FOR | TGCTCATCAACCGCAACGAG | ||
SLC2A1 REV | CCGACTCTCTTCCTTCATCTCCTG | ||
18S FOR | CGCCGCTAGAGGTGAAATTC | ||
18S REV | TTGGCAAATGCTTTCGCTC |